성인의 뇌에서 수확 한 신경 줄기 세포는 신경 시스템 개발의 기초 연구에서 재생 의학의 잠재적 인 임상 응용 프로그램을 탐험에 이르기까지 다양한 애플리케이션에 활용 증가하고있다. 이 실험 결과를 소리를하는 것이 중요합니다 이러한 세포를 성장하는 데 사용되는 분리 및 배양 조건에서 엄격한 통제를한다.
최근 연구는 중추 신경계 (CNS) 재생 및 종양 줄기 세포의 인구 (SC에) 성인 뇌 내 거주자를 포함 것을 보여줍니다. 그러나 메커니즘이 정상적으로 정지 세포가 적절한 신경망의 기능뿐만 아니라, 신경 퇴행성 프로세스의 부상 및 완화 회복에 자신의 역할을 보장하기 위해 고용은 조금 이해된다. 이러한 세포는 혈관 및 면역 조절 성 시스템 모두로부터 신호들을 포함한 서스테인 환경을 제공 「틈새」이라고도 영역에 상주. 알 수없는 요인을 제외 정의 배양 조건에서 CNS의 SC와의 분리, 유지 보수 및 차별화, 따라서 자신의 생체 내 행동에 대한 통찰력을 제공하고, 약물 또는 유전자에 의한 치료에 액세스 할 수 있습니다. 여기에서 우리는 성인 뇌의 특정 영역에서 CNS의 SC와의 문화를 생성하는 방법에 대한 자세한 정보를 제공하고 자신의 개발을 평가하는 접근신경 세포, 성상 세포, 그리고 체외에서 희소 돌기 아교 세포에 ifferentiation 가능성. 이 기술은 개별 SC에 자신의 자손을 연구하기 위해 시각화 할 수있는 단일 층 문화로 균일 한 세포 인구를 산출한다. 게다가, 다른 동물 모델 시스템과 임상 샘플을 가로 질러인가 될 수 손상된 성인 신경계 재생 반응을 예측하기 이전에 사용된다.
한 세기 이상 전에 라몬 Y.를 Cajal에 의해 뇌 cytoarchitecture의 기본 관찰에 의해 규정 신경 생물학의 중심 교리는, 사춘기가 CNS 1에서 발견되는 신경 네트워크의 복잡성을 주어진 후 신경이 어려울 것을 가졌다. 1960 년대에 알트만의 작품, 그리고 나중에 카플란, 3 H-티미 딘이 실제로 뉴런은 성인 뇌의 서로 다른 영역에서 생성되고 있었다 나타내는 성숙한 신경 세포에서 발견 될 수 있다는 것을 입증에도 불구하고, 교리는 2, 3을 유지하는 것을 계속했다. 증거는 가수 두뇌 4에 존재하는 뉴런의 수의 계절적 변화를 설명 Nottebohm의 연구를 탑재하는 것을 계속했다. 그것은 1999 년까지되지 않았을 때 쥐의 연관 학습 과제의 성능뿐만 아니라 Kornack 및 Rakic 시연의 관측과 해마 증가 뉴런의 생성에 굴드 등. 출판 일딸랑 딸랑 소리는 덜 엄격한, 더 플라스틱 뇌의 개념이, 5 인식 된 성인 짧은 꼬리 원숭이, 6에 신경을 계속했다.
이 새로이 생성 된 신경 세포의 세포 소스에 대한 검색은 7 벽감으로 불리는 뇌의 영역에있는 줄기 세포 (SC에)의 이산 인구의 발견으로 이어질. subventricular 영역과 해마의 하위 세부 영역은 두 가지 주요 신경성 지역 8,9로 간주됩니다. 이 위치에서 분리 된 세포는 고전적인 배아 또는 태아의 파생으로 SC의 특성,자가 재생과 분화 가능성을 표시합니다. 신경줄 기세포 (NSCs의)의 경우, 이들은 뉴런, 아스트로 사이트, 및 희소 돌기 아교 세포로 분화 될 수있다. 또한, 이러한 SCS는 이러한 중간 필라멘트 단백질 네 스틴 10 태아 NSC 마커에 대한 긍정적 인 얼룩. 최근의 작업은 SC에이 t에 한정되지 않을 수 있음을 강조지역 우와, 그리고이 사실에 단단히 혈관 (11)와 관련된 세포의 대부분 대기 인구로 뇌 전반에 걸쳐 현지화.
