Summary

מערכת ל<em> Vivo לשעבר</em> Culturing של לבלב עוברי

Published: August 27, 2012
doi:

Summary

כאן, אנו מתארים שיטה לבידוד, תרבות ומניפולציה של לבלב העוברי של עכבר. זה מייצג מצוין<em> Vivo לשעבר</em> מערכת ללימוד היבטים שונים של פיתוח לבלב, כולל המורפוגנזה, התמיינות וגדילה. explants ניצן הלבלב יכול להיות מתורבת במשך כמה ימים ולהשתמש במגוון של יישומים שונים, כולל כל הר-immunofluorescence והדמיה חייה.

Abstract

הלבלב שולט בתפקודים חיוניים של הגוף שלנו, כולל ייצור של אנזימי עיכול ופיקוח על רמות סוכר בדם 1. אמנם בעשור האחרון מחקרים רבים תרמו ליסודות מוצקים להבנת organogenesis לבלב, פערים חשובים להתמיד בידע של היווצרות לבלב המוקדמת 2 שלנו. הבנה מלאה של האירועים המוקדמים הללו תספק תובנה לתוך הפיתוח של איבר זה, אלא גם למחלות חשוכות מרפא המתמקדות בלבלב, כמו סוכרת או סרטן הלבלב. לבסוף, את המידע הזה יפיק תכנית לפיתוח טיפולים להחלפת תא בהקשר של סוכרת.

במהלך התפתחות עוברת, הלבלב נובע מאוטופיות צמחה עובריות שונות של האנדודרם המעי הקדמי גב וגחון ביום עוברי (E) 9.5 בעבר עכבר 3,4. שני האוטופיות צמח evaginate לmesenchyme מקיף כepithelia מוצקניצני הליטר, שעוברים התפשטות, מסתעף ובידול לייצר איבר בגרות מלאה 2,5,6. העדויות האחרונות הראו כי צמיחה והתבדלות של תאי לבלב שושלות, כולל את β-תאים המייצרים אינסולין-, תלויות ברקמות ארכיטקטורת שיפוץ ראוי, אפיתל ומיצוב תא בתוך אפיתל לבלב הסתעפות 7,8. עם זאת, איך מסתעף המורפוגנזה מתרחשת ומתואם עם ריבוי ובידול בלבלב הוא ידוע ברובם. זה בחלקו בשל העובדה שהידע נוכחי על תהליכים התפתחותיים אלה הסתמך כמעט אך ורק על ניתוח של דגימות קבועות, תוך אירועים המוךפו"גנטי הם דינמיים מאוד.

כאן, אנו מדווחים שיטה לvivo culturing העכבר העוברי לבלב הניצנים לשעבר במנות תחתית זכוכית, המאפשרות הדמיה ישירה של לבלב הפיתוח (איור 1) ולנתח. כת זומערכת יור פתח באופן אידיאלי למיקרוסקופיה confocal סריקת הליזר, ובהדמיה בפרט, חי תאים. explants לבלב יכול להיות מוכן לא רק מעוברי עכברי סוג פראי, אלא גם מזני עכבר מהונדס גנטי (למשל מהונדס או נוקאאוט), המאפשר לימודים בזמן אמיתי של פנוטיפים מוטציה. יתר על כן, מערכת תרבות vivo לשעבר זה יקר כדי לחקור את ההשפעות של תרכובות כימיות על התפתחות לבלב, ומאפשר לקבל מידע כמוני על שגשוג וצמיחה, התארכות, הסתעפות, tubulogenesis והבחנה. לסיכום, הפיתוח של שיטת vivo לשעבר לבלב explant תרבות בשילוב עם הדמיה ברזולוציה גבוהה מספק פלטפורמה חזקה להתבוננות אירועים המוךפו"גנטי ובידול כפי שהם מתרחשים בתוך עובר העכבר המתפתח.

Protocol

הפרוטוקול המתואר כאן הותאם מהטכניקה המתוארת במקור בפרסיבל ו9 מרווח והמותאם למיקרוסקופיה confocal. 1. ציפוי של מנות תרבות תחתית הזכוכית יש לבצע את הפעולות הבאות בתנאים סטריליים בברדס זרימה ל?…

Discussion

ברגע שגורל לבלב מצוין, ותאי לבלב לעבור התפשטות נרחבת, בידול והמורפוגנזה סופו של דבר ליצירת איבר בוגר ותפקודי 2,4. נכון לעכשיו, איך ההסתעפות מתרחשת בלבלב ואיך זה קשור לריבוי מולידו ובידול היא במידה רבה לא ידוע. תרבויות explant לבלב מייצגות מערכת אידיאלית להבהיר תהליכ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

