Summary

Karakterisering af komplekse systemer ved hjælp af udformning af eksperimenter Fremgangsmåde: Transient Protein Expression i tobak som et casestudie

Published: January 31, 2014
doi:

Summary

Vi beskriver en udformning af eksperimenter tilgang, der kan anvendes til at bestemme og modellere indflydelse transgene regulatoriske elementer, parametre planters vækst og udvikling og inkuberingsbetingelser på forbigående ekspression af monoklonale antistoffer og reporter-proteiner i planter.

Abstract

Planter giver flere fordele for produktionen af ​​biofarmaceutiske herunder lave omkostninger, skalerbarhed og sikkerhed. Forbigående udtryk giver den yderligere fordel af korte udviklings-og produktionstider, men udtryk niveauer kan variere betydeligt mellem partier og dermed give anledning til samme reguleringsmæssige problemer i forbindelse med god fremstillingspraksis. Vi brugte et design af eksperimenter (DOE) tilgang til at fastslå virkningen af ​​væsentlige faktorer, såsom regulatoriske elementer i ekspressionskonstruktet, plantevækst og udvikling parametre og inkubationsbetingelserne under udtryk, om variabilitet i udtryk mellem partier. Vi testede planter, der udtrykker en model anti-HIV monoklonale antistof (2G12) og en fluorescerende markør protein (DsRed). Vi diskuterer begrundelsen for at vælge bestemte egenskaber af model og identificere dens potentielle begrænsninger. Den generelle indstilling kan nemt overføres til andre problemer, fordi principperne i modellen enre bredt anvendelig: videnbaseret parameter udvælgelse, kompleksitet reduktion ved at opdele det oprindelige problem i mindre moduler, software-guidet opsætning af optimale eksperimentkombinationer og trinvis design augmentation. Derfor er den metode er ikke kun nyttig til at karakterisere protein ekspression i planter, men også til undersøgelse af andre komplekse systemer, der mangler en mekanistisk beskrivelse. De prædiktive ligninger, der beskriver sammenkoblingen mellem parametre kan bruges til at etablere mekanistiske modeller for andre komplekse systemer.

Introduction

Produktionen af biofarmaceutiske proteiner i planter er fordelagtig, fordi planter er billig at vokse, kan platformen blive skaleret op blot ved at dyrke flere planter og humane patogener er i stand til at replikere 1,2. Transiente ekspressionssystemer strategier baseret for eksempel på infiltration af blade med Agrobacterium tumefaciens giver yderligere fordele, fordi tiden mellem det punkt af DNA levering og levering af et renset produkt nedsættes fra år til mindre end 2 måneder 3. Transient ekspression er også anvendes til funktionel analyse, fx at teste gener for deres evne til at komplementere tab af funktion mutanter eller for at undersøge protein-interaktioner 4-6. Men forbigående udtryk niveauer tendens til at vise større batch-til-batch variation end ekspressionsniveauer i transgene planter 7-9. Dette reducerer sandsynligheden for, at biofarmaceutiske fremstillingsprocesser baseret på forbigående ekspression will blive godkendt i forbindelse med god fremstillingspraksis (GMP), fordi reproducerbarhed er en attribut kritisk kvalitet og er underlagt risikovurdering 10. Sådanne variationer kan også maskere enhver interaktion, forskerne har til hensigt at undersøge. Derfor er vi i gang med at identificere de væsentligste faktorer, der påvirker forbigående ekspressionsniveauer i planter og til at opbygge en høj kvalitet kvantitativ prædiktiv model.

Den ene-faktor-på-en-tid (OFAT) metode bruges ofte til at karakterisere effekten (virkning) for visse parametre (faktorer) om resultatet (respons) af et eksperiment 11. Men det er ikke optimalt, fordi de enkelte tests (kører) under en kontrolundersøgelse (eksperiment) vil blive rettet ind som perler på en snor gennem det potentielle areal udspændt af de faktorer, der er testet (design plads). Dækningen af ​​designet rum og dermed graden af ​​information udledt fra eksperimentetlav, som det er vist i figur 1A 12. Desuden kan den indbyrdes afhængighed mellem de forskellige faktorer (faktor interaktioner) forbliver skjult resulterer i dårlige modeller og / eller forudsigelse af falsk optima, som vist i figur 1B 13.

