Summary

섬유소 혈전의 동종 간엽 줄기 세포의 주입에 의한 토끼의 무릎 관절의 골 연골 결함의 치료

Published: May 21, 2013
doi:

Summary

토끼의 무릎 관절 연골 결손의 치료를위한 실험 기법을 설명합니다. 연골 결손에 동종 간엽 줄기 세포의 이식은 조직 공학 분야의 유망한 개발을 제공합니다. 섬유소 세포 혈전의 준비<em> 체외에서</em> 주입하기위한 표준화 된 방법을 제공합니다.

Abstract

연골 관절 결함의 치료는 몇 년 동안 의사를 도전하고있다. 최근 몇 년 동안 관절 연골과 연골 하골의 상호 작용의 이해는 전체 연골 단위의 복원으로 증가 관심을 이끌어 냈다. chondral 병변에 비해 골 연골 결손의 재생은 훨씬 더 복잡하고 훨씬 더 큰 수술 및 치료 도전입니다. 손상된 조직은 표면 연골 층뿐만 아니라 연골 하골에 포함되지 않습니다. 이 osteochondrosis의 dissecans로 예를 들면 발생할 때 깊은 골 연골 손상, 결함의 전체 두께는 접합면을 복원하기 위해 교체해야합니다. 자격 치료 절차는 서로 다른 고유의 치유 잠재력 2이 두 개의 서로 다른 조직을 고려해야합니다. 지난 수십 년 동안 여러 가지 수술 적 치료 옵션이 등장하고 이미 임상 3 설립되었습니다 6.

자가 또는 동종 골 연골 이식은 관절 연골과 연골 하골의 구성 및 전체 골 연골 장치의 교체를 할 수 있습니다. 결함 표면 3,7,8 덮여 합동 유리 모양의 연골을 제공하는 것을 목표로 원통형의 골 연골 이식으로 채워집니다. 단점 사용할 이식, 공여부 이환율 (자가 이식)과 표면의 부조화의 제한되며 따라서이 방법의 응용 프로그램은 특히 큰 결함이 제한됩니다.

조직 공학 분야에서 새로운 접근이 재생 연골 치료에 유망한 가능성을 열었다. 자가 연골 세포의 이식은 전층 연골 병변의 치료를위한 첫 번째 셀을 기준으로 생물학적 접근 방식을 표시하고 현재 전세계도 10~20년 주입 9,10 후에 좋은 임상 결과와 함께 설정됩니다. 그러나 다에테이 기술은 연골 뼈 11을 포함하는 깊은 결함으로 병변의 모든 종류의 치료에 적합하지 않습니다.

샌드위치 기술은 조직 공학 5,6에서 현재의 접근 방식에 이식 뼈를 결합합니다. 이 조합은 혼자 연골 이식에서 보이는 한계를 극복 할 수있을 것 같습니다. 연골 결손 영역에 이식자가 골 후,자가 연골 세포와 시드 막 위 봉합 및 부상 사이트에 이식 토폴로지에 맞게 용이합니다. 물론, 이전의 뼈 재건은 추가 수술 시간과 자주도 추가 수술이 필요합니다. 또한, 현재까지 장기간 데이터가 12이 없습니다.

이식 추가 골없이 조직 공학 이식 세포의 연골 및 골 형성 가능성 인디언 관절 연골의 복잡한 구조와 특성을 복원하는 것을 목표로하고있다. HoweveR은 다시, 그것은 일반적으로 더 많거나 적은 재생에만 연골 조직이다. 추가 골 연골 손상은 특정 추가 처리가 필요합니다. 동종 /자가 세포를 파종 골 연골 결손의 다층 구조의 재생을 달성하기 위하여, 입체 조직 설계 제품은 좋은 재생 능력 11 제공 할 수 있습니다.

자가 연골 옆에 중간 엽 줄기 세포 (MSC)는 전층 연골 조직의 개발을위한 매력적인 대안이 될 것으로 보인다. 다수의 전임상 시험 관내 (in vitro)과 생체 내 연구에서, 중간 엽 줄기 세포는 뛰어난 조직 재생 가능성 13,14을 표시했다. 특히 연골 결손의 치료를위한 중간 엽 줄기 세포의 중요한 장점은 골 세포뿐만 아니라 연골 세포의 분화 할 수있는 능력을 가지고있다. 따라서, 그들은 잠재적 D의 다중 재생을 허용EFECT.

최근 몇 년 동안, 연골 재생 잠재력을 가진 여러 비계 따라서 개발되어 예비 결과에게 1,15-18을 약속으로 평가. 또한, 휴대 캐리어와 같은 섬유소 접착제 실험 연골의 기본 기술 중 하나가되었고 이미 성공적으로 여러 동물 연구에서 19-21, 심지어 최초의 인간 실험 22 사용되었습니다.

다음 프로토콜은 세포 배양의 후속 증식과 섬유소 세포 혈전에 대한 체외 모델에서 표준을 준비, 토끼의 골수에서 중간 엽 줄기 세포를 분리하는 실험 방법을 보여줍니다. 마지막으로, 토끼의 무릎 관절의 인공 연골 결손에 미리 설정된 섬유소 세포 혈전 주입하는 기술을 설명한다.

