Summary

Mot Biomimicking Wood: Fabricated Frittstående Films av nanocellulose, lignin, og en syntetisk polykation

Published: June 17, 2014
doi:

Summary

Målet med denne undersøkelsen var å danne syntetiske plantecelleveggvevet ved hjelp av lag-på-lag montering av nanocellulose fibriller og isolert lignin sammen av fortynnede vandige suspensjoner. Overflatemåleteknikker av kvartskrystallmikrovekten, og atomic force microscopy ble brukt for å overvåke dannelsen av polymer-polymer nanocomposite materiale.

Abstract

Trebaserte materialer består av plantecellevegger som inneholder en lagdelt sekundærcelleveggen sammensatt av strukturelle polymerer av polysakkarider og lignin. Lag-for-lag (LBL) monteringsprosessen, som er avhengig av sammenstillingen av motsatt ladede molekyler fra vandige oppløsninger som ble brukt for å bygge opp en frittstående kompositt film av isolerte tre polymerer av lignin og oksydert nanofibril cellulose (NFC). For å lette monteringen av disse negativt ladede polymerer, en positivt ladet polyelektrolytt, poly (diallyldimethylammomium klorid) (PDDA), ble brukt som en forbindende sjikt for å skape denne forenklede modell celleveggen. Den lagdelte adsorpsjonsprosess ble undersøkt kvantitativt ved hjelp av kvartskrystall mikrovekt med dissipation overvåkning (QCM-D) og ellipsometry. Resultatene viste at lag masse / tykkelse per adsorberte lags økte som en funksjon av det totale antall lag. Overflaten dekning av adsorberte lag ble studert med atomic force mikroskopi (AFM).Fullstendig dekning av overflaten med lignin i alle avsetningssykluser ble funnet for systemet er imidlertid overflatedekning av NFC øker med antall lag. Den adsorpsjonsprosess ble utført i 250 sykluser (500 bilayers) på en cellulose-acetat (CA) substrat. Transparente frittstående LBL montert nanokompositte filmene ble oppnådd når CA underlaget ble senere oppløst i aceton. Scanning elektronmikroskopi (SEM) av de frakturerte tverrsnitt viste en lamellær struktur, og tykkelsen pr adsorpsjon syklus (PDDA-Lignin-PDDA-NC) ble estimert til å være 17 nm for to ulike ligninprodukter typer som brukes i undersøkelsen. Dataene indikerer en film med svært kontrollert arkitektur der nanocellulose og lignin er romlig avsatt på nanoskala (en polymer-polymer nanocomposites), i likhet med hva som er observert i den opprinnelige celleveggen.

Introduction

Det er stor interesse for å utlede ytterligere kjemikalier og drivstoff fra biomasse, som karbon bindes av plantene under foto er en del av dagens CO 2 syklus. Flertallet av sequestered karbon (42-44%) er i form av cellulose, en polymer som består av β 1-4-koblede glukopyranoseenheter; når det hydrolyseres, kan glukose anvendes som utgangsstoff for fermentering til alkohol-baserte brennstoffer. Imidlertid har cellevegg arkitektur av treaktige planter utviklet seg i årtusener skape et materiale som er motstandsdyktig mot nedbrytning i naturen en. Denne stabiliteten bærer over i den industrielle behandling av trebaserte materialer som energiavlinger gjør cellulose vanskelig tilgjengelig, isolere, og nedbryting til glukose. En nærmere titt på ultrastructure av den sekundære celleveggen avslører at det er en polymer nanocomposite består av lagdelte paracrystalline cellulose microfibrils innebygd i en amorf matrise av lignin og hemicelluloses 2-4. Det lengderetningsorienterte cellulose mikrofibriller har en diameter på omtrent 2-5 nm, noe som er aggregert sammen med andre hetero-polysakkarider for å danne større enheter av fibril bunter 5. De fibril bunter er innebygd i en lignin-hemicellulose kompleks sammensatt av en amorf polymer av phenylpropanol enheter med noen koblinger til andre hetero polysakkarider som glucoronoxylan fire. Videre er denne strukturen videre organisert i lag eller lameller, gjennom lignified sekundærcelleveggen 6-8. Enzymer, som cellulaser, har en svært vanskelig tid på å hente cellulose i celleveggen som det er funnet i sin fibril form og innebygd i lignin. The crux av virkelig gjør biobaserte brensler og fornybar kjemiske plattformer en realitet er å utvikle prosesser som økonomisk tillater forsukring av cellulose i sin opprinnelige form.

