Summary

Mod Biomimicking Wood: Færdige Fritstående Film af Nanocellulose, Lignin, og en syntetisk polykation

Published: June 17, 2014
doi:

Summary

Formålet med denne forskning var at danne syntetisk plante cellevæg væv ved hjælp af lag-by-lags montering af nanocellulose fibriller og isoleret lignin samles fra fortyndede vandige suspensioner. Overflade måleteknikker af kvartskrystalmikrovægt og atomic force mikroskopi blev anvendt til at overvåge dannelsen af ​​polymer-polymer-nanokompositmateriale.

Abstract

Træbaserede materialer består af plantecellevægge, der indeholder en lagdelt sekundære cellevæg sammensat af strukturelle polymerer af polysaccharider og lignin. Layer-by-lag (LBL) samling proces, som bygger på samlingen af ​​modsat ladede molekyler fra vandige opløsninger blev brugt til at bygge en fritstående sammensat film af isolerede træ polymerer af lignin og oxideret nanofibril cellulose (NFC). For at lette samlingen af ​​disse negativt ladede polymerer, en positivt ladet polyelektrolyt, poly (diallyldimethylammomium chlorid) (PDDA), blev anvendt som en sammenkædning lag for at skabe denne forenklede model cellevæg. Den lagdelte adsorption blev undersøgt kvantitativt ved hjælp kvartskrystalmikrovægt med dissipation overvågning (QCM-D) og ellipsometri. Resultaterne viste, at lag masse / tykkelse pr adsorberet lag steg som en funktion af det samlede antal lag. Overfladen dækning af de adsorberede lag blev undersøgt med atomic force mikroskopi (AFM).Fuldstændig dækning af overfladen med lignin i alle deposition cykler blev fundet for det system, men overflade dækning af NFC øges med antallet af lag. Den adsorption udført for 250 cyklusser (500 dobbeltlag) på en celluloseacetat (CA) substrat. Gennemsigtige fritstående LBL samlet nanocomposite film blev opnået, når CA substrat blev senere opløst i acetone. Scanning elektronmikroskopi (SEM) af de opsprækkede tværsnit viste en lamellar struktur, og tykkelsen pr adsorptionscyklus (PDDA-Lignin-PDDA-NC) blev anslået til at være 17 nm for to forskellige ligninsulfonater, der anvendes i undersøgelsen. Dataene indikerer en film med meget kontrolleret arkitektur, hvor nanocellulose og lignin er rumligt deponeret på nanoskala (en polymer-polymer nanokompositter), svarende til hvad der er observeret i den native cellevæg.

Introduction

Der er stor interesse for at udlede ekstra kemikalier og brændstoffer fra biomasse, som kulstof afsondret af planter under fotosyntesen er en del af den nuværende CO 2-cyklus. Størstedelen af ​​afsondret carbon (42-44%) er i form af cellulose, en polymer bestående af β 1 ,4-bundne glucopyranoseenheder; når hydrolyseres, kan glucose anvendes som den primære reaktant til fermentering i alkoholbaserede brændstoffer. Imidlertid har cellevæg arkitektur træagtige planter udviklet sig i årtusinder skabe et materiale, der er resistent over for nedbrydning i det naturlige miljø 1. Denne stabilitet bærer over i den industrielle forarbejdning af træbaserede materialer såsom energiafgrøder gør cellulose svært at få adgang, isolere, og nedbrydning til glukose. Et nærmere kig på ultrastruktur den sekundære cellevæg afslører, at det er en polymer nanocomposite bestående af lagdelte parakrystallinske cellulosemikrofibriller indlejret i en amorf matrix af lignin og fornedenicelluloses 2-4. De langsgående cellulosemikrofibriller har en diameter på ca 2-5 nm, hvilket aggregeres sammen med andre hetero-polysaccharider til dannelse af større enheder af fibril bundter 5. Fibril bundter er indlejret i en lignin-hemicellulose kompleks består af en amorf polymer af phenylpropanol enheder med nogle forbindelser til andre hetero-polysaccharider som glucoronoxylan 4. Desuden er denne struktur yderligere organiseret i lag eller lameller hele forveddede sekundære cellevæg 6-8. Enzymer, ligesom cellulaser, har en meget vanskelig tid at få adgang til cellulose i cellevæggen, som det findes i sin fibril form og indlejret i lignin. Kernen i sandhed gøre biobaserede brændstoffer og fornyelige kemiske platforme en realitet er at udvikle processer, der økonomisk tillader forsukring af cellulose i sin native form.