De ovenfor beskrevne ulemper kan undgås ved hjælp af et design af eksperimenter (DOE) tilgang, hvor kørsler af et eksperiment er spredt mere jævnt over hele design plads, hvilket betyder, at mere end én faktor er varieret mellem to kørsler 14. Der er specialiserede designs for blandinger, screening faktorer (Faktorforsøg) og kvantificering af faktor virkninger på reaktioner (respons overflade metoder RSM s) 15. Desuden kan RSMs realiseres som centrale-komposit design, men kan også opnås effektivt ved hjælp af specialiseret software, som kan anvende forskellige kriterier for udvælgelse af kørsler. For eksempel, den såkaldte D-optimality kriterium vælger løber så at minimere fejlen i koefficienterne af den resulterende model, mens IV-optimalitet kriterium vælger kørsler, der opnår den laveste forudsigelse varians i hele design plads 15,16. RSM vi beskriver her tillader præcis kvantificering af forbigående protein ekspression i planter, men det kan nemt overføres til en hvilken som helst system, der involverer flere (~ 5-8) numeriske faktorer (fx. temperatur, tid, koncentration), og et par (~ 2 – 4) kategorisk faktorer (fx promotor, farve), i hvilken en mekanistisk beskrivelse er utilgængelig eller for komplekse til at modellere.

DOE tilgang opstod i jordbrugsvidenskab, men har spredt sig til andre områder, fordi det kan overføres til en hvilken som helst situation, hvor det er nyttigt at reducere antallet af kørsler er nødvendige for at opnå pålidelige data og generere beskrivende modeller for komplekse processer. Dette har igen ført til inddragelse af DoE i "Vejledning forIndustri, Q8 (R2) Farmaceutisk udvikling "udgivet af Den Internationale Konference om Harmonisering af tekniske krav til registrering af lægemidler til mennesker (ICH) 17. DoE er nu anvendes bredt i videnskabelig forskning og industri 18 år. Dog skal man være omhyggelig under planlægning og udførelse af forsøget, fordi du vælger en forkert polynomium for flere lineær regressionsmodel (basismodel) kan introducere et behov for yderligere kørsler til at modellere alle faktor virkninger korrekt. Desuden beskadiget eller manglende data genererer forkerte modeller og fejlbehæftet forudsigelser, og kan endda forhindre enhver modelbygning forsøg som beskrevet i protokollen og diskussion § 18. i protokollen afsnit vil vi oprindeligt fastsat de vigtigste planlægning skridt til et RSM-baserede eksperiment og derefter forklare design baseret på DoE software DesignExpert v8.1. Men lignende design kan bygges med anden software including JMP, MODDE og STATISTISK. De eksperimentelle procedurer følges af instruktioner til dataanalyse og evaluering.

Figur 1
Figur 1. Sammenligning af OFAT og DoE. A. Sekventiel variation af én faktor ad gangen (OFAT) i et eksperiment (sort, rød og blå cirkler) opnår en lav dækning af designet rum (skraverede områder). I modsætning hertil variation af mere end én faktor ad gangen ved hjælp af udformning af eksperimenter (DOE) strategi (grønne cirkler) forbedrer dækning og dermed præcisionen af de resulterende modeller. B. Den forudindtaget design plads dækning betyder, at OFAT eksperimenter (sorte cirkler) kan også undlade at identificere optimale drifts-regioner (rød) og forudsige sub-optimale løsninger (stor sort cirkel), mens DoE strategyes (sorte stjerner) er mere tilbøjelige til at identificere foretrukne forhold (store sorte stjerne).