SC에가 부상에 응답 동원 관측은 신경 퇴행성 질환 및 뇌졸중 (12, 13)에서 복구를 돕기 위해 회생 용으로 이들 세포를 이용할 수 있다는 가능성을 시사한다. 따라서 골아 세포, 연골 세포 및 지방 세포 (14)가 될 가능성이있는 혈관 주위 세포로 발견되는 중간 엽 줄기 세포 (MSC들)이 결합 조직의 치유에 재생하는 역할 달리 아니다. 그러나 NSCs의 일상적인 흡인 및 밀도 구배 원심 분리 기술에 의해 골수에서 중간 엽 줄기 세포와 동일하게하여 수확 할 수없고 이후자가 세포 기반 치료에 활용. 결과적으로, 그러한의 emb 유래 태아 NSCs의 또는 신경 전구체의 사용과 같은 셀의 다른 소스ryonic 줄기 세포가 광범위하게 성공 (15)의 학위를 변화와 동물의 질병과 부상의 모델을 탐구하고 있습니다. 체세포 소스를 이용하여 유도 만능 줄기 세포 기술은 제한된 가용성 및 배아 세포와 태아 조직 (16)의 사용에 대한 윤리적 문제를 극복하고, 응용 프로그램의 광범위한 치료에 유용 세포 기반 치료법을 생산하는 또 다른 잠재적 인 수단을 제공합니다. 그러나, 이러한 연구 결과의 임상 번역 (17, 18)뿐만 아니라, 규제 통관에 구불 구불 한 경로를 접근 SC 기반 치료와 함께 다양한 신경 학적 조건을 치료하는 투쟁에서와 같이, 어려운 작업이 될 입증되었습니다. 다른 방법으로, 특정 약물 치료의 도입은 NSC의 숫자를 조절하고 파킨슨 질환과 뇌졸중의 19 모델의 회복을 촉진 할 수있다. 전략은 효과적으로 이러한 세포를 조작하는 방법을 이해 할 수있는 어떤접근 체외 시스템이 필요합니다.
NSCs의의 문화는 neurosphere를로 알려진 집계 문화, 또는 단일 층 8,20로도 수행 할 수 있습니다. 두 기술은 널리 다 능성 전구 물질의 확장을 제공 정의 배양 조건, 유사 분열 물질 소스로 표피 성장 인자 (EGF) 또는 기본 섬유 아세포 성장 인자 (bFGF의)의 예 사용의 설립을 허용, 사용되어왔다. neurosphere 배양 고립 셀 분류 클론 번식 능력을 연구에 더 적합 할 수 있지만, 시스템 (21)은 팽창시 세포의 혼합 집단을 생성하는 것으로 나타났다. 또, neurosphere를의 밀폐 구조는 세포의 약리 조작 비실용적하게하고, 이러한 요인이있을 수 영향 해석 인해 neurosphere 자체 내에 설립 미시로 혼동 할 수있다. 단층 배양, 다른 한편으로는, 일 수있다SC의 성장과 분화를 조절하고 특히이 세포 집단을 대상으로 새로운 화합물을 발견 할 수있는 기회를 여는 신호 전달 메커니즘을 탐구 할 수있는 강력한 도구를 제공하고, 작은 분자 라이브러리의 높은 처리량 화면에 사용.
결과적으로, 재현성 뇌 그 상이한 영역에서 성인 NSCs의 배양을 생성하는 기능은 중추 신경계 (CNS)의 개발 연구로부터 신규 한 재생 의료 방법을 탐구에 이르는 연구 광범위한 애플리케이션에 사용될 수있다 . 여기에 제시된 프로토콜은 해부 성인 쥐의 뇌에서 분리 CNS의 SC와의 차별화의 잠재력을 평가하는 방법을 보여줍니다.
성공적으로 분리, 확장, 성인의 뇌에서 신경 줄기 세포의 분화에 중요한 단계의 대부분은 표준 조직 배양 기술에 공통으로 공유됩니다. 명심하는 목적은 성인의 뇌에서 분리 NSCs의 가능한 자신의 생체 내 특성 (그림 2,1)만큼을 유지해야한다는 것입니다. 종종 필요한주의와 적절한 속도 사이에 균형을 공격해야합니다. 두개골에서 뇌의 분리와 관심은 관심 영역의 식별이 훨씬 ?…
The authors have nothing to disclose.
헬름홀츠 협회의 이니셔티브 및 네트워크 기금, 그 밖의 Kroener-는 Fresenius 재단에서 부여하고, 도이치 Forschungsgemeinschaft에서 부여를 통해 이미징 및 치료 환경 대사 질환, (-이 작품은 헬름홀츠 얼라이언스 ICEMED으로 (부분적으로) 투자되었다 SFB 655 : 조직에 세포).