Nye kemiske og billedbehandling teknologier medvirken i study af de mekanismer, der er involveret i forsukring af cellulose 9,10. Meget arbejde er centreret om Raman konfokal imaging 11 og atomic force mikroskopi 12 for at studere cellevæggen kemiske sammensætning og morfologi. At være i stand til nøje at følge mekanismer delignificering og saccharification er et væsentligt skridt fremad, påvirker omdannelsen af ​​cellulose til glucose. Forsukring af model cellulose overflader blev analyseret ved at måle enzymkinetiske satser med en kvartskrystalmikrovægt med dissipation overvågning (QCM-D) 13. Men native cellevægge er meget komplekse som angivet ovenfor, og det skaber tvetydighed, hvordan forskellige omdannelsesprocesser ændre strukturen af ​​anlægget cellevæg (polymermolekylvægt, kemiske bindinger, porøsitet). Fritstående modeller af cellevæggen stoffer med kendt strukturel sammensætning ville løse dette problem og muliggøre integreringen af ​​prøver i state-of-art kemiske og fantasing udstyr.

Der er en mangel på cellevæg modeller, og de ​​få tilgængelige kan kategoriseres som blandinger af polymere materialer og regenereret cellulose eller bakteriel cellulose 14, enzymatisk polymeriserede lignin-polysaccharid kompositter 15-17 eller model overflader 18-21. Nogle modeller, som begynder at ligne cellevæggen er de prøver, der indeholder lignin forstadier eller analoger polymeriserede enzymatisk i nærvær af cellulose i sin mikrofibrillært formular. Men disse materialer lider under manglen på organiseret lags arkitektur. En simpel rute for oprettelse af nanocomposite materialer med organiseret arkitektur er det lag-for-lag (LBL) samling teknik, baseret på den sekventielle adsorption af polymerer eller nanopartikler med supplerende omkostninger eller funktionelle grupper for at danne organiserede flerlags sammensatte film 22-25. Fritstående hybrid nanokompositter med høj styrke, lavet af LBL aflejring af polymer og nanoparticles, er blevet rapporteret af Kotov et al. 26-30. Blandt mange andre applikationer, har LBL-film også blevet undersøgt for deres potentielle anvendelse i terapeutisk levering 31, brændstof cellemembraner 32,33, batterier 34, og lignocellulose fiber overfladebehandling 35-37. Den nylige interesse i nanoskala cellulose baserede kompositmaterialer har ført til fremstilling og karakterisering af LBL multilag cellulose nanokrystaller (CNC) udarbejdet af svovlsyre hydrolyse af cellulosefibre, og positivt ladede polyelektrolytter 38-43. Lignende undersøgelser har også været udført med cellulose nanokrystaller opnået fra marine tunicin og kationiske polyelektrolytter 44, CNC og xyloglucan 45, og CNC og chitosan 46.. LBL flerlagede dannelse af carboxyleret nanofibrillated celluloser (NFC'er) fremstillet ved højtryks-homogenisering af massefibre med kationiske polyelektrolytter har også væretstuderede 47-49. Forberedelsen, egenskaber og anvendelse af CNCs og nanofibrillated cellulose er blevet gennemgået i detaljer 50-53.

Nærværende undersøgelse omfatter afhøring af LBL teknik som en mulig måde at samle isolerede lignocellulose polymerer (såsom nanocellulose og lignin) på en ordentlig måde som det første skridt hen imod en biomimetisk lignocellulosisk komposit med lamelstruktur. LBL teknik blev valgt for sin godartede forarbejdningsbetingelser, såsom omgivelsernes temperatur, tryk, og vand som opløsningsmiddel, hvilket er en betingelse for naturlige sammensatte formation 54. I denne undersøgelse rapporterer vi om den flerlagede opbygning af konstitutive trækomponenter, nemlig mikrofibriller cellulose fra tetramethylpiperidin 1-oxyl (TEMPO) oxidation af papirmasse og isoleret lignin i fritstående lamellare film. To forskellige ligniner anvendes fra forskellige ekstraktionsteknikker, en teknisk lignin fra organosolv pulpning proces, og den anden en lignin isoleret fra kugleformaling med mindre modifikation under isolation. Disse forbindelser er kombineret med en syntetisk polyelektrolyt i denne indledende undersøgelse for at demonstrere muligheden for at lave stabile fritstående film med arkitektur ligner den indfødte cellevæg.