Protocol

중간 엽 줄기 세포의 분리에 대한 기증자 토끼의 A. 준비 (수술실) 세포는 남성 4개월의 나이에 뉴질랜드 화이트 (NZW) 토끼와 약 3kg의 체중에서 격리됩니다. 프로포폴 (10 ㎎ / ㎏ 체중 IV)로 마취를 유도하고 나트륨 pentobarbital (100 ㎎ / ㎏ 체중 IV)를 희생. 전기 어선과 뒷다리, 뒤 및 아랫배의 털을 면도 모피를 진공. 70 % 에탄올로 깨끗이 면도 영역을 소독. 조직과 …

Representative Results

설명 수술 기술은 인공 연골 결손에 동종 간엽 줄기 세포를 성공적으로 분리 및 주입을 허용합니다. 실험 장치는 주변 연골에 임플란트의 성공적인 통합 결과. 결함 주변의 연골에 비해 유사한 역학적 특성과 유사한 내구성 수리 조직에 의해 채워졌다. 섬유소 셀 리넨은 연골 결손 (그림 3)과 같은 크기를 가지고 사전 뚫고 구멍을 가진 살균 접시에 체외에서</e…

Discussion

최근 몇 년 동안, 복잡한 관절 연골 결손 치료의 가능성 – 같은 osteochondritis의 dissecans, 괴사와 외상으로 인한 것과 같은이 – 조직 공학 방법으로는 더 매력적되었다. 앞서 언급 한 병리 기관에서 조직 손상은 연골 뼈까지 확장 서로 다른 고유의 치유 능력 1 특징으로 두 개의 조직을 포함한다. 연골 관절 손상 11,23의 병원성 프로세스 연골 하골의 역할에 대한 관심이 증가가 있습니다….

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 프로젝트는 독일 연구 협회 (부여 HE 4578/3-1)에 의해 부분적으로 FP7 유럽 연합 (EU) 프로젝트 "감바"NMP3-SL-2010-245993에 의해 투자되었다.

Materials

Name of reagent/equipment Company Catalogue Number Comments
DMEM Biochrom AG F 0415  
FCS PAN Biotech GmbH 0401  
Propofol Fresenius Kabi    
Penicillin/Streptomycin Biochrom AG A 2210 1,000 units/10 μg/μl in 0.9% NaCl
PBS Dulbecco (1X) Biochrom AG L1815  
Ethanol (70%) Merck KGaA 410230  
Trypan Blue Solution (0.4%) Sigma-Aldrich T8154  
Biocoll Separation Sol. Biochrom AG L6115 Isotonic solution Density: 1,077 g/ml
Trypsin-EDTA 0.05% Invitrogen GmbH 25300-054  
Fentanyl DeltaSelectGmBH 1819340  
NaCl solution (0.9%) BBraun 8333A193  
Syringes (Injekt) BBraun 4606108V  
Needles (Sterican) BBraun 4657519  
Forceps (blunt/sharp) Aesculap    
Scissors Aesculap    
Scalpels Feather Safety Razor Co 02.001.30.022  
Pipettes research Eppendorf    
Bone Cutter Aesculap    
Tissue culture dishes 100 mm/150 mm TPP AG 93100/93150 Growth area 60.1 mm2/147.8 mm2
Tissue culture flasks 25/75 mm2 TPP AG 90025/90075 25 mm2, 75 mm2
Centrifuge Tubes (50 ml) TPP AG 91050 Gamma-sterilized
CO2 Incubator Forma Scientific Inc.    
Cell culture laminar flow hood Hera Safe Heraeus Instruments    
Sterile saw Aesculap    
Centrifuge Megafuge 2.0 R Heraeus Instruments    
Hemocytometer Brand GmbH+Co KG 717810 Neubauer
Air operated power drill Aesculap    
TISSUCOL-Kit 1.0 ml Immuno Baxter 2546648  
Fibers (4-0 Monocryl, 4-0 Vicryl) Ethicon    
Spray dressing (OpSite) Smith&Nephew 66004978 Permeable for water vapor