6-well tissue culture dishes | BD Biosciences | 353934 | ||
Poly-L-ornithine | Sigma-Aldrich | P-3655 |
5 mg/ml stock solution prepared in double distilled water (Stable for several months at -20 °C). Working concentration 0.5 mg/ml in water (Stable for 1 month at 4 °C). |
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Fibronectin | R&D Systems | 1030-Fn | Do not agitate stock solution | |
Filtration Apparatus | Corning Life Sciences | 430769 | ||
DMEM/F-12 | Mediatech | 10-090-CV | See note below for complete N2 media preparation | |
Apo-transferrin | Sigma-Aldrich | T-2036 | ||
Insulin | Sigma-Aldrich | I-0516 | ||
Putrescine | Sigma-Aldrich | P-5780 | 1 M stock solution in ddH2O (Stable at 20 °C for 6 months) | |
Sodium Selenite | Sigma-Aldrich | S-5261 | 500 µM stock solution in ddH2O (Stable at -20 °C for 6 months) | |
Progesterone | Sigma-Aldrich | P-8783 | 100 µM stock solution in ethanol (Stable at -20°C for 6 months) | |
Penicillin/Streptomycin | Invitrogen | 15140-122 | ||
Phosphate Buffered Saline | Mediatech | 21-040-CV | ||
Basic Fibroblast Growth Factor (bFGF) | R&D Systems | 233-FB | Working concentration 20 ng/ml | |
Delta4 (Dll4) | R&D Systems | 1389-D4 | Working concentration 500 ng/ml | |
Angiopoetin 2 (Ang2) | R&D Systems | 623-AN | Working concentration 500 ng/ml | |
JAK Inhibitor | Calbiochem | 420099 | Working concentration 200 nM | |
Bovine Serum Albumin | Sigma-Aldrich | A-2058 | ||
15- and 50-ml Conical tubes | Corning Life Sciences | 430053, 430829 | ||
Other necessary items include: General dissection instruments, including razor blade and forceps, Adult rat (3-6 months old; Sprague-Dawley or Long Evans), CO2 intoxication chamber, Laminar flow hood for cell culture and incubator Incubator (humidified, 37 °C, 5% CO2, 5% O2). Note: For complete N2 media preparation, to one bottle of DMEM/F-12 (500 ml) add 0.05 g of apotransferin, 0.0125 g of insulin (freshly predissolved in 1 ml of 10 mM NaOH), 50 μl of putrescine, 30 μl of sodium selenite, 100 μl of progesterone stocks, and 5 ml of penicillin/streptomycin solution. Adjust pH to 7.2, if needed. Filter-sterilize and store at 4 °C for up to 3 weeks and protect from light. | ||||
[header] | ||||
Immunofluorescence Reagents Table | ||||
Paraformaldehyde | Electron Microscopy Sciences | 15719 | ||
Normal Donkey Serum (NDS) | Sigma-Aldrich | D-9663 | ||
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T-8787 | ||
4,6-Diamidino-2-phenylindole (DAPI) | Sigma-Aldrich | D-8417 | 5 mg/ml stock solution in methanol | |
[header] | ||||
Primary Antibody Table | ||||
Nestin | Chemicon | MAB353 |
Dilution Factor: 1:400 Species: Mouse IgG1 |
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Hes3 | Santa Cruz | sc-25393 |
Dilution Factor: 1:100 Species: Rabbit IgG |
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Sox2 | R&D Systems | MAB2018 |
Dilution Factor: 1:100 Species: Mouse IgG2a |
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CNPase | Chemicon | MAB326 |
Dilution Factor: 1:200 Species: Mouse IgG1 |
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β-tubulin III (TUJ1) | R&D Systems | MAB1195 |
Dilution Factor: 1:500 Species: Mouse IgG2a |
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Glial Fibrillary Acidic Protein (GFAP) | Dako North America | Z0334 |
Dilution Factor 1:500 Species: Rabbit |
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[header] | ||||
Secondary Antibody Table | ||||
Alexa 568 | Invitrogen | A-21124 |
Dilution Factor: 1:200 Species: Goat anti Mouse IgG1 |
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Alexa 488 | Invitrogen | A-21131 |
Dilution Factor: 1:200 Species: Goat anti Mouse IgG2a |
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Cy5 | Jackson ImmunoResearch | 59883 |
Dilution Factor: 1:200 Species: Goat anti Rabbit |