Summary

피부의 단일 신경 종말의 생체 두 광자 현미경에서

Published: August 24, 2014
doi:

Summary

동적 길이 이미징 및 기자 형질 전환 생쥐의 신경 종말의 선택적 레이저 병변에 대한 프로토콜은 제공됩니다.

Abstract

피부, 신경과 같은 신경 병증 성 통증은이 같은 일을 센싱뿐만 아니라 병리 생리적 과정의 프로세스에 관여된다. 그들의 근접에 표면의 위치는 그대로 동​​물을 생활에서 피부 신경 말단의 미세한 영상을 용이하게한다. 다 광자 현미경을 사용하면, 피부 조직의 강한 광 산란 문제를 극복 미세 영상을 얻을 수있다. (주변 감각 신경 포함) 뉴런 네-1 프로모터의 조절하에 EYFP을 표현 기자 형질 전환 마우스는 최대 몇 개월 또는 평생 오랜 기간 동안 개별 신경 종말의 종 연구에 적합하다. 또한, 촬상 용으로 동일한 펨토초 레이저를 이용하여, 이는 신경 섬유의 재구성 연구에 신경 섬유의 매우 선택적 병변을 제조 할 수있다. 여기서, 우리는 생체 내에서 촬상 종 다 광자위한 간단하고 신뢰성있는 프로토콜을 제시마우스 피부의 신경 말단에 레이저 기반 미세.

Introduction

피부 신경 말단 다른 병태 생리 학적 상태에 따라 동적 인 변화를 겪는다. 신경 섬유는 말초 신경 병증이 모톤 신경종 또는 3과 같은 질병의 과정에서 변성 및 재생 또는 재구성의 프로세스를 수행 할 수있다. 외상 후 피부의 신경 말단 역학의 중요한 부분은 손상된 영역의 reinnervation이다. 그러나, 신경 종말의 조사를위한 일반적인 방법은 진행중인 프로세스 4에 실시간 정보를 결여 생체의 조직 학적 절편이다. 유 전적으로 인코딩 된 형광 마커를 사용하여, 따라서 구조적 변화에 훨씬 더 풍부하고 관련 정보를 획득하는, 살아있는 동물의 피부에있는 신경 말단을 추적 할 수있다. 피부 신경 종말의 조사는 종래의 형광 현미경이 있지만, 피부 조직의 강한 광산란 강하게 품질을 저해하여 가능하다데이터 5를 인수했다. 다 광자 현미경에 의한 유일한 목적의 초점으로부터의 형광 발광을 초래 여기 광의 광자의 에너지의 비 – 선형 합에 강하게 산란 조직의 고해상도의 영상을 획득하는 것을 허용한다. 이 효과는 피부 조직 (6)에서의 측정 결과에 대한 강력한 침투 깊이의 증가와 신호 대 잡음 비의 향상을 이끈다. 이미징을위한 동일한 레이저를 사용하면, 신경 섬유 (7)의 선택적인 박리를 제조 할 수있다. 다음의 프로토콜에서는 선택적 레이저 병변 시판 다 광자 현미경 시스템을 사용하여 결합 된 리포터 유전자 변형 마우스에서 생체 내 피부 신경 종말의 길이의 촬상 방법을 보여준다.

Protocol

동물 과목을 포함하는 절차는 국립 동물 실험위원회, 핀란드에 의해 승인되었습니다. 이미징을위한 1 동물 준비 intraperitional 케타민 (IP) 주입 (체중 당 0.08 mg)의과 자일 라진 (체중 당 0.01 ㎎)을하여 마우스를 마취. 후면 발가락 핀치 반사와 마취를 확인합니다. 눈 탈수으로부터 눈을 보호하기 위해 (Viscotears를) 삭제에 동물의 눈을 담근다. 저체온증을 방지하기 위해 37 °…

Representative Results

그것이 가능 기재된 기술을 사용하여 병변 후 동일한 광섬유를 추적하고 손상된 신경 종말 (도 1)의 분해를 연구. 120-150 μm의 두께의 적층 체의 취득은 시야에 전체의 섬유를 유지하기 위해 수 일 동안 반복 이미징 대개 적절하다. 플라스틱 포장재가 피부를 평평하게 조정되면 병변은 일반적으로 간결하게 제조 될 수 있으므로, 콜라겐 층에 균일 한 강도의 화상 <s…

Discussion

이 동영상 프로토콜에서는 단일 신경 말단의 비 침습적 종 이광자 촬상 방법을 보여준다.