References

  1. Kon, E., et al. Novel nano-composite multilayered biomaterial for osteochondral regeneration: a pilot clinical trial. The American Journal of Sports Medicine. 39, 1180-1190 (2011).
  2. Kon, E., et al. Orderly osteochondral regeneration in a sheep model using a novel nano-composite multilayered biomaterial. Journal of Orthopaedic Research: Official Publication of the Orthopaedic Research Society. 28, 116-124 (2010).
  3. Hangody, L., et al. Autologous osteochondral grafting–technique and long-term results. Injury. 39, 32-39 (2008).
  4. Marcacci, M., et al. Arthroscopic autologous osteochondral grafting for cartilage defects of the knee: prospective study results at a minimum 7-year follow-up. The American Journal of Sports Medicine. 35, 2014-2021 (2007).
  5. Ochs, B. G., et al. Remodeling of articular cartilage and subchondral bone after bone grafting and matrix-associated autologous chondrocyte implantation for osteochondritis dissecans of the knee. The American Journal of Sports Medicine. 39, 764-773 (2011).
  6. Aurich, M., et al. Autologous chondrocyte transplantation by the sandwich technique. A salvage procedure for osteochondritis dissecans of the knee. Unfallchirurg. 110, 176-179 (2007).
  7. Williams, R. J., Ranawat, A. S., Potter, H. G., Carter, T., Warren, R. F. Fresh stored allografts for the treatment of osteochondral defects of the knee. The Journal of Bone and Joint Surgery. American Volume. 89, 718-726 (2007).
  8. Szerb, I., Hangody, L., Duska, Z., Kaposi, N. P. Mosaicplasty: long-term follow-up. Bull. Hosp. Jt. Dis. 63, 54-62 (2005).
  9. Brittberg, M., et al. Treatment of deep cartilage defects in the knee with autologous chondrocyte transplantation. N. Engl. J. Med. 331, 889-895 (1994).
  10. Peterson, L., Vasiliadis, H. S., Brittberg, M., Lindahl, A. Autologous chondrocyte implantation: a long-term follow-up. Am. J. Sports Med. 38, 1117-1124 (2010).
  11. Gomoll, A. H., et al. The subchondral bone in articular cartilage repair: current problems in the surgical management. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 18, 434-447 (2010).
  12. Steinhagen, J., et al. Treatment of osteochondritis dissecans of the femoral condyle with autologous bone grafts and matrix-supported autologous chondrocytes. Int. Orthop. 34, 819-825 (2010).
  13. Guo, X., et al. Repair of large articular cartilage defects with implants of autologous mesenchymal stem cells seeded into beta-tricalcium phosphate in a sheep model. Tissue Eng. 10, 1818-1829 (2004).
  14. Centeno, C. J., et al. Increased knee cartilage volume in degenerative joint disease using percutaneously implanted, autologous mesenchymal stem cells. Pain Physician. 11, 343-353 (2008).
  15. Niederauer, G. G., et al. Evaluation of multiphase implants for repair of focal osteochondral defects in goats. Biomaterials. 21, 2561-2574 (2000).
  16. Nagura, I., et al. Repair of osteochondral defects with a new porous synthetic polymer scaffold. J. Bone. Joint Surg. Br. 89, 258-264 (2007).
  17. Schlichting, K., et al. Influence of scaffold stiffness on subchondral bone and subsequent cartilage regeneration in an ovine model of osteochondral defect healing. The American Journal of Sports Medicine. 36, 2379-2391 (2008).
  18. Schagemann, J. C., et al. Cell-laden and cell-free biopolymer hydrogel for the treatment of osteochondral defects in a sheep model. Tissue Engineering. Part A. 15, 75-82 (2009).
  19. Vogt, S., et al. The influence of the stable expression of BMP2 in fibrin clots on the remodelling and repair of osteochondral defects. Biomaterials. 30, 2385-2392 (2009).
  20. Schillinger, U., et al. A fibrin glue composition as carrier for nucleic acid vectors. Pharm. Res. 25, 2946-2962 (2008).
  21. Ahmed, T. A., Giulivi, A., Griffith, M., Hincke, M. Fibrin glues in combination with mesenchymal stem cells to develop a tissue-engineered cartilage substitute. Tissue Engineering. Part A. 17, 323-335 (2011).
  22. Haleem, A. M., et al. The Clinical Use of Human Culture-Expanded Autologous Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells Transplanted on Platelet-Rich Fibrin Glue in the Treatment of Articular Cartilage Defects: A Pilot Study and Preliminary Results. Cartilage. 1, 253-261 (2010).
  23. Pape, D., Filardo, G., Kon, E., van Dijk, C. N., Madry, H. Disease-specific clinical problems associated with the subchondral bone. Knee Surg Sports Traumatol. Arthrosc. 18, 448-462 (2010).
  24. Shirazi, R., Shirazi-Adl, A. Computational biomechanics of articular cartilage of human knee joint: effect of osteochondral defects. Journal of Biomechanics. 42, 2458-2465 (2009).
  25. Jorgensen, C., Gordeladze, J., Noel, D. Tissue Engineering through autologous mesenchymal stem cells. Curr. Opin. Biotechnol. 15, 406-410 (2004).
  26. Chen, F. H., Tuan, R. S. Mesenchymal stem cells in arthritic diseases. Arthritis Res. Ther. 10, 223 (2008).
  27. Le Blanc, K., Tammik, C., Rosendahl, K., Zetterberg, E., Ringden, O. HLA expression and immunologic properties of differentiated and undifferentiated mesenchymal stem cells. Exp. Hematol. 31, 890-896 (2003).
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Berninger, M. T., Wexel, G., Rummeny, E. J., Imhoff, A. B., Anton, M., Henning, T. D., Vogt, S. Treatment of Osteochondral Defects in the Rabbit’s Knee Joint by Implantation of Allogeneic Mesenchymal Stem Cells in Fibrin Clots. J. Vis. Exp. (75), e4423, doi:10.3791/4423 (2013).

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