Summary

Matrix asistida por trasplante de condrocitos autólogos para la remodelación y reparación de defectos condrales en un modelo de conejo

Published: May 21, 2013
doi:

Summary

Se describe una técnica experimental para el tratamiento de defectos condrales en la articulación de la rodilla del conejo. La implantación de condrocitos autólogos sembrados en una matriz es un método bien aceptado para la remodelación y reparación de lesiones del cartílago articular que proporcionan resultados satisfactorios a largo plazo. Matrix asistida por el trasplante de condrocitos autólogos (MACT) ofrece un método de implantación estandarizada y clínicamente establecida.

Abstract

Defectos del cartílago articular se considera un problema de salud importante porque el cartílago articular tiene una capacidad limitada para la auto-regeneración 1. Lesiones del cartílago no tratadas conducen a dolor en curso, afectar negativamente a la calidad de vida y predisponer para la osteoartritis. Durante las últimas décadas, varias técnicas quirúrgicas se han desarrollado para el tratamiento de estas lesiones. Sin embargo, hasta ahora no era posible lograr una reparación completa en términos de cubrir el defecto de cartílago hialino articular o de proporcionar satisfactoria recuperación a largo plazo 2-4. Por lo tanto, las lesiones del cartílago articular siguen siendo un objetivo prioritario para las técnicas regenerativas como la ingeniería de tejidos. En contraste con otras técnicas quirúrgicas, que a menudo conducen a la formación de tejido fibroso o fibrocartilaginoso, Ingeniería de Tejidos apunta a restaurar completamente la compleja estructura y las propiedades del cartílago articular original utilizando el potencial condrogénico de las células trasplantadas. Rn los últimos desarrollos abren posibilidades prometedoras para las terapias de regeneración del cartílago.

El primer enfoque basado en células para el tratamiento de cartílago de grosor completo o lesiones osteocondrales se llevó a cabo en 1994 por Lars Peterson y Mats Brittberg que fue pionero en la implantación de condrocitos autólogos clínica (ACI) 5. Hoy en día, la técnica está bien establecido clínicamente para el tratamiento de grandes defectos del cartílago hialino de la rodilla, el mantenimiento de buenos resultados clínicos incluso 10 a 20 años después de la implantación 6. En los últimos años, la implantación de condrocitos autólogos se sometió a una rápida progresión. El uso de un tridimensional de colágeno-matriz artificial en el que las células se vuelven a plantar posteriormente se hizo más y más popular 7-9.

MACT comprende de dos procedimientos quirúrgicos: En primer lugar, con el fin de recoger los condrocitos, una biopsia de cartílago necesita ser realizada a partir de una zona de cartílago no soporte de peso de tél articulación de la rodilla. Entonces, los condrocitos se extraen, se purificaron y se expandieron a un número suficiente de células in vitro. Los condrocitos se sembraron a continuación sobre una matriz tridimensional y pueden ser posteriormente reimplantados. Cuando se prepara un implante de tejido modificado, la tasa de proliferación y la capacidad de diferenciación son cruciales para una exitosa regeneración de los tejidos 10. Se cree que el uso de una matriz tridimensional como un portador de células para apoyar estas características celulares 11.

El siguiente protocolo se resumir y demostrar una técnica para el aislamiento de condrocitos a partir de biopsias de cartílago, su proliferación in vitro y su siembra en una matriz en 3D (Condro-Gide, Biomateriales Geistlich, Wollhusen, Suiza). Finalmente, se describirá la implantación de las célula-matriz-constructos en defectos condrales creadas artificialmente de articulación de la rodilla de un conejo. Esta técnica se puede utilizar como un entorno experimentalpara experimentos adicionales de la reparación del cartílago.

