Summary

Affinity Rensing av influensavirus ribonucleoprotein Komplekser fra Chromatin av infiserte celler

Published: June 03, 2012
doi:

Summary

Influensavirus kopiere deres RNA genomet i forbindelse med host-celle kromatin. Her presenterer vi en metode for å rense intakte viral ribonucleoprotein komplekser fra kromatin av infiserte celler. Renset virale komplekser kan analyseres av både Western blot og primer forlengelse av protein og RNA innhold, henholdsvis.

Abstract

Som alle negative-Strand RNA virus, er genomet til influensavirus pakket i form av viral ribonucleoprotein komplekser (vRNP), der single-strandet genomet er encapsidated av nucleoprotein (NP), og tilknyttet trimeric polymerase som består av PA, PB1, og PB2 underenhetene. Men i motsetning til de fleste RNA virus, influensavirus utføre viral RNA syntese i kjernen av infiserte celler. Interessant, bruker viral mRNA-syntese cellulære pre-mRNA som primere, og det har blitt foreslått at denne prosessen foregår på kromatin en. Interaksjoner mellom viral polymerase og verten RNA polymerase II, samt mellom NP og vert nucleosomes har også blitt karakterisert 1,2.

Nylig, generering av rekombinante influensavirus som koder en One-Strep-Tag genetisk smeltet til C-terminus av PB2 subenhet av viral polymerase (rWSN-PB2-Strep 3) har væreEN beskrevet. Disse rekombinante virus tillate rensing av PB2-holdige komplekser, inkludert vRNPs, fra infiserte celler. For å oppnå renset vRNPs, blir cellekulturer smittet, og vRNPs er affinitet renset fra lysates avledet fra disse cellene. Imidlertid har de lysis prosedyrer som brukes hittil vært basert på ett-trinns vaskemiddel lysis, som, til tross for tilstedeværelsen av en generell nuklease, ofte trekke kromatin-bundet materiale bare ineffektivt.

Vårt forarbeidet antydet at en stor del av kjernefysiske vRNPs ikke ble trukket under tradisjonell cellelyse, og derfor ikke kunne være slektskap renset. For å øke denne utvinning effektivitet, og å skille kromatin-bundet fra ikke-kromatin-bundet kjernefysiske vRNPs, tilpasset vi en trinnvis subcellulære utvinning protokollen til influensa virus-infiserte celler. Kort, skiller denne prosedyren første kjernene fra cellen og deretter trekker oppløselige kjernefysiske proteiner (her kalt "nucleoplasmic" fraksjon).De resterende uløselige kjernefysisk materiale blir så fordøyd med Benzonase, en uspesifikk DNA / RNA nuklease, etterfulgt av to salt ekstraksjonsmetoder trinn: først med 150 mM NaCl (kalt "ch150"), deretter 500 mM NaCl ("ch500") (Fig. 1 ). Disse salt ekstraksjonsmetoder trinnene ble valgt basert på observasjon vår at 500 mM NaCl var tilstrekkelig til å solubilize over 85% av kjernefysiske vRNPs likevel tillate binding av kodede vRNPs til affinitet matrisen.

Etter subcellulære fraksjonering av infiserte celler, er det mulig å affinitet rense PB2-merket vRNPs fra hver enkelt fraksjon og analysere deres protein og RNA komponenter ved hjelp av Western Blot og primer extension, henholdsvis. Nylig, benyttet vi denne metoden for å oppdage at vRNP eksport komplekser skjemaet under slutten poeng etter infeksjon på kromatin brøkdel ekstrahert med 500 mM NaCl (ch500) 3.

Protocol

En skjematisk flytskjema av protokollen er vist i fig. 1 og en tabell av reagenser er presentert nedenfor. 1. Infeksjon (16 – 24 t) Seed ut Jakten celler i 5 150 mm plast cellekultur retter i Dulbecco modifiserte Eagle medium (DMEM)-høy glukose medium, slik at de vil nå ca 80% confluency neste dag (ca 5 x 10 8 celler). Det er viktig at cellene ikke blir 100% confluency. På den neste dagen, fortynne Strep-tagget influensavirus lager i …

