Summary

Intralymphatic Immunterapi og vaksinasjons i Mus

Published: February 02, 2014
doi:

Summary

Profylaktisk og terapeutisk vaksinasjon ofte ikke klarer å stimulere sterke immunreaksjoner på grunn av uken drenering av vaksinen til lymfeknuter og dermed dårlig involvering av immunceller. Ved direkte tilførsel av vaksinen til lymfeknuter, såkalt intralymphatic injeksjon, kan vaksineeffekt forbedres være sterkt og vaksinedoser kan reduseres.

Abstract

Vaksiner er vanligvis injiseres subkutant eller intramuskulært for stimulering av immunresponser. Suksessen til dette krever effektiv drenering av vaksine til lymfeknuter der antigenpresenterende celler kan samhandle med lymfocytter for generering av de ettersøkte immunresponser. Styrken og den type immunresponser induseres også avhenge av tettheten eller frekvensen av vekselvirkninger, så vel som mikromiljøet, spesielt innholdet av cytokiner. Som bare en liten brøkdel av perifert vaksiner når lymfeknutene, ble vaksinasjoner av mus og mennesker utført ved direkte injeksjon av vaksine i lyske lymfeknuter, dvs. intralymphatic injeksjon. Hos mennesker er prosedyren veiledet av ultralyd. Hos mus er en liten (5-10 mm) innsnitt gjort i det inguinale region av anesteserte dyr, lymfeknute er lokalisert og immobilisert med tang, og et volum på 10-20 pl av vaksine injiseres under visuell kontroll.Snittet er stengt med en enkelt søm ved hjelp av kirurgiske sting. Mus ble vaksinert med plasmid-DNA, RNA, peptid, protein, partikler og bakterier, så vel som hjelpestoffer, og sterk forbedring av immunresponser mot alle typer vaksiner ble observert. Den intralymphatic metode for vaksinasjon er spesielt aktuelt i situasjoner hvor konvensjonell vaksinasjon produserer tilstrekkelig immunitet eller hvor mengden av tilgjengelig vaksine er begrenset.

Introduction

Vaksiner er vanligvis injiseres subkutant eller intramuskulært for stimulering av immunresponser. Suksessen med denne fremgangsmåten krever effektiv drenering av vaksine til lymfeknuter hvor antigen-presenterende celler kan kommunisere med lymfocytter for generering av T-og B-celle responser. I tillegg, styrken og typen av immunresponser induseres også avhenge av tettheten eller hyppigheten av slike vekselvirkninger, så vel som mikromiljøet i seg selv, spesielt innholdet av cytokiner. Ettersom bare en liten brøkdel av en vaksine injiseres inn i en perifert vev når en lymfeknute, vaksiner for mus og mennesker ved direkte injeksjon av vaksinen i lymfeknuter, i stedet ble immunresponser er generert, er blitt utført. Hos mennesker er prosedyren styrt av ultralyd, en prosedyre som også benyttes for administrering av avbildningsmidler for visualisering og diagnostisering i lymfesystemet. Hos mus er prosedyren invasiv. Her en liten (5-10 mm) incision er laget i det inguinale region av anesteserte dyr 1, er lymfeknute lokalisert og immobilisert med tang, og et volum på 10-20 pl av vaksine injiseres under visuell kontroll, 10 pl brukes for første injeksjoner, og i unge mus med små lymfeknuter, mens 20 pl kan injiseres i lymfeknuter av eldre eller allerede primede mus, som har større lymfeknuter. Snittet kan lukkes med en enkelt søm ved hjelp av kirurgiske sting. Ved denne metoden, er mus vaksinert med plasmid-DNA 2,3, messenger RNA til 4, 1,3,5,6 peptid, protein 7-10, partikler 11, 12 bakterier, så vel som hjelpestoffer 7,13, og sterk forbedring av immun respons mot alle typer vaksiner har blitt observert. Den intralymphatic metode for vaksinasjon er spesielt aktuelt i situasjoner hvor konvensjonell vaksinasjon produserer tilstrekkelig immunitet eller hvor mengden av tilgjengelig vaksine er begrenset eller very kostbart. Hos menneske har intralymphatic metode for immunisering blitt brukt til allergi pasienter 14,15 eller til pasienter med kreft 16-21. Selv om den nåværende oppfatning er at den intralymphatic metoden er mer omfattende enn andre injiserbare metoder slik som intramuskulære og subkutane injeksjoner, er den smerteopplevelse som ikke er høyere enn etter en venepunksjon 15. Det er forventet at intralymphatic vaksinering vil bli et alternativ eller supplement til andre metoder for profylaktisk og spesielt terapeutiske vaksiner. Denne artikkelen beskriver i detalj hvordan prosedyren ifølge intralymphatic vaksinering blir utført i mus. Alle prosedyrer er beskrevet, ble godkjent av Cantonal Veterinær Agency of Zurich og utført i henhold sveitsiske føderale retningslinjer og direktiver om vern av dyr som brukes til vitenskapelige formål.

