Summary

Velge og isolere kolonier av menneskeskapte pluripotent stamceller omprogrammert fra voksne Fibroblaster

Published: February 20, 2012
doi:

Summary

Vi presenterer en protokoll for effektiv omprogrammering av humane somatiske celler inn i menneskeskapt påvirkning pluripotent stamceller (hiPSC) bruker retrovirale vektorer som koder Oct3 / 4, Sox2, Klf4 og c-myc (OSKM) og identifisering av korrekt omprogrammeres hiPSC av levende farging med Tra- 1-81 antistoff.

Abstract

Heri vi presentere en protokoll for omprogrammering voksent menneske fibroblaster inn menneskeskapt påvirkning pluripotent stamceller (hiPSC) bruker retrovirale vektorer som koder Oct3 / 4, Sox2, Klf4 og c-myc (OSKM) i nærvær av natrium butyrate 1-3. Vi brukte denne metoden for å omprogrammere sent passasje (> P10) voksent menneske fibroblaster derivert fra Friedreich er ataksi pasient (GM03665, Coriell Repository). Den omprogrammering tilnærming inkluderer svært effektiv transduksjon protokollen ved hjelp av repeterende sentrifugering av fibroblaster i nærvær av virus-holdige medier. De omprogrammeres hiPSC kolonier ble identifisert ved hjelp av levende farging for Tra-1-81, en ​​overflate markør for pluripotent celler, atskilt fra ikke-omprogrammeres fibroblaster og manuelt passaged 4,5. Disse hiPSC ble deretter overført til Matrigel plater og vokst i mater-frie forhold, direkte fra omprogrammering plate. Fra den første gangen, hiPSC kolonier demonstrere karakteristiske HMS-lIke morfologi. Ved hjelp av denne protokollen mer enn 70% av utvalgte kolonier kan være vellykket utvidet og etablert i cellelinjer. De etablerte hiPSC linjene vises karakteristiske pluripotency markører inkludert overflatevann markører TRA-1-60 og SSEA-4, samt kjernefysiske markører Oct3 / 4, Sox2 og Nanog. Protokollen som presenteres her er etablert og testet med voksne fibroblaster hentet fra Friedreich sine ataksi pasienter og kontroll enkeltpersoner 6, menneskelige nyfødte fibroblaster, samt menneskelige keratinocytter.

Protocol

1. Virus produksjon og transduksjon Plate Phoenix Ampho cellene ved en tetthet på ~ 7-8×10 6 per 10 cm plate i 10 ml DMEM medium (DMEM høy glukose, 10% FBS varme inaktivert, 2 mm L-glutamin, ingen antibiotika). Plass i kuvøse og kultur over natten ved 37 ° C, 5% CO 2. De neste dag transfektere Phoenix celler ved hjelp av 12 mikrogram av en vektor koding enten Oct3 / 4, Sox2, Klf4, c-myc, eller GFP-genet (Addgene 17217 plasmider, 17218, 17219, 17220) og 35 mL Fugene 6. Forbe…

Discussion

Studerer menneskelige sykdommer, spesielt nevrologiske og nevrodegenerative, har vært spesielt utfordrende på grunn av utilgjengelighet av tilstrekkelige menneskelige mobilnettet modeller. Muligheten til å omprogrammere lett tilgjengelig somatiske celler til induserte pluripotent stamceller og potensialet for å skille dem i forskjellige celletyper åpnet en mulighet for å lage cellulære modeller av genetiske sykdommer. I tillegg iPSCs holder en meget lovende i fremtiden av regenerativ medisin. Derfor er det viktig…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av Friedreich sin Ataksi Forskning Alliance og en pilot stipend fra Arnold Family Foundation og The Center for Stem Cells og utviklingsbiologi ved MD Anderson Cancer Center.

Materials

Reagent Company Catalog number
DMEM Invitrogen 11965
DMEM/F12 Invitrogen 11330
KSR Invitrogen 10828
Non-essential aminoacids Invitrogen 11140
Sodium butyrate Sigma B5887
Y27632 Stemgent 04-0012
bFGF Stemgent 03-0002
Tra-1-81 antibody Stemgent 09-0069
Oct3/4 antibody Santa Cruz sc-8628
Nanog antibody Cell Signaling Technology 4903S
Tra-1-60 antibody Millipore MAB4360
Sox2 antibody Cell Signaling Technology 3579S
SSEA4 Millipore MAB4304
CF1 MEFs Globalstem GSC-6201G
Objective marker Nikon MBW10010
Matrigel BD Biosciences 354277
mTeSR1 StemCell Technologies 05850
β-mercaptoethanol Sigma M7522
Fugene 6 Roche 11814443001
polybrene Sigma H9268
Object marker Nikon MBW10010

