Summary

Bruk av primære humane fibroblaster for overvåking Mitokondrielle Fenotyper i feltet av Parkinsons sykdom

Published: October 03, 2012
doi:

Summary

Fibroblaster fra pasienter bærer mutasjoner i Parkinsons sykdom-forårsaker gener representerer en lett tilgjengelig<em> Ex vivo</em> Modell for å studere sykdomsassosierte fenotyper. Levende celle bildebehandling gir mulighet til å studere morfologiske og funksjonelle parametre i levende celler. Her beskriver vi utarbeidelse av humane fibroblaster og påfølgende oppfølging av mitokondrie fenotyper.

Abstract

Parkinsons sykdom (PD) er den nest vanligste bevegelse lidelse og rammer 1% av personer over 60 år en. Fordi aldring er den viktigste risikofaktor, vil tilfeller av PD øke i løpet av de neste tiårene 2. Ved siden av patologisk protein folding og nedsatt protein degradering pathways, ble endringer i mitokondrienes funksjon og morfologi påpekt som ytterligere kjennetegn på neurodegeneration i PD 3-11.

Etter års forskning i murine og humane kreftceller som in vitro modeller for å dissekere molekylære mekanismene i parkinsonisme, har bruken av menneskelige fibroblaster fra pasienter og hensiktsmessige kontroller som ex vivo-modeller blitt et verdifullt verktøy for forskning, hvis potensielle begrensningene er vurdert. Annet enn udødeliggjort, heller kunstige celle-modeller, primære fibroblaster fra pasienter bærer sykdom mutasjoner tilsynelatende reflekterer viktige patologiske funksjoner of sykdom hos mennesker.

Her har vi avgrense prosedyren for å ta hud biopsier, dyrking humane fibroblaster og ved hjelp av detaljerte protokoller for viktige mikroskopiske teknikker for å definere mitokondrie fenotyper. Disse ble brukt til å undersøke ulike funksjoner knyttet til PD som er relevante for mitokondrie funksjon og dynamikk. Ex vivo, kan mitokondrier bli analysert i forhold til sin funksjon, morfologi, colocalization med lysosomer (organelles nedverdigende dysfunksjonelle mitokondrier) og nedbrytning via lysosomal vei . Disse fenotyper er svært relevant for identifisering av tidlige tegn på PD og kan gå forut kliniske motoriske symptomer i menneskelig sykdom-genet. Derfor kan analysene som presenteres her brukes som verdifulle verktøy for å identifisere patologiske trekk ved neurodegeneration og bidra til å definere nye terapeutiske strategier i PD.

Protocol

1. Hudbiopsi og Dyrking av humane fibroblaster Den hudbiopsi må tas av en erfaren lege. Prosedyren foregår under sterile betingelser og krever lokal anestesi. Typiske områder som brukes for biopsi er den indre side av den øvre arm, skulder eller korsryggen. Du kan ta 4x4mm eller 6x6mm diameter prøven ved punch biopsi for å få nok vev for dyrking humane fibroblaster. Skjær hudbiopsi i like små biter under sterile forhold for å skille dem i 2-4 T25 flasker. Hver kolbe bør innehold…

Discussion

Pasient hudfibroblaster som ex vivo-modeller representerer et viktig verktøy for å karakterisere sykdomsassosierte genetiske defekter. I tillegg, hud-avledede fibroblaster er lett tilgjengelige og kan utvides ved dyrkning. Derfor, primære celler oppnådd fra pasienter som frakter PD-assosierte genetiske mutasjoner er å foretrekke fremfor bruk av tumorcellelinjer som de inneholder ikke bare den endogene sykdomsfremkallende genet, men hele genetiske bakgrunnen for berørte enkelte. Videre har de vist seg å f…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet med tilskudd fra Fritz Thyssen Foundation (10.11.2.153 til RK), den tyske Research Council (DFG, KR2119/3-2 og KR2119/8-1 til RK), den føderale departementet for utdanning og forskning (BMBF , NGFNplus; 01GS08134 til RK) og av en doktor stipend fra den veldedige Hertie Foundation [til LFB]. Vi takker Carolin Obermaier og Julia Westermeier for deres støtte under videoen skyte.

Materials

Name of reagent Company Catalogue no.
Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 medium Invitrogen 52400-025
RPMI 1640 medium, no Phenol Red Invitrogen 11835-063
Dulbecco’s Phosphate-Buffered Saline (DPBS) Invitrogen 14190-094
Fibroblast growth factor 2 (FGF2) PeproTech 100-18B
AccuMax (detachment solution) PAA L11-008
Lab-TekTMII chambered coverglasses Nalge Nunc International 115382
Tetramethylrodamine ethyl ester (TMRE) Invitrogen T-669
Mitotracker Green FM Invitrogen M-7514
Mitotracker CM-H2XRos Invitrogen M-7513
Lyostracker Red DND-99 Invitrogen L-7528
Hoechst 33342 Invitrogen H-3570

Table 1. Specific reagents and equipment.