Protocol

1.. Planlægning af en DoE strategi Identificere relevante faktorer og reaktioner til optagelse i designet. Definer et eller flere svar for måling. Her blev 2G12 og dsRed ekspressionsniveauer bruges (mg / ml), herunder den laveste påviselige forskel betragtes som relevante (10 og 20 mg / ml), og en tilnærmet værdi for den anslåede standardafvigelse af systemet (4 og 8 mg / ml) baseret på tidligere forsøg. Brug den tilgængelige litteratur, data fra tidligere eksperimenter eller speci…

Representative Results

En beskrivende model for DsRed akkumulering ved transient ekspression ved hjælp af forskellige initiativtagere og 5'UTRs DsRed fluorescens i bladekstrakter blev anvendt til at indikere ekspressionsniveauet af det rekombinante protein og således blev anvendt som respons i DoE strategi. Den mindste påviselige forskel, vi anset for relevante var 20 pg / ml og den anslåede standardafvigelse af systemet var 8 mg / ml baseret på indledende forsøg. Faktorer, der indgår i…

Discussion

Hvert eksperiment kræver omhyggelig planlægning, fordi ressourcerne er ofte knappe og dyre. Dette gælder især for ministeriets strategier, fordi fejl i planlægningsfasen (fx vælge en base model, der ikke dækker alle væsentlige faktor interaktioner) væsentligt kan formindske den prædiktive effekt af de resulterende modeller, og dermed devaluere hele eksperimentet. Dog kan disse fejl let undgås ved at følge grundlæggende procedurer.

Overvejelser i løbet DoE planlægning </p…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne er taknemmelige til Dr. Thomas Rademacher for at levere ppam planteekspressionsvektor og Ibrahim Al Amedi til dyrkning af tobaksplanter, der anvendes i denne undersøgelse. Vi vil gerne takke Dr. Richard M. Twyman for hans hjælp med at redigere manuskriptet. Dette arbejde blev delvist finansieret af Det Europæiske Forskningsråd Advanced Grant "Future-Pharma", forslag nummer 269.110 og Fraunhofer Zukunftsstiftung (Fraunhofer Future Foundation).

Materials

Design-Expert(R) 8 Stat-Ease, Inc. n.a. DoE software
Tryptone Carl Roth GmbH 8952.2 Media component
Yeast extract Carl Roth GmbH 2363.2 Media component
Sodium chloride Carl Roth GmbH P029.2 Media component
Ampicillin Carl Roth GmbH K029.2 Antibiotic
Agar-Agar Carl Roth GmbH 5210.2 Media component
Escherichia coli K12 DH5a Life technologies 18263-012 Microorganism
pPAM GenBank AY027531 Cloning/expression vector; 
NucleoSpin Plasmid  MACHEREY-NAGEL GmbH 740588.250 Plasmid DNA isolation kit
NucleoSpin Gel and PCR Clean-up MACHEREY-NAGEL GmbH 740609.250 Plasmid DNA purification kit
NanoDrop 2000 Thermo Scientific n.a. Spectrophotometer
NcoI New England Biolabs Inc. R3193L Restrictionendonuclease
EcoRI New England Biolabs Inc. R3101L Restrictionendonuclease
AscI New England Biolabs Inc. R0558L Restrictionendonuclease
NEB 4 New England Biolabs Inc. B7004S Restrictionendonuclease buffer
TRIS Carl Roth GmbH 4855.3 Media component
Disodium tetraborate Carl Roth GmbH 4403.3 Media component
EDTA Carl Roth GmbH 8040.2 Media component
Agarose Carl Roth GmbH 6352.4 Media component
Bromophenol blue Carl Roth GmbH A512.1 Color indicator
Xylene cyanol Carl Roth GmbH A513.1 Color indicator
Glycerol Carl Roth GmbH 7530.2 Media component
Mini-Sub Cell GT Cell BioRad 170-4406 Gel electrophoresis chamber
Agrobacterium tumefaciens strain GV3101:pMP90RK DSMZ 12365 Microorganism
Electroporator 2510 Eppendorf 4307000.658 Electroporator
Beef extract Carl Roth GmbH X975.2 Media component
Peptone Carl Roth GmbH 2365.2 Media component
Sucrose Carl Roth GmbH 4621.2 Media component
Magnesium sulfate Carl Roth GmbH 0261.3 Media component
Carbenicillin Carl Roth GmbH 6344.2 Antibiotic
Kanamycin Carl Roth GmbH T832.3 Antibiotic
Rifampicin Carl Roth GmbH 4163.2 Antibiotic
FWD primer Eurofins MWG Operon n.a. CCT CAG GAA GAG CAA TAC
REV primer Eurofins MWG Operon n.a. CCA AAG CGA GTA CAC AAC
2720 Thermal cycler Applied Biosystems 4359659 Thermocycler
RNAfold webserver University of Vienna n.a. Software
Ferty 2 Mega Kammlott 5.220072 Fertilizer
Grodan Rockwool Cubes 10x10cm Grodan n.a. Rockwool block
Greenhouse n.a. n.a. For plant cultivation
Phytotron Ilka Zell n.a. For plant cultivation
Omnifix-F Solo B. Braun 6064204 Syringe
Murashige and Skoog salts Duchefa M 0222.0010 Media component
Glucose Carl Roth GmbH 6780.2 Media component
Acetosyringone Sigma-Aldrich D134406-5G Phytohormon analogon
 BioPhotometer plus Eppendorf  6132 000.008 Photometer
Osram cool white 36 W Osram 4930440 Light source
Disodium phosphate Carl Roth GmbH  4984.3  Media component
Centrifuge 5415D Eppendorf 5424 000.410 Centrifuge
Forma -86C ULT freezer ThermoFisher 88400 Freezer
Synergy HT BioTek SIAFRT Fluorescence plate reader
Biacore T200 GE Healthcare n.a. SPR device
Protein A Life technologies 10-1006 Antibody binding protein
HEPES Carl Roth GmbH 9105.3 Media component
Tween-20 Carl Roth GmbH 9127.3 Media component
2G12 antibody Polymun AB002 Reference antibody