References

  1. Takahashi, K., Tanabe, K., Ohnuki, M., Narita, M., Ichisaka, T., Tomoda, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
  2. Mali, P., Chou, B. K., Yen, J., Ye, Z., Zou, J., Dowey, S., Brodsky, R. A., Ohm, J. E., Yu, W., Baylin, S. B., Yusa, K., Bradley, A., Meyers, D. J., Mukherjee, C., Cole, P. A., Cheng, L. Butyrate greatly enhances derivation of human induced pluripotent stem cells by promoting epigenetic remodeling and the expression of pluripotency-associated genes. Stem Cells. 28, 713-720 (2011).
  3. Wernig, M., Meissner, A., Foreman, R., Brambrink, T., Ku, M., Hochedlinger, K., Bernstein, B. E., Jaenisch, R. In vitro reprogramming of fibroblasts into a pluripotent ES-cell-like state. Nature. 448, 318-324 (2007).
  4. Lowry, W. E., Richter, L., Yachechko, R., Pyle, A. D., Tchieu, J., Sridharan, R., Clark, A. T., Plath, K. Generation of human induced pluripotent stem cells from dermal fibroblasts. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 2883-2888 (2008).
  5. Dick, E., Matsa, E., Bispham, J., Reza, M., Guglieri, M., Staniforth, A., Watson, S., Kumari, R., Lochmuller, H., Young, L., Darling, D., Denning, C. Two new protocols to enhance the production and isolation of human induced pluripotent stem cell lines. Stem Cell Res. 6, 158-167 (2011).
  6. Ku, S., Soragni, E., Campau, E., Thomas, E. A., Altun, G., Laurent, L. C., Loring, J. F., Napierala, M., Gottesfeld, J. M. Friedreich’s ataxia induced pluripotent stem cells model intergenerational GAATTC triplet repeat instability. Cell Stem Cell. 7, 631-637 (2010).
  7. Emre, N., Vidal, J. G., Elia, J., O’Connor, E. D., Paramban, R. I., Hefferan, M. P., Navarro, R., Goldberg, D. S., Varki, N. M., Marsala, M., Carson, C. T. The ROCK inhibitor Y-27632 improves recovery of human embryonic stem cells after fluorescence-activated cell sorting with multiple cell surface markers. PLoS One. 5, e12148-e12148 (2011).
  8. Watanabe, K., Ueno, M., Kamiya, D., Nishiyama, A., Matsumura, M., Wataya, T., Takahashi, J. B., Nishikawa, S., Muguruma, K., Sasai, Y. A ROCK inhibitor permits survival of dissociated human embryonic stem cells. Nat. Biotechnol. 25, 681-686 (2007).
  9. Maherali, N., Hochedlinger, K. Guidelines and techniques for the generation of induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 3, 595-605 (2008).
  10. Yu, J., Thomson, J. A., Lanza, R. Induced Pluripotent Stem Cell Derivation. Essentials of Stem Cell Biology. , 331-337 (2009).
  11. Yu, J., Hu, K., Smuga-Otto, K., Tian, S., Stewart, R., Slukvin, I. I., Thomson, J. A. Human induced pluripotent stem cells free of vector and transgene sequences. Science. 324, 797-801 (2009).
  12. Woltjen, K., Michael, I. P., Mohseni, P., Desai, R., Mileikovsky, M., Hamalainen, R., Cowling, R., Wang, W., Liu, P., Gertsenstein, M., Kaji, K., Sung, H. K., Nagy, A. piggyBac transposition reprograms fibroblasts to induced pluripotent stem cells. Nature. 458, 766-770 (2009).
  13. Zhou, W., Freed, C. R. Adenoviral gene delivery can reprogram human fibroblasts to induced pluripotent stem cells. Stem Cells. 27, 2667-2674 (2009).
  14. Warren, L., Manos, P. D., Ahfeldt, T., Loh, Y. H., Li, H., Lau, F., Ebina, W., Mandal, P. K., Smith, Z. D., Meissner, A., Daley, G. Q., Brack, A. S., Collins, J. J., Cowan, C., Schlaeger, T. M., Rossi, D. J. Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA. Cell Stem Cell. 7, 618-630 (2010).
  15. Kim, D., Kim, C. H., Moon, J. I., Chung, Y. G., Chang, M. Y., Han, B. S., Ko, S., Yang, E., Cha, K. Y., Lanza, R., Kim, K. S. Generation of human induced pluripotent stem cells by direct delivery of reprogramming proteins. Cell Stem Cell. 4, 472-476 (2009).
  16. Han, S. S., Williams, L. A., Eggan, K. C. Constructing and deconstructing stem cell models of neurological disease. Neuron. 70, 626-644 (2011).
check_url/3416?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Polak, U., Hirsch, C., Ku, S., Gottesfeld, J., Dent, S. Y., Napierala, M. Selecting and Isolating Colonies of Human Induced Pluripotent Stem Cells Reprogrammed from Adult Fibroblasts. J. Vis. Exp. (60), e3416, doi:10.3791/3416 (2012).

View Video