蛛网膜下腔出血的小鼠模型
Summary
蛛网膜下腔出血的威利斯穿孔腔内圆一个标准化的小鼠模型进行描述。血管穿孔和蛛网膜下腔出血是由颅内压监测监控。除了各种重要的参数被记录和控制，以保持生理条件。
Abstract
在这个视频发布蛛网膜下腔出血（SAH）的标准化小鼠模型。出血是由威利斯穿孔（CWP）的血管内圆和诱发颅内压（ICP）监测证实。从而在周围动脉循环蛛网膜下腔空间和小脑裂隙均匀血液分布的实现。体温升高，全身血压，心脏速率和血红蛋白饱和度：动物生理学是通过气管插管，机械通气，并连续在线监测的各种生理和心血管参数维护。由此，脑灌注压可以紧密监视导致淤血较少可变容积。这允许一个更好的标准化小鼠血管内丝穿孔，使整个模型高度重复性。因此，它是现成的野生型和遗传学药理和病理生理研究LY基因小鼠。
Introduction
蛛网膜下腔出血是脑卒中亚型的患者最少的有利结果 ：出血后1个月内的患者40％死亡，幸存者很少有临床有利的结果。
绝大多数自发SAHS（80％）是由颅内动脉瘤，沿前，后交通动脉，基底动脉和大脑中动脉（MCA）2大多位于破裂引起的。
这样的动脉瘤是困难的动物模型，因此，蛛网膜下腔出血动物模型中，不是由注入的血液进行进入蛛网膜下腔/脑室或蛛网膜下腔血管腔内穿孔。
自体血注入枕大池是容易执行和可重复性的血容量可直接控制3。不幸的是，蛛网膜下腔出血病理生理机制的某些方面， 例如：血管损伤，不能由该程序进行建模。诱导SAH的另一种技术方法是一种脑池内静脉4的开口。
然而，所述管腔内CWP在MCA分支似乎是过程，模型在人类的病理生理学最密切5。该方法被开发和大鼠首先描述由Bederson等人，并在同一时间通过Veelken和同事6,7。后来腔内穿孔模型适应于小鼠8,9。灯丝被插入到颈外动脉（ECA）和通过内颈动脉（ICA）推进到颅底。在MCA的分支点处的灯丝刺穿容器和诱导出血进入蛛网膜下腔的颅底。血液然后分发到沿裂缝和血管的剩余蛛网膜下腔。出血是由血凝块形成在穿孔的部位停止了，但rebleedings，WHICH往往是不利的患者10，就可能发生。因此，血管内纤维模型在过去的几年中成为一种广泛使用的SAH模型。最经常提到的缺点灯丝穿孔模型的是，出血量不能直接控制，因此可能是可变的。这种变化可以显著由动物生理学和后出血ICP严格控制减少。
老鼠有很大的优势可用大量转基因株。然而，由于它们的小尺寸的外科手术往往比在较大的物种， 例如大鼠或兔子更加复杂。因此，对于大鼠小鼠开发的技术的按比例缩小往往不会导致所期望的结果， 例如为小鼠具有非常有限的体重和血液量的非侵入性技术血压和血液气体分析以及对血红蛋白饱和度和心脏速率监测必须施加只要有可能。因此，当前出版物的目的是描述灯丝穿孔模型的蛛网膜下腔出血小鼠和演示了如何这种模式可以在一个标准化的和高度可重复的方式进行。
Protocol
Representative Results
Discussion
蛛网膜下腔出血后的治疗方案是稀缺的，大多inefficacious。因此需要后出血性脑损伤的病理生理机制还有待进一步了解，以确定新的治疗靶点，开发新的治疗方法。标准化和转基因动物， 如小鼠，重现性好动物模型对于这样的调查是至关重要的。该CWP模式已经成为一种广泛使用的型号为蛛网膜下腔出血，因为它类似于人类中的病理生理密切，但是，它在小鼠的使用是由低重复性和高际变化?…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
目前的研究是由Solorz-扎克研究基金会资助的。
Materials
| Equipment | |||
| operation microscope | Leica | KL2500 | |
| isoflurane vaporizer | Harvard Instruments | Continuous Flow Vaporizer | |
| respirator | Hugo Sachs | Minivent 845 | |
| microcapnograph | Hugo Sachs | Type 340 | |
| temperature controller | FHC | DC Temperature Controller | |
| dental drill | Paggen | Labset- N | |
| ICP monitor | Codman | ICP monitor | |
| blood pressure monitor | AD Instruments | Bridge Amp FE221 | |
| syringe pump | World Precision Instruments | SP101IZ | |
| pulsoximeter | Kent Scientific | MouseSTAT | |
| LDF | Perimed | Periflux 5000 | |
| analog data monitor | AD Instruments | Power Lab 16/35 | |
| Material | |||
| cement for ICP probe fixation | Speiko | Carboxylate cement | |
| glue for LDF probe fixation | Bob Smith Industries | Cyanoacrylate glue (Maxi Cure and Insta Set) | |
| venous catheter | Johnson & Johnson | Jelco winged i.v. catheter; REF 4076 | modified intubation tube |
| tubing for femoral catheter | Smiths Medical | Fine Bore Polythene Tubing; ID 0.28 mm OD 0.61 mm; REF 800/100/100 | cut to 30 cm length |