Protocol

En. Anestesi av Mus Forbered bedøvelse ved å blande ketamin (dissosiativ bedøvelse) og xylazin (beroligende og smertestillende) i saltvann. Konsentrasjonene av ketamin og xylazin i den endelige oppløsning er 12,5 og 2 mg / ml, henholdsvis. Injiser anestetika til mus ved intraperitoneal administrering ved hjelp av en sprøyte med en 25 til 30 G-nål. Bruk 0,1 ml/10 g kroppsvekt. Påfør en ophthalmica salve til muse øyne for å hindre uttørking av hornhinner. Forsikrer at mu…

Representative Results

Fremgangsmåten ifølge intralymphatic injeksjoner i mus, til tross for det kirurgiske natur, er likefrem og relativt raskt. En trenet person kan utføre prosedyren i 3-4 min. Snittet som er lukket med en maske helbreder vanligvis i løpet av to dager (Figur 1) Intralymphatic vaksinasjon eller immunisering er utført med mRNA, plasmid DNA, peptider, proteiner, virus og bakterier. Figur 2 illustrerer antistoffproduksjon etter immunisering med protein fosfolip…

Discussion

Intralymphatic immunisering og immunterapi har vist seg å være egnet for stimuleringen av både antistoff-respons og T-celleresponser. Som vist i denne video-artikkelen, er den intralymphatic fremgangsmåte for vaksinering en rask og enkel metode for å stimulere sterke immunresponser i mus. En trenet kirurg kan utføre prosedyren under 3-4 min. Økten kan også deles mellom to kirurger der man vanligvis gjør anestesi og suturering og andre kirurgen gjør for snittet og injeksjon. Effektiviteten av prosedyren er mer …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne er takknemlige for den eksperimentelle hjelp i utviklingen av metode for intralymphatic immunisering hos mus fra Iris Erdmann, Barbara von Beust, og Julia Maria Martínez-Gómez. Takk også til Maggy Arras og Nikola Cesarovic for å la oss bruke deres kirurgisk teater for videoproduksjon.

Materials

Ketamine (Ketasol-100) Graeub AG, Switzerland Anesthetics
Xylazine (Rompun) Bayer, Germany Anesthetics
Viscotears Eye-Gel Novartis, Switzerland To keep eyes from drying out during anesthesia.
BD Micro-Fine 0.5 ml BD Medical, France 29 G Insulin syringes with permanently attached needles
6-0 Dermalon Monofilament nylon Covidien, MA, USA For sutures (0.7 metric, 18G, 45 cm, Blue)
Curved forceps, 4.5 inch Polymed, Switzerland For incision and holding of lymph node
Straight surgical scissors, 4.5 inch Polymed, Switzerland For incision
Needle holder, 5.5 inch Polymed, Switzerland To close incision with suture