מחקר ב Spagnoli המעבדה. ממומן על ידי אגודת הלמהולץ, FP7-IRG-2008-ENDOPANC המענק וגרנט HEPATOPANCREATIC ERC-2009 החל-.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Antibodies:
Carboxypeptidase
E-cadherin
F-actin
Glucagon
Insulin
β1-integrin
Pdx1
Pdx1
Phospho-Histone H3
AbD Serotec
Invitrogen
Molecular Probes
ImmunoStar
Millipore
Millipore
Abcam
Hybridoma bank
Cell Signalling
1810-0006
13-1900
A-12373
20076
4011-01
MAB1997
ab47267
F109-D12
9706
 
Basal Medium Eagle (BME) Sigma B1522-500ML Kept in sterile conditions
Cell culture grade water PAA S15-012 Kept in sterile conditions
Culture dishes (glass-bottomed), 35-mm MatTek Corporation P35G-0-20-C  
Donkey Serum Chemicon S30-100 ml  
Fetal calf serum Gold PAA A15-151 Kept in sterile conditions
Fibronectin Invitrogen 330100-8 Stock sol. 1 mg/ml in cell culture grade water
Gentamicin Invitrogen 15750-037 Kept in sterile conditions
Glutamine Invitrogen 25030-024 Kept in sterile conditions
4-well Multidishes Nunc 176740  
Microscopes:
Inverted Confocal Microscope (LSM 700)
Stereomicroscope (Discovery V12)
Zeiss

Zeiss
  Objectives:
C-Apochromat 10X / 0.45 W M27 (work. dist. 1.8 mm; imaging depth ~100 mm); C-Apochromat 40X / 1.2 W Corr M27 (work. dist. 0.28 mm; ~imaging depth 50 μm)

Transillumination from below and fiber-optic illumination from above
Paraformaldehyde Roth 0335.3 Stock solution 20%
Pasteur Pipet (Glass), 150 mm VWR HECH567/1  
Penicillin/Streptomycin PAA P11-010 Kept in sterile conditions
Petri dishes, 60 mm Greiner Bio-One 628102  
Petri dishes, 35 mm Greiner Bio-One 627161  
1X PBS, pH7.4 PAA H15-002 Kept in sterile conditions
Spring Scissors 8 mm blade curved Fine Science Tools 15023-10  
Triton-X100 Roth 3051.3  
Watchmaker’s foreceps Dumont #5 Roth K342.1  

References

  1. Slack, J. Developmental biology of the pancreas. Development. 121, 1569-1580 (1995).
  2. Pan, F., Wright, C. Pancreas organogenesis: from bud to plexus to gland. Dev. Dyn. 240, 530-565 (2011).
  3. Puri, S., Hebrok, M. Cellular Plasticity within the Pancreas- Lessons Learned from Development. Developmental Cell. 18, 342-356 (2010).
  4. Spagnoli, F. M. From endoderm to pancreas: a multistep journey. Cell. Mol. Life Sci. 64, 2378-2390 (2007).
  5. Hick, A. -. C. Mechanism of primitive duct formation in the pancreas and submandibular glands: a role for SDF-1. BMC Dev. Biol. 9, 1-17 (2009).
  6. Villasenor, A., Chong, D., Henkemeyer, M., Cleaver, O. Epithelial dynamics of pancreatic branching morphogenesis. Development. 137, 4295-4305 (2010).
  7. Kesavan, G. Cdc42-Mediated Tubulogenesis Controls Cell Specification. Cell. 139, 791-801 (2009).
  8. Zhou, Q. A Multipotent Progenitor Domain Guides Pancreatic Organogenesis. Developmental Cell. 13, 103-114 (2007).
  9. Percival, A., Slack, J. Analysis of pancreatic development using a cell lineage label. Exp. Cell Res. 247, 123-132 (1999).
  10. Miralles, F., Czernichow, P., Ozaki, K., Itoh, N., Scharfmann, R. Signaling through fibroblast growth factor receptor 2b plays a key role in the development of the exocrine pancreas. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 6267-6272 (1999).
  11. Puri, S., Hebrok, M. Dynamics of embryonic pancreas development using real-time imaging. Dev. Biol. 306, 82-93 (2007).
  12. Magenheim, J. Blood vessels restrain pancreas branching, differentiation and growth. Development. 138, 4743-4752 (2011).
  13. Nagy, A., Gertsenstein, M., Vintersten, K., Behringer, R. . Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual. , (2003).
  14. Horb, L. D., Slack, J. M. Role of cell division in branching morphogenesis and differentiation of the embryonic pancreas. Int. J. Dev. Biol. 44, 791-796 (2000).
  15. Muzumdar, M., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45, 593-605 (2007).
check_url/3979?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Petzold, K. M., Spagnoli, F. M. A System for ex vivo Culturing of Embryonic Pancreas. J. Vis. Exp. (66), e3979, doi:10.3791/3979 (2012).

View Video