Summary

Transretinal ERG Optagelser fra Mouse nethinden: Rod og Cone Photoresponses

Published: March 14, 2012
doi:

Summary

Beskriver vi en relativt enkel fremgangsmåde til transretinal elektroretinogram (ERG) optagelser til opnåelse stang og kegle photoresponses fra intakte muse retina. Denne tilgang tager fordel af den blok af synaptisk transmission fra fotoreceptorer til at isolere deres lette svar og registrere dem ved hjælp af feltelektroder placeret over den isolerede flade monteret nethinden.

Abstract

Der er to distinkte klasser af billeddannende fotoreceptorer i hvirveldyr nethinden: stave og tappe. Stænger er i stand til at detektere en enkelt lysphotoner henviser kegler arbejde kontinuerligt under ændrer sig hurtigt klare lysforhold. Absorption af lys ved stangformede og kegle-specifikke visuelle pigmenter i de ydre segmenter af fotoreceptorer udløser en lysoverførelsen, som til sidst fører til lukning af cykliske nukleotid-gatede kanaler på plasmamembranen og celle hyperpolarisering. Dette lys-induceret ændring i membran nuværende og potentielle kan blive registreret som photoresponse, ved enten klassisk suge elektrode optagelse teknik 1,2 eller transretinal elektroretinogrammet optagelser (ERG) fra isolerede nethinder med farmakologisk blokerede postsynaptiske respons komponenter 3-5. Den sidstnævnte metode tillader lægemiddel-tilgængelige langvarige optagelser fra mus fotoreceptorer og er særlig nyttig til at opnå stabile photoresponses frOM de begrænsede og skrøbelige mus kegler. I tilfælde af kegler, kan sådanne eksperimenter kan udføres både i mørke-tilpassede betingelser og efter intens belysning, blegemidler stort set alle visuelle pigment, til overvågning af keglen lysfølsomhed opsving i løbet af mørke tilpasning 6,7. I denne video, vil vi vise, hvordan man udfører stang-og M / L-kegle-drevne transretinal optagelser fra mørke-tilpasset mus nethinden. Stangen optagelser udføres ved anvendelse retina af vildtype (C57BL / 6) mus. For nemheds skyld vil kegle optagelser opnås fra genetisk modificerede stang transducin α-underenhed knockout (Ta – / -) mus, der mangler stangen signalering 8.

Protocol

1. Gør Elektroder Forberede glaselektroder. Afvej 120 mg agar og bland i 10 ml destilleret vand (endelig agar koncentration 1,2%). Smelte agaropløsning i varmt vandbad. Fylde glaskapillarer (vi bruger Word Presision Instruments TW100-4 kapillarer med følgende dimensioner: længde = 100 mm, OD / ID = 1/0.75 mm, og det indre volumen = 44 uL) med agaropløsning ved hjælp plastsprøjte. Størkne agar ved stuetemperatur i 10 min. Således op til ~ 200 kapillarer kan fyldes (resten af ​​agar blandingen kan …