References

  1. Fischer, R., Emans, N. Molecular farming of pharmaceutical proteins. Transgenic research. 9, 277-299 (2000).
  2. Commandeur, U., Twyman, R. M., Fischer, R. The biosafety of molecular farming in plants. AgBiotechNet. 5, 9 (2003).
  3. Shoji, Y., et al. A plant-based system for rapid production of influenza vaccine antigens. Influenza Other Resp. 6, 204-210 (2012).
  4. Goodin, M. M., Zaitlin, D., Naidu, R. A., Lommel, S. A. Nicotiana benthamiana: Its history and future as a model for plant-pathogen interactions. Mol Plant Microbe In. 21, 1015-1026 (2008).
  5. Berg, R. H., Beachy, R. N. Fluorescent protein applications in plants. Method Cell Biol. 85, 153 (2008).
  6. Chung, S. M., Vaidya, M., Tzfira, T. Agrobacterium is not alone: gene transfer to plants by viruses and other bacteria. Trends in plant science. 11, 1-4 (2006).
  7. Sheludko, Y. V., Sindarovska, Y. R., Gerasymenko, I. M., Bannikova, M. A., Kuchuk, N. V. Comparison of several Nicotiana species as hosts for high-scale Agrobacterium-mediated transient expression. Biotechnology and Bioengineering. 96, 608-614 (2007).
  8. Wydro, M., Kozubek, E., Lehmann, P. Optimization of transient Agrobacterium-mediated gene expression system in leaves of Nicotiana benthamiana. Acta Biochimica Polonica. 53, 289-298 (2006).
  9. Buyel, J. F., Fischer, R. Processing heterogeneous biomass: Overcoming the hurdles in model building. Bioengineered. 4, (2013).
  10. Fischer, R., Schillberg, S., Hellwig, S., Twyman, R. M., Drossard, J. GMP issues for recombinant plant-derived pharmaceutical proteins. Biotechnol Adv. 30, 434-439 (2012).
  11. Daniel, C. One-at-a-time plans. Journal of the American Statistical Association. 68, 353-360 (1973).
  12. Czitrom, V. One-Factor-at-a-Time versus Designed Experiments The American Statistician. 53, 6 (1999).
  13. Anderson, M. J., Kraber, S. L. Keys to successful designed experiments. ASQ – The global voice of quality. 6, 6 (1999).
  14. Montgomery, D. C. . Design and Analysis of Experiments. , (2007).
  15. Myers, R. H., Montgomery, D. C., Anderson-Cook, C. M. . Response Surface Methodology: Process and Product Optimization Using Designed Experiments. , (2009).
  16. Piepel, G. F. Programs for generating extreme vertices and centroids of linearly constrained experimental regions. J Qual Technol. 20, 15 (1988).
  17. . . FDA. , (2009).
  18. Shivhare, M., McCreath, G. Practical Considerations for DoE Implementation in Quality By Design. BioProcess International. 8, 9 (2010).
  19. Buyel, J. F., Fischer, R. Predictive models for transient protein expression in tobacco (Nicotiana tabacum L.) can optimize process time, yield, and downstream costs. Biotechnology and bioengineering. 109, 2575-2588 (2012).