References

  1. Johansen, P., et al. Direct intralymphatic injection of peptide vaccines enhances immunogenicity. Eur. J. Immunol. 35, 568-574 (2005).
  2. Maloy, K. J., et al. Intralymphatic immunization enhances DNA vaccination. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 3299-3303 (2001).
  3. Smith, K. A., et al. Enhancing DNA vaccination by sequential injection of lymph nodes with plasmid vectors and peptides. Vaccine. 27, 2603-2615 (2009).
  4. Kreiter, S., et al. Intranodal vaccination with naked antigen-encoding RNA elicits potent prophylactic and therapeutic antitumoral immunity. Cancer Res. 70, 9031-9040 (2010).
  5. Johansen, P., et al. Antigen kinetics determines immune reactivity. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 5189-5194 (2008).
  6. Smith, K. A., et al. Lymph node-targeted immunotherapy mediates potent immunity resulting in regression of isolated or metastatic human papillomavirus-transformed tumors. Clin. Cancer Res. 15, 6167-6176 (2009).
  7. Johansen, P., et al. Toll-like receptor ligands as adjuvants in allergen-specific immunotherapy. Clin. Exp. Allergy. 35, 1591-1598 (2005).
  8. Johansen, P., et al. Heat denaturation, a simple method to improve the immunotherapeutic potential of allergens. Eur. J. Immunol. 35, 3591-3598 (2005).
  9. Martinez-Gomez, J. M., et al. Intralymphatic injections as a new administration route for allergen-specific immunotherapy. Int. Arch. Allergy Immunol. 150, 59-65 (2009).
  10. Martinez-Gomez, J. M., et al. Targeting the MHC class II pathway of antigen presentation enhances immunogenicity and safety of allergen immunotherapy. Allergy. 64, 172-178 (2009).
  11. Mohanan, D., et al. Administration routes affect the quality of immune responses: A cross-sectional evaluation of particulate antigen-delivery systems. J. Control Release. 147, 342-349 (2010).
  12. Waeckerle-Men, Y., et al. Lymph node targeting of BCG vaccines amplifies CD4 and CD8 T-cell responses and protection against Mycobacterium tuberculosis. Vaccine. 31, 1057-1064 (2013).
  13. von Beust, B. R., et al. Improving the therapeutic index of CpG oligodeoxynucleotides by intralymphatic administration. Eur. J. Immunol. 35, 1869-1876 (2005).
  14. Senti, G., et al. Intralymphatic immunotherapy for cat allergy induces tolerance after only 3 injections. J. Allergy Clin. Immunol. 129, 1290-1296 (2012).
  15. Senti, G., et al. Intralymphatic allergen administration renders specific immunotherapy faster and safer: a randomized controlled trial. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 17908-17912 (2008).
  16. Lesterhuis, W. J., et al. Route of administration modulates the induction of dendritic cell vaccine-induced antigen-specific T cells in advanced melanoma patients. Clin. Cancer Res. 17, 5725-5735 (2011).
  17. Fadul, C. E., et al. Immune response in patients with newly diagnosed glioblastoma multiforme treated with intranodal autologous tumor lysate-dendritic cell vaccination after radiation chemotherapy. J. Immunother. 34, 382-389 (2011).
  18. Eizenberg, P., et al. Acceptance of Intanza(R) 9 mug intradermal influenza vaccine in routine clinical practice in Australia and Argentina. Adv. Ther. 28, 640-649 (2011).
  19. Durando, P., et al. Adjuvants and alternative routes of administration towards the development of the ideal influenza vaccine. Hum. Vaccin. 7, 29-40 (2011).
  20. Barth, R. J., et al. A randomized trial of ex vivo CD40L activation of a dendritic cell vaccine in colorectal cancer patients: tumor-specific immune responses are associated with improved survival. Clin. Cancer Res. 16, 5548-5556 (2010).
  21. Schwaab, T., et al. Clinical and immunologic effects of intranodal autologous tumor lysate-dendritic cell vaccine with Aldesleukin (Interleukin 2) and IFN-{alpha}2a therapy in metastatic renal cell carcinoma patients. Clin. Cancer Res. 15, 4986-4992 (2009).
  22. Senti, G., Johansen, P., Kundig, T. M. Intralymphatic immunotherapy. Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 9, 537-543 (2009).
  23. Catron, D. M., Itano, A. A., Pape, K. A., Mueller, D. L., Jenkins, M. K. Visualizing the first 50 hr of the primary immune response to a soluble antigen. Immunity. 21, 341-347 (2004).
  24. Itano, A. A., Jenkins, M. K. Antigen presentation to naive CD4 T cells in the lymph node. Nat. Immunol. 4, 733-739 (2003).
  25. Johansen, P., Mohanan, D., Martinez-Gomez, J. M., Kundig, T. M., Gander, B. Lympho-geographical concepts in vaccine delivery. J. Control Release. 148, 56-62 (2010).
  26. Johansen, P., von Moos, S., Mohanan, D., Kundig, T. M., Senti, G. New routes for allergen immunotherapy. Hum. Vacc. Immunother. 8, 1525-1533 (2012).
  27. Senti, G., Johansen, P., Kundig, T. M. Intralymphatic immunotherapy: from the rationale to human applications. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 352, 71-84 (2011).
  28. Duthie, M. S., Windish, H. P., Fox, C. B., Reed, S. G. Use of defined TLR ligands as adjuvants within human vaccines. Immunol. Rev. 239, 178-196 (2011).
  29. Ribas, A., et al. Intra-lymph node prime-boost vaccination against Melan A and tyrosinase for the treatment of metastatic melanoma: results of a phase 1 clinical trial. Clin. Cancer Res. 17, 2987-2996 (2011).
  30. Bedrosian, I., et al. Intranodal administration of peptide-pulsed mature dendritic cell vaccines results in superior CD8+ T-cell function in melanoma patients. J. Clin. Oncol. 21, 3826-3835 (2003).
  31. Lesimple, T., et al. Injection by various routes of melanoma antigen-associated macrophages: biodistribution and clinical effects. Cancer Immunol. Immunother. 52, 438-444 (2003).
  32. Brown, K., et al. Adenovirus-transduced dendritic cells injected into skin or lymph node prime potent simian immunodeficiency virus-specific T cell immunity in monkeys. J. Immunol. 171, 6875-6882 (2003).
  33. Fong, L., Brockstedt, D., Benike, C., Wu, L., Engleman, E. G. Dendritic cells injected via different routes induce immunity in cancer patients. J. Immunol. 166, 4254-4259 (2001).
check_url/51031?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Johansen, P., Kündig, T. M. Intralymphatic Immunotherapy and Vaccination in Mice. J. Vis. Exp. (84), e51031, doi:10.3791/51031 (2014).

View Video