| filament for vessel perforation | Ethicon | Prolene 5-0 | cut to 12 mm length |
| surgical equipment | Fine Scientific Instruments | forceps medical #5, vessel scissors 8 cm, microclip 4 mm jaw |
References
- Cahill, J., Zhang, J. H. Subarachnoid hemorrhage: is it time for a new direction. Stroke. 40, 86-87 (2009).
- van Gijn, J., Kerr, R. S., Rinkel, G. J. Subarachnoid haemorrhage. Lancet. 369, 306-318 (2007).
- Lin, C. L., et al. A murine model of subarachnoid hemorrhage-induced cerebral vasospasm. J. Neurosci. Methods. 123, 89-97 (2003).
- Altay, T., et al. A novel method for subarachnoid hemorrhage to induce vasospasm in mice. J. Neurosci. Methods. 183, 136-140 (2009).
- Feiler, S., Friedrich, B., Scholler, K., Thal, S. C., Plesnila, N. Standardized induction of subarachnoid hemorrhage in mice by intracranial pressure monitoring. J. Neurosci. Methods. 190, 164-170 (2010).
- Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke. 26, 1086-1091 (1995).
- Veelken, J. A., Laing, R. J., Jakubowski, J. The Sheffield model of subarachnoid hemorrhage in rats. Stroke. 26, 1279-1283 (1995).
- Kamii, H., et al. Amelioration of vasospasm after subarachnoid hemorrhage in transgenic mice overexpressing CuZn-superoxide dismutase. Stroke. 30, 867-871 (1999).
- Parra, A., et al. Mouse model of subarachnoid hemorrhage associated cerebral vasospasm: methodological analysis. Neurol. Res. 24, 510-516 (2002).
- Broderick, J. P., Brott, T. G., Duldner, J. E., Tomsick, T., Leach, A. Initial and recurrent bleeding are the major causes of death following subarachnoid hemorrhage. Stroke. 25, 1342-1347 (1994).
- Thal, S. C., Plesnila, N. Non-invasive intraoperative monitoring of blood pressure and arterial pCO2 during surgical anesthesia in mice. J. Neurosci. Methods. 159, 261-267 (2007).
- Hockel, K., Trabold, R., Scholler, K., Torok, E., Plesnila, N. Impact of anesthesia on pathophysiology and mortality following subarachnoid hemorrhage in rats. Exp. Transl. Stroke Med. 4, 5 (2012).
- Wang, Z., Schuler, B., Vogel, O., Arras, M., Vogel, J. What is the optimal anesthetic protocol for measurements of cerebral autoregulation in spontaneously breathing mice?. Exp. Brain Res. 207, 249-258 (2010).
- Schwartz, A. Y., Masago, A., Sehba, F. A., Bederson, J. B. Experimental models of subarachnoid hemorrhage in the rat: a refinement of the endovascular filament model. J. Neurosci. Methods. 96, 161-167 (2000).
- Feiler, S., Plesnila, N., Thal, S. C., Zausinger, S., Scholler, K. Contribution of matrix metalloproteinase-9 to cerebral edema and functional outcome following experimental subarachnoid hemorrhage. Cerebrovasc. Dis. 32, 289-295 (2011).