피부 신경 밀도의 역학 건선 및 말초 신경 병증이, 등의 질환과 외상 구에 영향을받습니다. 두 광자 이미징은 콜라겐 매트릭스에있는 신경 섬유 구조의 상세한 분석을 할 수 있습니다. 리포터 유전자 변형 마우스의 사용은 신경 섬유의 염색에 관한 문제를 방지하는 데 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 재정 지원에 대한 기술 지원, CIMO 재단과 FGSN에 대한 Neurotar (주)에게 감사의 말씀을 전합니다.

Materials

Round cover glass  Electron Microscopy Science 72296-05 5 mm diameter #1.5 thickness
Eye drops Viscotears Novartis 2mg/g
Superglue Loctite 401 Henkel 135429
Ketaminol Intervet Ketamine 50 mg/ml, working solution 10 mg/ml (use it 80 µg per gramm of animal weight)
Rompun Bayer Healthcare Xylazine 20 mg/ml, working solution 1.25 mg/ml (use it 10 µg per gramm of animal weight)
Working solution is a mixture of Ketamine 10 mg/ml and Xylazine 1.25 mg/ml in PBS
Ethanol 70%
Distilled water or Milli-Q water
Syringes 1ml  BD 300013
30G 1/2" needles BD 304000
Plastic packaging material Could be purchaized from general hardware store
FV-1000MPE microscope Olympus FV-1000MPE Microscope with motorized stage and rigid metal bar for fixation
25X XLPlan objective Olympus XLPLN 25XWMP Water imersion objective optimized for multiphoton imaging
Mai-Tai DeepSee laser (2W) SpectraPhysics
Heating pad Supertech TMP-5b Heating pad with a temperature controller
Metal ring fixator Neurotar Ltd.
ImageJ NIH Open source software for image processing and analysis, http://rsbweb.nih.gov/ij/ 
Thy1-YFPH mice strain JaxLab 003782

References

  1. Lumpkin, E. A., Caterina, M. J. Mechanisms of sensory transduction in the skin. Nature. 445, 858-865 (2007).
  2. Kennedy, W. R., Wendelschafer-Crabb, G., Johnson, T. Quantitation of epidermal nerves in diabetic neuropathy. Neurology. 47, 1042-1048 (1996).
  3. Wu, K. K. Morton’s interdigital neuroma: a clinical review of its etiology, treatment, and results. J. Foot Ankle Surg. 35, 112-119 (1996).
  4. Lauria, G., Lombardi, R. Skin biopsy: a new tool for diagnosing peripheral neuropathy. BMJ. 334, 1159-1162 (2007).
  5. Cheng, C., Guo, G. F., Martinez, J. A., Singh, V., Zochodne, D. W. Dynamic plasticity of axons within a cutaneous milieu. J. Neurosci. 30, 14735-14744 (2010).
  6. Wang, B., Zinselmeyer, B. H., McDole, J. R., Gieselman, P. A., Miller, M. J. Non-invasive Imaging of Leukocyte Homing and Migration in vivo. J Vis Exp. (46), e2062 (2010).
  7. Sacconi, L., O’Connor, R. P., Jasaitis, A., Masi, A., Buffelli, M., Pavone, F. S. In vivo multiphoton nanosurgery of cortical neurons. J Biomed Opt. 12, 050502 (2007).
  8. Robinson, L. R. Traumatic injury to peripheral nerves. Muscle Nerve. 23, 863-873 (2000).
  9. Feng, G., Mellor, R. H., Bernstein, M., Keller-Peck, C., Nguyen, Q. T., Wallace, M., Nerbonne, J. M., Lichtman, J. W., Sanes, J. R. Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of GFP. Neuron. 28, 41-51 (2000).
  10. Marinkovic, P., Reuter, M. S., Brill, M. S., Godinho, L., Kerschensteiner, M., Misgeld, T. Axonal transport deficits and degeneration can evolve independently in mouse models of amyotrophic lateral sclerosis. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 109, 4296-4301 (2012).
  11. Amit, S., Yaron, A. Novel systems for in vivo monitoring and microenvironmental investigations of diabetic neuropathy in a murine model. J Neural Transm. 119, 1317-1325 (2012).
  12. Yu, H., Fischer, G., Jia, G., Reiser, J., Park, F., Hogan, Q. H. Lentiviral gene transfer into the dorsal root ganglion of adult rats. Mol Pain. 7, 63 (2011).
  13. Yuryev, M., Khiroug, L. Dynamic longitudinal investigation of individual nerve endings in the skin of anesthetized mice using in vivo two-photon microscopy. J Biomed Opt. 17, 046007 (2012).
check_url/51045?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yuryev, M., Molotkov, D. In Vivo Two-Photon Microscopy of Single Nerve Endings in Skin. J. Vis. Exp. (90), e51045, doi:10.3791/51045 (2014).

View Video