Discussion

Mens mange studier har nylig identifisert enkelte proteiner eller mobilnett involvert i influensavirusinfeksjon 8, forblir den funksjonelle betydningen av de fleste av disse interaksjonene uklar. Gitt den absolutte avhengighet av kromatin-baserte funksjoner for influensavirus RNA syntese og komplekse biofysiske og biokjemiske natur kjernen 9, vil nye teknikker bli pålagt å belyse disse funksjonene. Den subnuclear fraksjonering vi presenterer her, kombinert med affinitet rensing av vRNPs, tillater…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke Nada Naffakh og Marie-Anne Rameix-Welti (Institut Pasteur) for rWSN-PB2-Strep virus.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
DMEM-high glucose Gibco 11965-092  
BSA Sigma A9418  
Protease inhibitor Mix G Serva 39101  
Benzonase Nuclease Novagen 71206 25 U/μl
DNase I, RNase-free ThermoScientific EN0523 50 U/μl
Dounce homogenizer Wheaton 432-1271 Use type “B” pestle
Strep-Tactin Sepharose IBA GmbH 2-1201-025 50% suspension column format can also be used
Desthiobiotin IBA GmbH 2-1000-002  

References

  1. Engelhardt, O. G., Smith, M., Fodor, E. Association of the influenza A virus RNA-dependent RNA polymerase with cellular RNA polymerase II. J. Virol. 79, 5812-5812 (2005).
  2. Garcia-Robles, I., Akarsu, H., Müller, C. W., Ruigrok, R., Baudin, F. Interaction of influenza virus proteins with nucleosomes. Virology. 332, 329 (2005).
  3. Chase, G. P., Rameix-Welti, M. A., Zvirbilene, A., Zvirblis, G., Götz, V., Wolff, T., Naffakh, N., Schwemmle, M. Influenza virus ribonucleoprotein complexes gain preferential access to cellular export machinery through chromatin targeting. PLoS Pathogens. 7, e1002187 (2011).
  4. Kimura, H., Tao, Y., Roeder, R. G., Cook, P. R. Quantitation of RNA polymerase II and its transcription factors in an HeLa cell: little soluble holoenzyme but significant amounts of polymerases attached to the nuclear substructure. Mol. Cell. Biol. 19, 5383-5383 (1999).
  5. Henikoff, S., Henikoff, J. G., Sakai, A., Loeb, G. B., Ahmad, K. Genome-wide profiling of salt fractions maps physical properties of chromatin. Genome Res. 19, 460 (2009).
  6. Rodriguez, A., Perez-Gonzalez, A., Nieto, A. Influenza virus infection causes specific degradation of the largest subunit of cellular RNA polymerase II. J. Virol. 81, 5315-5315 (2007).
  7. Ye, Z., Liu, T., Offringa, D. P., McInnis, J., Levandowski, R. A. Association of influenza virus matrix protein with ribonucleoproteins. J. Virol. 73, 7467-7467 (1999).
  8. Watanabe, T., Watanabe, S., Kawaoka, T., Y, . Cellular networks involved in the influenza virus life cycle. Cell Host Microbe. 7, 427 (2010).
  9. Engelhardt, O. G., Fodor, E. Functional association between viral and cellular transcription during influenza virus infection. Rev. Med. Virol. 16, 329-345 (2006).
  10. Schwartz, L. B., Sklar, V. E., Jaehning, J. A., Weinmann, R., Roeder, R. G. Isolation and partial characterization of the multiple forms of deoxyribonucleic acid-dependent ribonucleic acid polymerase in the mouse myeloma, MOPC 315. J. Biol. Chem. 249, 5889 (1974).
  11. Lambert, J. P., Baetz, K., Figeys, D. Of proteins and DNA–proteomic role in the field of chromatin research. Mol. Biosyst. 6, 30 (2010).
  12. Wu, C. Y., Jeng, K. S., Lai, M. M. The SUMOylation of matrix protein M1 modulates the assembly and morphogenesis of influenza A virus. J. Virol. 85, 6618 (2011).
  13. Liao, T. L., Wu, C. Y., Su, W. C., Jeng, K. S., Lai, M. M. Ubiquitination and deubiquitination of NP protein regulates influenza A virus RNA replication. EMBO J. 29, 3879 (2010).
check_url/4028?article_type=t&slug=affinity-purification-influenza-virus-ribonucleoprotein-complexes

Play Video

Cite This Article
Chase, G. P., Schwemmle, M. Affinity Purification of Influenza Virus Ribonucleoprotein Complexes from the Chromatin of Infected Cells. J. Vis. Exp. (64), e4028, doi:10.3791/4028 (2012).

View Video