Protocol

A. Cartílago biopsia (Cirugía habitación; pasos 1-5 en la sala de preparación no estéril) Realizar un control del peso final del conejo (conejo Blanco de Nueva Zelanda, hembra, 3,5-4,0 kg de peso corporal, 6 meses de edad) con el fin de ser capaz de dosis drogas correctamente y para supervisar peso posterior a la cirugía. Inducir la anestesia para el conejo mediante una inyección intravenosa de 10 mg / kg de propofol. Después de la intubación, mantener la anestesia con 1,5 mg / kg…

Representative Results

La técnica quirúrgica descrita permite un éxito en el aislamiento y la implantación de condrocitos autólogos en un defecto condral artificial. La configuración experimental dio como resultado una integración con éxito del implante en el cartílago circundante. Después de 12 semanas in vivo, el defecto condral se llenó por tejido de reparación con una superficie homogénea e intacto, lo que reduce el estrés de cizallamiento y el daño al implante (Figura 4).</stro…

Discussion

El protocolo presentado proporciona una técnica establecida 9,12,13 y fácilmente reproducible para aislar condrocitos autólogos para la posterior proliferación y re-implante en defectos del cartílago creados artificialmente en las rodillas de conejo. El uso de condrocitos autólogos para la remodelación y reparación de lesiones del cartílago articular ya está en uso clínico proporcionar resultados satisfactorios a largo plazo 6.

Los principales problemas como …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este proyecto fue financiado por la Asociación Alemana de Investigación (DFG, Excmo 4578/3-1).

Materials

Name of reagent/equipment Company Catalogue Number Comments
DMEM Biochrom AG F 0415
Collagenase A Roche 10 103 586 001 0.21 U/mg
Fetal calf serum (FCS) PAN Biotech GmbH 3702-P103009
Propofol Fresenius Kabi
Penicillin/Streptomycin Biochrom AG A 2213 10,000 U/ml/10,000 μg/ml
PBS Dulbecco (1X) Biochrom AG L1815
Ethanol (70%) Merck KgaA 410230
Trypsin-EDTA 0.25 %/0.02 % Biochrom AG L2163 in PBS w/o Ca2+, Mg2+
Fentanyl Delta Select GmBH 1819340
NaCl solution (0.9%) Bbraun 8333A193
Tissue culture dishes 100 mm/150 mm TPP AG 93100/93150 Growth area 60.1 mm2/147.8 mm2
Tissue culture flasks 25/75 mm2 TPP AG 90025/90075 25 mm2, 75 mm2
Centrifuge Tubes (50 ml) TPP AG 91050 Gamma-sterilized
Hemocytometer Brand GmbH+Co KG 717810 Neubauer
Trypan Blue Solution 0.4% Sigma-Aldrich L8154
Spray dressing (OpSite) Smith&Nephew 66004978 Permeable for water vapor
Chondro-GideÒ Geistlich Pharma AG 30915.5
Biopsy Punch pfm medical ag 48351
Tissucol Duo S Baxter 3419627 0.5 ml