  20. Buyel, J. F., Kaever, T., Buyel, J. J., Fischer, R. Predictive models for the accumulation of a fluorescent marker protein in tobacco leaves according to the promoter/5’UTR combination. Biotechnology and bioengineering. 110, 471-482 (2013).
  21. Anderson, M. J., Whitcomb, P. J. . DOE Simplified: Practical Tools for Effective Experimentation. , (2000).
  22. Anderson, M. J., Whitcomb, P. J. . Response Surface Methods Simplified. , (2005).
  23. De Gryze, S., Langhans, I., Vandebroek, M. Using the correct intervals for prediction: A tutorial on tolerance intervals for ordinary least-squares regression. Chemometr Intell Lab. 87, 147-154 (2007).
  24. . . Plasmid DNA purification User manual. , (2012).
  25. . . PCR clean-up Gel extraction User manual. , (2012).
  26. . . Quick Ligation Protocol. 4, (2009).
  27. Inoue, H., Nojima, H., Okayama, H. High-Efficiency Transformation of Escherichia-Coli with Plasmids. Gene. 96, 23-28 (1990).
  28. Main, G. D., Reynolds, S., Gartland, J. S. Electroporation protocols for Agrobacterium. Methods in Molecular Biology. 44, 405-412 (1995).
  29. Gruber, A. R., Lorenz, R., Bernhart, S. H., Neubock, R., Hofacker, I. L. The Vienna RNA websuite. Nucleic acids research. 36, 70-74 (2008).
  30. Howell, S., Kenmore, M., Kirkland, M., Badley, R. A. High-density immobilization of an antibody fragment to a carboxymethylated dextran-linked biosensor surface. J Mol Recognit. 11, 200-203 (1998).
  31. Newcombe, A. R., et al. Evaluation of a biosensor assay to quantify polyclonal IgG in ovine serum used for the production of biotherapeutic antibody fragments. Process Biochem. 41, 842-847 (2006).
  32. Peixoto, J. L. Hierarchical Variable Selection in Polynomial Regression-Models. Am Stat. 41, 311-313 (1987).
  33. Peixoto, J. L. A Property of Well-Formulated Polynomial Regression-Models. Am Stat. 44, 26-30 (1990).
  34. Sanders, P. R., Winter, J. A., Barnason, A. R., Rogers, S. G., Fraley, R. T. Comparison of cauliflower mosaic virus 35S and nopaline synthase promoters in transgenic plants. Nucleic acids research. 15, 1543-1558 (1987).
  35. Ma, J. K. C., et al. Generation and Assembly of Secretory Antibodies in Plants. Science. 268, 716-719 (1995).
  36. Wycoff, K. L. Secretory IgA antibodies from plants. Curr Pharm Design. 11, 2429-2437 (2005).
  37. Pace, C. N., Vajdos, F., Fee, L., Grimsley, G., Gray, T. How to measure and predict the molar absorption coefficient of a protein. Protein Sci. 4, 2411-2423 (1995).
check_url/51216?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Buyel, J. F., Fischer, R. Characterization of Complex Systems Using the Design of Experiments Approach: Transient Protein Expression in Tobacco as a Case Study. J. Vis. Exp. (83), e51216, doi:10.3791/51216 (2014).

View Video