Discussion

Fremgangsmåden stangformede og kegle-drevne transretinal ERG optagelser beskrevet ovenfor bliver et kraftfuldt værktøj til undersøgelse af funktionen af ​​muse fotoreceptorer i både vildtype-og genetisk modificerede dyr. Ud over den nemme karakterisering af grundlæggende photoresponse egenskaber, giver denne simple teknik god respons stabilitet under langvarige forsøg udført på tæt-på-intakte nethinden præparater. Både mørke tilpasset stang maksimale respons amplitude og lysfølsomhed i vildtypemus er …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Støttet af Career Development Award fra Research for at forebygge blindhed, NIH tilskud EY19312 og EY19543 (VJK), samt ved ubegrænset bevilling fra Research for at forebygge blindhed og EY02687 (Department of Ophthalmology og Visual Fakultet ved Washington University).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
DL-AP-4   TOCRIS bioscience 0101  
All other reagents   Sigma-Aldrich    
Glass capillaries   World Precision Instruments TW100-4 For making electrodes
Filter paper HARG Millipore HABG01300  
Photometer   UDT Instruments S350 For light calibration
Radiometric silicon sensor   UDT Instruments 221 For light calibration
Anti-vibration table   Technical Manufacturing Corporation TMC 78-239-02R, TMC63-26012-01 To minimize mechanical noise
Air compressor Panther P 15TC   Werther International P 15TC Connected to anti-vibration table
Stereomicroscope   LEICA MZ9.5 For mouse eye dissection
Infrared image converters   B.E.Meyers ProwlerTM Bound to stereomicroscope
Differential amplifier
DP-311
  Warner Instruments DP-311  
Axon Digidata 1440A Digitizer   Molecular Devices 1440A  
Dual Channel 8-pole Filter   KROHN-HITE Corporation 3382  
Ceramic resistor   TE Connectivity CGS SBCHE618RJ For reheating the perfusion solution
Thermocouple T Physitemp Instruments IT-18  
Temperature monitor   Omega DPi32 Connected to thermocouple
LED 505 nm   TT Electronics/ Optek Technology Digi-key P/N 365-1185-ND To apply test flashes/bleaching light
Cautery pen   Bovie AA25 For marking the dorsal part of the mouse eyeball
pCLAMP 10 Electrophysiology Data Acquisition and Analysis Software   Molecular Devices    

References

  1. Yau, K. W., Lamb, T. D., Baylor, D. A. Light-induced fluctuations in membrane current of single toad rod outer segments. Nature. 269, 78-80 (1977).
  2. Nikonov, S. S., Kholodenko, R., Lem, J., Pugh, E. N. Physiological features of the S- and M-cone photoreceptors of wild-type mice from single-cell recordings. J. Gen. Physiol. 127, 359-374 (2006).
  3. Nymark, S., Heikkinen, H., Haldin, C., Donner, K., Koskelainen, A. Light responses and light adaptation in rat retinal rods at different temperatures. J. Physiol. 567, 923-938 (2005).
  4. Heikkinen, H., Nymark, S., Koskelainen, A. Mouse cone photoresponses obtained with electroretinogram from the isolated retina. Vision Res. 48, 264-272 (2008).
  5. Frank, R. N., Dowling, J. E. Rhodopsin photoproducts: effects on electroretinogram sensitivity in isolated perfused rat retina. Science. 161, 487-489 (1968).
  6. Wang, J. S., Kefalov, V. J. An alternative pathway mediates the mouse and human cone visual cycle. Curr. Biol. 19, 1665-1669 (2009).
  7. Kolesnikov, A. V., Tang, P. H., Parker, R. O., Crouch, R. K., Kefalov, V. J. The mammalian cone visual cycle promotes rapid M/L-cone pigment regeneration independently of the interphotoreceptor retinoid-binding protein. J. Neurosci. 31, (2011).
  8. Calvert, P. D. Phototransduction in transgenic mice after targeted deletion of the rod transducin alpha -subunit. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 13913-13918 (2000).
  9. Applebury, M. L. The murine cone photoreceptor: a single cone type expresses both S and M opsins with retinal spatial patterning. Neuron. 27, 513-523 (2000).
  10. Sillman, A. J., Ito, H., Tomita, T. Studies on the mass receptor potential of the isolated frog retina. I. General properties of the response. Vision Res. 9, 1435-1442 (1969).
  11. Vinberg, F., Koskelainen, A. Calcium sets the physiological value of the dominant time constant of saturated mouse rod photoresponse recovery. PLoS One. 5, e13025-e13025 (2010).
  12. Bolnick, D. A., Walter, A. E., Sillman, A. J. Barium suppresses slow PIII in perfused bullfrog retina. Vision Res. 19, 1117-1119 (1979).
check_url/3424?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kolesnikov, A. V., Kefalov, V. J. Transretinal ERG Recordings from Mouse Retina: Rod and Cone Photoresponses. J. Vis. Exp. (61), e3424, doi:10.3791/3424 (2012).

View Video