Protocol

1.. Nanofibrillated Cellulose Forberedelse 55 Setup en 3 liters, tre-halset kolbe med 2 liter deioniseret vand, en overliggende omrører, og pH-probe. Tilføj ligniniseret kraftpulp, 88% lysstyrke (20 g, 1% (vægt / vol, tørvægtsbasis)), 2,2,6,6-tetramethylpiperidin 1-oxyl (TEMPO) (0,313 g, 0,1 mmol / g cellulose) og natriumbromid (NaBr, 2,0 g, 1 mmol / g cellulose) til kolben. Bland Pulpfibrene med overliggende omrører, indtil fiberen er spredt, og ingen aggregater kan ses i …

Representative Results

QCM-D analyse af strukturerede Woody polymerfilm Fabrication LBL adsorption af lignin blev NFC og PDDA overvåges i realtid med QCM-D i to forskellige eksperimenter, der involverer to typer af lignin. Denne analysemetode er meget følsom til at påvise ændringer i frekvens, når molekyler adsorberes til overfladen af kvartskrystallen Figur 1 indeholder en detaljeret beskrivelse af QCM-D respons i en aflejring cyklus, som involverer to dobbeltlag (PDDA:. HMWL og PDDA: NC). Data…

Discussion

Fabrikation af Nanocellulose

For nanocellulose fabrikation er nødvendig vellykket oxidation af papirmasse fiber for letkøbt hjerteflimmer. Oxidering kontrolleres af tilgængelige natriumhypochlorit, der skal tilsættes langsomt ved kendte mængder baseret på mængden af ​​cellulose. En årsag til begrænset oxidation skyldes oplagring af natriumhypochloritopløsning i længere perioder. Dette reducerede oxidation effektivitet kan noteres under reaktionen; pulpopslæmningen skal dreje en …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev primært støttet af ph.d. Scholar program af Institut for kritisk teknologi og Applied Science (ICTAS) på Virginia Tech, Virginia Tech Graduate School for at støtte bæredygtig Nanoteknologi program, og også USA Department of Agriculture, NIFA tilskud nummer 2010-65504-20429. Forfatterne takker også bidragene fra Rick Caudill, Stephen McCartney, og W. Travis Kirke til dette arbejde.

Materials

sulfate pulp Weyerhaeuser  donated brightness level of 88%
organosolv lignin Sigma Aldrich 371017 discontinued
hardwood milled wood lignin see reference in paper
polydiallyldimethylammonium chloride  Sigma Aldrich 409022 Mn = 7.2×10^4, Mw=2.4×10^5
2,2,6,6-Tetramethylpiperidine 1-oxyl (TEMPO)  Sigma Aldrich 214000 catalytic oxidation of primary alcohols to aldehydes with a purity of 98%, molecular weight is 156.25g/mol
sodium bromide Sigma Aldrich S4547 purity ≥99.0%, molecular weight 102.89
sodium hypochlorite Sigma Aldrich 425044 reagent grade, available chlorine 10~15%, molecular weight 74.44g/mol
sodium hydroxide VWR BDH7221-4 0.5N aqueous solution, density 1.02g/ml, molecular weight 40 g/mol
sodium hydroxide Acros Organics AC12419-0010 0.1N aquesous solution, specific gravity 1.0 g/ml, molecular weight 40 g/mol
ammonium hydroxide Acros Organics AC39003-0025 25% solution in water, pH 13.6, density 0.89, molecular weight 35.04 g/mol
hydrogen peroxide Fisher Scientific H325-100 30.0~32.0% certified ACS, pH 3.3, density 1.11
Mica sheets TED Pella NC9655733 Pelco, grade V5, 10×40mm, 23mm T, minimum air and bubbles, very clean
sulfuric acid Fisher Scientific A300-212 95.0~98.0 w/w%, certified ACS plus, molecular weight 98.08 g/mol
cellulose acetate McMaster Carr 8564K44 degree of substitution 2.5
ethanol Decon Laboratories 04-355-223 200 proof (100%), USP
acetone Fisher Scientific A18-4 purity ≥99.5%, certified ACS reagent grade, density 0.79 g/ml, molecular weight 58.08 g/mol
syringy pump Harvard Apparatus 552226 pump 22 infusion/withdraw with standard syringe holder, flow rate 0.002 ul/h~55.1ml/min
Mill-Q water purification system EMD Millipore D3-UV Direct-Q, UV, water conductivity 18.5 MΩ cm with 20 liter reservair
pH meter Mettler Toledo SeverMulti
balance Mettler Toledo AB135-S accuracy 0.1mg
atomic force microscope Asylum Research MFP-3D, Olympic fluorescent microscope stage
ellipsometer Beaglehole Instruments
fiber centrifuge unknown basket style centrifuge
Warring blender Warring Commercial
ultrasonic processor Sonics Sonics 750W, sound enclosure
Quartz crystal microbalance with dissipation monitoring (QCM-D) Q-Sense Inc.  E4 measure fundamental frequency of 5MHz, and monitor odd number overtones/harmonics from 3~13, use gold-coated piezoelectric quartz crystals
automatted dipper arm Lynxmotion