References

  1. Albrecht, C., et al. Gene expression and cell differentiation in matrix-associated chondrocyte transplantation grafts: a comparative study. Osteoarthritis Cartilage. 19, 1219-1227 (2011).
  2. Pridie, K. H. A method of resurfacing osteoarthritic knee joints. J. Bone Joint Surg. Br. 41, 618-619 (1959).
  3. Johnson, L. L. Arthroscopic abrasion arthroplasty historical and pathologic perspective: present status. Arthroscopy. 2, 54-69 (1986).
  4. Steadman, J. R., Rodkey, W. G., Singelton, S. B., Briggs, K. K. Microfracture technique for full-thickness chondral defects: technique and clinical result. Operat. Tech. Orthop. 7, 300-304 (1997).
  5. Brittberg, M., et al. Treatment of deep cartilage defects in the knee with autologous chondrocyte transplantation. N. Engl. J. Med. 331, 889-895 (1994).
  6. Peterson, L., Vasiliadis, H. S., Brittberg, M., Lindahl, A. Autologous chondrocyte implantation: a long-term follow-up. Am. J. Sports Med. 38, 1117-1124 (2010).
  7. Nehrer, S., et al. Chondrocyte-seeded collagen matrices implanted in a chondral defect in a canine model. Biomaterials. 19, 2313-2328 (1998).
  8. Frenkel, S. R., Toolan, B., Menche, D., Pitman, M. I., Pachence, J. M. Chondrocyte transplantation using a collagen bilayer matrix for cartilage repair. J. Bone. Joint Surg. Br. 79, 831-836 (1997).
  9. Salzmann, G. M., et al. The dependence of autologous chondrocyte transplantation on varying cellular passage, yield and culture duration. Biomaterials. 32, 5810-5818 (2011).
  10. Frohlich, M., Malicev, E., Gorensek, M., Knezevic, M., Kregar Velikonja, N. Evaluation of rabbit auricular chondrocyte isolation and growth parameters in cell culture. Cell Biol. Int. 31, 620-625 (2007).
  11. Willers, C., Chen, J., Wood, D., Xu, J., Zheng, M. H. Autologous chondrocyte implantation with collagen bioscaffold for the treatment of osteochondral defects in rabbits. Tissue Eng. 11, 1065-1076 (2005).
  12. Vogt, S., et al. The influence of the stable expression of BMP2 in fibrin clots on the remodelling and repair of osteochondral defects. Biomaterials. 30, 2385-2392 (2009).
  13. Ueblacker, P., et al. In vivo analysis of retroviral gene transfer to chondrocytes within collagen scaffolds for the treatment of osteochondral defects. Biomaterials. 28, 4480-4487 (2007).
  14. Marlovits, S., Zeller, P., Singer, P., Resinger, C., Vecsei, V. Cartilage repair: generations of autologous chondrocyte transplantation. Eur. J. Radiol. 57, 24-31 (2006).
  15. Benya, P. D., Shaffer, J. D. Dedifferentiated chondrocytes reexpress the differentiated collagen phenotype when cultured in agarose gels. Cell. 30, 215-224 (1982).
  16. Rudert, M., Hirschmann, F., Wirth, C. J. Growth behavior of chondrocytes on various biomaterials. Orthopade. 28, 68-75 (1999).
  17. Hsu, S. H., et al. Evaluation of biodegradable polyesters modified by type II collagen and Arg-Gly-Asp as Tissue Engineering scaffolding materials for cartilage regeneration. Artificial Organs. 30, 42-55 (2006).
  18. Brun, P., Cortivo, R., Zavan, B., Vecchiato, N., Abatangelo, G. In vitro reconstructed tissues on hyaluronan-based temporary scaffolding. J. Mater. Sci. Mater. Med. 10, 683-688 (1999).
  19. Domm, C., Fay, J., Schunke, M., Kurz, B. Redifferentiation of dedifferentiated joint cartilage cells in alginate culture. Effect of intermittent hydrostatic pressure and low oxygen partial pressure. Orthopade. 29, 91-99 (2000).
  20. Kimura, T., Yasui, N., Ohsawa, S., Ono, K. Chondrocytes embedded in collagen gels maintain cartilage phenotype during long-term cultures. Clin. Orthop. Relat. Res. , 231-239 (1984).
  21. Kon, E., et al. Second-generation autologous chondrocyte implantation: results in patients older than 40 years. Am. J. Sports Med. 39, 1668-1675 (2011).
  22. Gavenis, K., Schmidt-Rohlfing, B., Mueller-Rath, R., Andereya, S., Schneider, U. In vitro comparison of six different matrix systems for the cultivation of human chondrocytes. In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 42, 159-167 (2006).
  23. Niemeyer, P., et al. Characteristic complications after autologous chondrocyte implantation for cartilage defects of the knee joint. Am. J. Sports Med. 36, 2091-2099 (2008).
  24. Tay, L. X., et al. Treatment outcomes of alginate-embedded allogenic mesenchymal stem cells versus autologous chondrocytes for the repair of focal articular cartilage defects in a rabbit model. The American Journal of Sports Medicine. 40, 83-90 (2012).
  25. Brittberg, M., Nilsson, A., Lindahl, A., Ohlsson, C., Peterson, L. Rabbit articular cartilage defects treated with autologous cultured chondrocytes. Clin. Orthop. Relat. Res. , 270-283 (1996).
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Berninger, M. T., Wexel, G., Rummeny, E. J., Imhoff, A. B., Anton, M., Henning, T. D., Vogt, S. Matrix-assisted Autologous Chondrocyte Transplantation for Remodeling and Repair of Chondral Defects in a Rabbit Model. J. Vis. Exp. (75), e4422, doi:10.3791/4422 (2013).

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