References

  1. de Rijk, M. C., Launer, L. J., Berger, K., Breteler, M. M., Dartigues, J. F., Baldereschi, M., Fratiglioni, L., Lobo, A., Martinez-Lage, J., Trenkwalder, C. Prevalence of Parkinson’s disease in Europe: A collaborative study of population-based cohorts. Neurologic Diseases in the Elderly Research Group. Neurology. 54, 21-23 (2000).
  2. Dorsey, E. R., Constantinescu, R., Thompson, J. P., Biglan, K. M., Holloway, R. G., Kieburtz, K., Marshall, F. J., Ravina, B. M., Schifitto, G., Siderowf, A. Projected number of people with Parkinson disease in the most populous nations. Neurology. 68, 384-386 (2005).
  3. Spillantini, M. G., Schmidt, M. L., Lee, V. M., Trojanowski, J. Q., Jakes, R., Goedert, M. Alpha-synuclein in Lewy bodies. Nature. 388, 839-840 (1997).
  4. Chung, K. K., Zhang, Y., Lim, K. L., Tanaka, Y., Huang, H., Gao, J., Ross, C. A., Dawson, V. L., Dawson, T. M. Parkin ubiquitinates the alpha-synuclein-interacting protein, synphilin-1: implications for Lewy-body formation in Parkinson disease. Nature. 7, 1144-1150 (2001).
  5. Kruger, R., Eberhardt, O., Riess, O., Schulz, J. B. Parkinson’s disease: one biochemical pathway to fit all genes. Trends Mol. Med. 8, 236-240 (2002).
  6. Krebiehl, G., Ruckerbauer, S., Burbulla, L. F., Kieper, N., Maurer, B., Waak, J., Wolburg, H., Gizatullina, Z., Gellerich, F. N., Woitalla, D. Reduced basal autophagy and impaired mitochondrial dynamics due to loss of Parkinson’s disease-associated protein DJ-1. PLoS One. 5, e9367 (2010).
  7. Exner, N., Treske, B., Paquet, D., Holmstrom, K., Schiesling, C., Gispert, S., Carballo-Carbajal, I., Berg, D., Hoepken, H. H., Gasser, T. Loss-of-function of human PINK1 results in mitochondrial pathology and can be rescued by parkin. J. Neurosci. 27, 12413-12418 (2007).
  8. Burbulla, L. F., Krebiehl, G., Kruger, R. Balance is the challenge–the impact of mitochondrial dynamics in Parkinson’s disease. European journal of clinical investigation. 40, 1048-1060 (2010).
  9. Strauss, K. M., Martins, L. M., Plun-Favreau, H., Marx, F. P., Kautzmann, S., Berg, D., Gasser, T., Wszolek, Z., Muller, T., Bornemann, A. Loss of function mutations in the gene encoding Omi/HtrA2 in Parkinson’s disease. Human molecular genetics. 14, 2099-2111 (2005).
  10. Narendra, D., Tanaka, A., Suen, D. F., Youle, R. J. Parkin is recruited selectively to impaired mitochondria and promotes their autophagy. The Journal of cell biology. 183, 795-803 (2008).
  11. Dagda, R. K., Cherra, S. J., Kulich, S. M., Tandon, A., Park, D., Chu, C. T. Loss of PINK1 function promotes mitophagy through effects on oxidative stress and mitochondrial fission. The Journal of biological chemistry. , 284-13843 (2009).
  12. Kieper, N., Holmstrom, K. M., Ciceri, D., Fiesel, F. C., Wolburg, H., Ziviani, E., Whitworth, A. J., Martins, L. M., Kahle, P. J., Kruger, R. Modulation of mitochondrial function and morphology by interaction of Omi/HtrA2 with the mitochondrial fusion factor OPA1. Experimental cell research. 316, 1213-1224 (2010).
  13. Burbulla, L. F., Schelling, C., Kato, H., Rapaport, D., Woitalla, D., Schiesling, C., Schulte, C., Sharma, M., Illig, T., Bauer, P. Dissecting the role of the mitochondrial chaperone mortalin in Parkinson’s disease: functional impact of disease-related variants on mitochondrial homeostasis. Human molecular genetics. 19, 4437-4452 (2010).
  14. Takahashi, K., Tanabe, K., Ohnuki, M., Narita, M., Ichisaka, T., Tomoda, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
  15. Nguyen, H. N., Byers, B., Cord, B., Shcheglovitov, A., Byrne, J., Gujar, P., Kee, K., Schule, B., Dolmetsch, R. E., Langston, W. LRRK2 mutant iPSC-derived DA neurons demonstrate increased susceptibility to oxidative stress. Cell Stem Cell. 8, 267-280 (2011).
  16. Seibler, P., Graziotto, J., Jeong, H., Simunovic, F., Klein, C., Krainc, D. Mitochondrial Parkin recruitment is impaired in neurons derived from mutant PINK1 induced pluripotent stem cells. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 31, 5970-5976 (2011).
check_url/4228?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Burbulla, L. F., Krüger, R. The Use of Primary Human Fibroblasts for Monitoring Mitochondrial Phenotypes in the Field of Parkinson’s Disease. J. Vis. Exp. (68), e4228, doi:10.3791/4228 (2012).

View Video