References

  1. Fratzl, P., et al. On the role of interface polymers for the mechanics of natural polymeric composites. Phys. Chem. Chem. Phys. 6, 5575-5579 (2004).
  2. Terashima, N., Fukushima, K., He, L. F., Takabe, K. Forage cell wall structure and digestibity. American Society of Agronomy. , 247-270 (1993).
  3. Himmel, M. E., et al. Biomass Recalcitrance: Engineering Plants and Enzymes for Biofuels Production. Science. 315, 804-807 (2007).
  4. Terashima, N., et al. Nanostructural assembly of cellulose, hemicellulose, and lignin in the middle layer of secondary wall of ginkgo tracheid. J. Wood. Sci. 55, 409-416 (2009).
  5. Fahlén, J., Salmén, L. Pore and Matrix Distribution in the Fiber Wall Revealed by Atomic Force Microscopy and Image Analysis. Biomacromolecules. 6, 433-438 (2005).
  6. Baer, E., et al. Biological and synthetic hierarchical composites. Phys. Today. 45, 60-67 (1992).
  7. Tirrell, D. A., Aksay, I., Baer, E., Calvert, P. D., Cappello, J., Dimarzio, E. A., Evans, E. A., Fessler, J. Hierarchical structures in biology as a guide for new materials technology. National Academy of Sciences. , (1994).
  8. Fengel, D., Wegener, G. . Wood: Chemistry, Ultrastructure, Reactions. , (1984).
  9. Santa-Maria, M., Jeoh, T. Molecular-Scale Investigations of Cellulose Microstructure during Enzymatic Hydrolysis. Biomacromolecules. 11, 2000-2007 (2010).
  10. Saar, B. G., et al. Label-free, real-time monitoring of biomass processing with stimulated Raman scattering microscopy. Angew. Chem. Int. Edit. 49, 5476-5479 (2010).
  11. Schmidt, M., et al. Label-free in situ imaging of lignification in the cell wall of low lignin transgenic Populus trichocarpa. Planta. 230, 589-597 (2009).
  12. Ding, S. -. Y., Himmel, M. E. The maize primary cell wall microfibril: a new model derived from direct visualization. J. Agricul. Food Chem. 54, 597-606 (2006).
  13. Turon, X., et al. Enzymatic kinetics of cellulose hydrolysis: a QCM-D study. Langmuir. 24, 3880-3887 (2008).
  14. Dammströem, S., et al. On the interactions between cellulose and xylan, a biomimetic simulation of the hardwood cell wall. BioResources. 4, 3-14 (2009).
  15. Barakat, A., et al. Studies of xylan interactions and cross-linking to synthetic lignins formed by bulk and end-wise polymerization: a model study of lignin carbohydrate complex formation. Planta. 226, 267-281 (2007).
  16. Micic, M., et al. Study of the lignin model compound supramolecular structure by combination of near-field scanning optical microscopy and atomic force microscopy. Colloids Surf. B Biointerfaces. 34, 33-40 (2004).
  17. Li, Z., et al. Nanocomposites prepared by in situ enzymatic polymerization of phenol with TEMPO-oxidized nanocellulose. Cellulose. 17, 57-68 (2010).
  18. Gradwell, S. E., et al. Surface modification of cellulose fibers: towards wood composites by biomimetics. C. R. Biologies. 327, 945-953 (2004).
  19. Kaya, A., et al. Surface plasmon resonance studies of pullulan and pullulan cinnamate adsorption onto cellulose. Biomacromolecules. 10, 2451-2459 (2009).
  20. Gustafsson, E., et al. Direct adhesive measurements between wood biopolymer model surfaces. Biomacromolecules. 13, 3046-3053 (2012).
  21. Karabulut, E., Wagberg, L. Design and characterization of cellulose nanofibril-based freestanding films prepared by layer-by-layer deposition technique. Soft Matter. 7, 3467-3474 (2011).
  22. Decher, G., Hong, J. D. Buildup of ultrathin multilayer films by a self-assembly process: II. consecutive adsorption of anionic and cationic bipolar amphiphiles and polyelectrolytes on charged surfaces. Ber. Bunsen. Phys. Chem. 95, 1430-1434 (1991).
