Summary

Inactivation génique médiée par ARNi et<em> In Vivo</emEssai diurèse> Femmes adultes<em> Aedes aegypti</em> Les moustiques

Published: July 14, 2012
doi:

Summary

Dans ce protocole, nous combinons silencing RNAi-médiée avec un gène<em> In vivo</emDosage diurèse> pour étudier l'effet de choc effets de gènes d'intérêt a sur l'excrétion de liquide moustiques.

Abstract

Ce protocole vidéo montre une technique efficace pour effet de choc d'un gène particulier dans un insecte et de mener un essai biologique roman pour mesurer le taux d'excrétion. Cette méthode peut être utilisée pour obtenir une meilleure compréhension du processus de la diurèse chez les insectes et est particulièrement utile dans l'étude de la diurèse dans le sang d'alimentation arthropodes qui sont en mesure de prendre d'énormes quantités de liquide dans un repas de sang unique.

Cette inactivation génique médiée par ARNi combiné avec un test in vivo diurèse a été développé par le laboratoire Hansen pour étudier les effets de l'ARNi à médiation knockdown de gènes d'aquaporines sur moustique Aedes aegypti diurèse 1.

Le protocole est configuré en deux parties: la première démonstration illustre comment construire un dispositif simple moustique injection et comment préparer et injecter ARNdb dans le thorax de moustiques pour inactivation génique médiée par ARNi. La deuxième démonstration illustre comment déterminerles taux d'excrétion chez les moustiques en utilisant un dosage biologique in vivo.

Protocol

Partie I – inactivation génique médiée par ARNi dans les moustiques adultes, Aedes aegypti. Pour un aperçu expérience voir la figure 1. 1. Synthèse ARNdb Synthétiser ARNdb spécifiques contre les gènes de ARNdb d'intérêt et de contrôle. Remarque: Nous recommandons amorces développement pour les fragments PCR de l'ordre de 300 à 500 paires de bases situées à l'extrémité 3 'de la 2 ADNc spécifique et avec la séquen…

Discussion

Le protocole utilisé ARNi a été développé dans le laboratoire d'Alexandre Raikhel à l'Université de Californie Riverside 6,7 et est semblable à un protocole publié par Garver et Dimopoulos 4. L'approche expérimentale montré dans ce protocole vidéo peut être utilisée pour étudier les gènes impliqués dans la diurèse des insectes dans un cadre en vivo. Les organes excréteurs des insectes, les tubes de Malpighi, ont attiré l'intérêt des générations de ch…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs tiennent à remercier Victoria Carpenter pour ses commentaires critiques de ce protocole.

Materials

Name of reagent or equipment Company Catalogue number Comments
MEGAscript T7 High Yield Kit Ambion, Inc. AM1334
PBS buffer Sigma-Aldrich P4417
Plastic tubing Local vendor PVC
1 ml plastic pipette tip VWR 83007-376 Blue tip
1 ml syringe Becton, Dickinson and Company 309602
Scissors Local vendor
Metal needle Carolina Biologicals 654307 Size 5
Fly pad Genesee Scientific 789060
Battery-powered aspirator w/ collection vial UPMA Labs IPMM 2000
Fine tip forceps World Precision Instruments 14095
Glass capillary needles World Precision Instruments 1B200-6
Stereo dissection microscope Leica Microsystems S6D
Analytical precision balance Mettler Toledo AB54S
Sucrose Sigma-Aldrich 84097
One pint waxed lined cardboard cups Local vendor Manufactured soup cups
Mesh net Local vendor plastic fly gauze

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Cite This Article
Drake, L. L., Price, D. P., Aguirre, S. E., Hansen, I. A. RNAi-mediated Gene Knockdown and In Vivo Diuresis Assay in Adult Female Aedes aegypti Mosquitoes. J. Vis. Exp. (65), e3479, doi:10.3791/3479 (2012).

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