  23. Decher, G. Fuzzy nanoassemblies: toward layered polymeric multicomposites. Science. 277, 1232 (1997).
  24. Hammond, P. T. Form and function in multilayer assembly: new applications at the nanoscale. Adv. Mater. 16, 1271-1293 (2004).
  25. Decher, G., Schlenoff, J. B. . Multilayer thin films- sequential assembly of nanocomposite materials. , (2003).
  26. Mamedov, A. A., Kotov, N. A. Free-standing layer-by-layer assembled films of magnetite nanoparticles. Langmuir. 16, 5530-5533 (2000).
  27. Mamedov, A. A., et al. Molecular design of strong single-wall carbon nanotube/polyelectrolyte multilayer composites. Nat. Mater. 1, 257-257 (2002).
  28. Podsiadlo, P., et al. Fusion of seashell nacre and marine bioadhesive analogs: high-strength nanocomposite by layer-by-layer assembly of clay and L-3,4-dihydroxyphenylalanine polymer. Adv. Mater. 19, 949-955 (2007).
  29. Podsiadlo, P., et al. Ultrastrong and stiff layered polymer nanocomposites. Science. 318, 80-83 (2007).
  30. Podsiadlo, P., et al. Can nature’s design be improved upon? High strength, transparent nacre-like nanocomposites with double network of sacrificial cross links. J. Phys. Chem. B. 112, 14359-14363 (2008).
  31. Becker, A. L., et al. Layer-by-layer-assembled capsules and films for therapeutic delivery. Small. 6 (17), (2010).
  32. Taylor, A. D., et al. Fuel cell membrane electrode assemblies fabricated by layer-by-layer electrostatic self-assembly techniques. Adv. Funct. Mater. 18, 3003-3009 (2008).
  33. Ashcraft, J. N., et al. Structure-property studies of highly conductive layer-by-layer assembled membranes for fuel cell PEM applications. J. Mater. Chem. 20, 6250-6257 (2010).
  34. Lee, S. W., et al. High-power lithium batteries from functionalized carbon-nanotube electrodes. Nat. Nano. 5, 531-537 (2010).
  35. Eriksson, M., et al. The influence on paper strength properties when building multilayers of weak polyelectrolytes onto wood fibres. J. Colloid Interf. Sci. 292, 38-45 (2005).
  36. Lvov, Y. M., et al. Dry and wet strength of paper: layer-by-layer nanocoating of mill broken fibers for improved paper. 21, 552-557 (2006).
  37. Lin, Z., et al. Nanocomposite-based lignocellulosic fibers 1. Thermal stability of modified fibers with clay-polyelectrolyte multilayers. Cellulose. 15, 333-346 (2008).
  38. Cranston, E. D., Gray, D. G., Barrett, C. J. Abstracts; 32nd Northeast Regional Meeting of the American Chemical Society. , (2004).
  39. Podsiadlo, P., et al. Molecularly engineered nanocomposites: layer-by-layer assembly of cellulose nanocrystals. Biomacromolecules. 6, 2914-2918 (2005).
  40. Cranston, E. D., Gray, D. G. Formation of cellulose-based electrostatic layer-by-layer films in a magnetic field. Sci. Tech. Adv. Mater. 7, 319-321 (2006).
  41. Cranston, E. D., Gray, D. G. Morphological and optical characterization of polyelectrolyte multilayers incorporating nanocrystalline cellulose. Biomacromolecules. 7, 2522-2530 (2006).
  42. Jean, B., et al. Structural details of cellulose nanocrystals/polyelectrolytes multilayers probed by neutron reflectivity and AFM. Langmuir. 24, 3452-3458 (2008).
  43. Renneckar, S., Zink-Sharp, A., Esker Alan, R., Johnson Richard, K., Glasser Wolfgang, G. Cellulose Nanocomposites. ACS Symposium Series. , 78-96 (2006).
  44. Podsiadlo, P., et al. Layer-by-layer assembled films of cellulose nanowires with antireflective properties. Langmuir. 23, 7901-7906 (2007).
  45. Jean, B., et al. Non-electrostatic building of biomimetic cellulose-xyloglucan multilayers. Langmuir. 25, 3920-3923 (2009).
  46. de Mesquita, J. P., et al. Biobased nanocomposites from layer-by-layer assembly of cellulose nanowhiskers with chitosan. Biomacromolecules. 11, 473-480 (2010).
  47. Wågberg, L., et al. The build-up of polyelectrolyte multilayers of microfibrillated cellulose and cationic polyelectrolytes. Langmuir. 24, 784-795 (2008).
  48. Aulin, C., et al. Buildup of polyelectrolyte multilayers of polyethyleneimine and microfibrillated cellulose studied by in situ dual-polarization interferometry and quartz crystal microbalance with dissipation. Langmuir. 24, 2509-2518 (2008).
  49. Aulin, C., et al. Self-organized films from cellulose I nanofibrils using the layer-by-layer technique. Biomacromolecules. 11, 872-882 (2010).
  50. Azizi Samir, M. A., et al. Review of recent research into cellulosic whiskers, their properties and their application in nanocomposite field. Biomacromolecules. 6, 612-626 (2005).
  51. Siró, I., Plackett, D. Microfibrillated cellulose and new nanocomposite materials: a review. Cellulose. 17, 459-494 (2010).
  52. Eichhorn, S., et al. Review: current international research into cellulose nanofibres and nanocomposites. J. Mat. Sci. 45, 1-33 (2010).
  53. Habibi, Y., et al. Cellulose nanocrystals: chemistry, self-assembly, and applications. Chem. Rev. 110, 3479 (2010).
  54. Teeri, T. T., et al. Biomimetic engineering of cellulose-based materials. Trends Biotechnol. 25, 299-306 (2007).
  55. Saito, T., et al. Homogeneous suspensions of individualized microfibrils from TEMPO-catalyzed oxidation of native cellulose. Biomacromolecules. 7, 1687-1691 (2006).
  56. Pillai, K. V., Renneckar, S. Cation-π Interactions as a Mechanism in Technical Lignin Adsorption to Cationic Surfaces. Biomacromolecules. 10, 798-804 (2009).
  57. Notley, S. M., Norgren, M. Adsorption of a strong polyelectrolyte to model lignin surfaces. Biomacromolecules. 9, 2081-2086 (2008).
  58. Aulin, C., et al. Buildup of polyelectrolyte multilayers of polyethyleneimine and microfibrillated cellulose studied by in situ dual-polarization interferometry and quartz crystal microbalance with dissipation. Langmuir. 24, 2509-2518 (2008).
  59. Argun, A. A., et al. Highly conductive, methanol resistant polyelectrolyte multilayers. Adv. Mater. 20, 1539-1543 (2008).
  60. Li, Q., Renneckar, S. Molecularly thin nanoparticles from cellulose: isolation of sub-microfibrillar structures. Cellulose. 16, 1025-1032 (2009).
  61. Höök, F., et al. Variations in coupled water, viscoelastic properties, and film thickness of a Mefp-1 protein film during adsorption and cross-linking: a auartz crystal microbalance with dissipation monitoring, ellipsometry, and surface plasmon resonance study. Anal. Chem. 73, 5796-5804 (2001).
  62. Naderi, A., Claesson, P. M. Adsorption properties of polyelectrolyte-surfactant complexes on hydrophobic surfaces studied by QCM-D. Langmuir. 22, 7639-7645 (2006).
  63. Kaufman, E. D., et al. Probing protein adsorption onto mercaptoundecanoic acid stabilized gold nanoparticles and surfaces by quartz crystal microbalance and z-potential measurements. Langmuir. 23, 6053-6062 (2007).
  64. Glasser, W. G., Barnett, C. A., Sano, Y. Classification of lignins with different genetic and industrial origins. J. Appl. Polym. Sci.: Appl. Polym. Symp. , (1983).
  65. Van de Steeg, H. G. M., et al. Polyelectrolyte adsorption: a subtle balance of forces. Langmuir. 8, 2538-2546 (1992).
check_url/51257?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Pillai, K., Navarro Arzate, F., Zhang, W., Renneckar, S. Towards Biomimicking Wood: Fabricated Free-standing Films of Nanocellulose, Lignin, and a Synthetic Polycation. J. Vis. Exp. (88), e51257, doi:10.3791/51257 (2014).

View Video