Nye kjemiske og bildeteknologi er å hjelpe til med stUdy av de mekanismene som er involvert i forsukring av cellulose 9,10. Mye arbeid har fokusert på Raman konfokal avbildning 11 og atomic force microscopy 12 for å undersøke celleveggen kjemiske sammensetning og morfologi. Å kunne følge nøye mekanismer delignifikasjonen og forsukring er et betydelig skritt fremover, påvirker omdannelsen av cellulose til glukose. Forsukring av modellcelluloseoverflater ble analysert ved å måle enzymkinetiske priser med en kvartskrystall mikrovekt med dissipation overvåkning (QCM-D) 13. Imidlertid opprinnelige cellevegger er meget kompleks som angitt ovenfor, og dette skaper tvetydighet på hvordan forskjellige omdannelsesprosesser som endrer strukturen av plantecellevegg (polymer molekylvekt, kjemiske bindinger, porøsitet). Frittstående modeller i celleveggen stoffer med kjent strukturelle sammensetning ville møte denne bekymringen og tillate integrering av prøvene i state-of-art kjemiske og imaging utstyr.

Det er en mangel på celleveggmodeller og få tilgjengelige kan kategoriseres som blandinger av polymer materialer og regenerert cellulose eller bakteriell cellulose 14, enzymatisk polymeriserte lignin-polysakkarid kompositter 15-17, eller modellflater 18-21. Noen modeller som begynner å ligne celleveggen er prøvene som inneholder lignin forløpere eller analoger polymeriserte enzymatisk i nærvær av cellulose i sin mikrofibrillært form. Imidlertid er disse materialer lider av mangel på organiserte lag arkitektur. En enkel rute for etablering av nanocomposite materialer med organisert arkitektur er det lag-på-lag (LBL) montering teknikk, basert på den sekvensielle opptak av polymerer eller nanopartikler med komplementære avgifter eller funksjonelle grupper for å danne organiserte flerlags kompositt filmer 22-25. Frittstående hybrid nanocomposites med høy styrke, laget av LbL avsetning av polymer og nanoparticles, har blitt rapportert av Kotov et al. 26-30. Blant mange andre programmer, har LBL filmene også blitt undersøkt for deres potensielle bruk i terapeutisk levering 31, drivstoff cellemembranene 32,33, batterier 34, og lignocellulose fiber overflate modifikasjon 35-37. Den nylige interesse i nanoskala cellulose basert komposittmaterialer har ført til utarbeidelse og karakterisering av LBL multilayers av cellulosenanokrystaller (CNC) utarbeidet av svovelsyre hydrolyse av cellulosefiber, og positivt ladede polyelektrolytter 38-43. Lignende studier har også blitt gjennomført med cellulosenanokrystaller hentet fra marine tunicin og kationiske polyelektrolytter 44, CNC og xyloglucan 45, og CNC og kitosan 46. LbL flerlags dannelse av karboksylerte celluloser nanofibrillated (NFCs), fremstilt ved høytrykks-homogenisering av massefibre med kationiske polyelektrolytter har også værtstuderte 47-49. Utarbeidelse, egenskaper og anvendelse av CNCs og nanofibrillated cellulose har blitt gjennomgått i detalj 50-53.

Denne studien innebærer undersøkelse av LBL teknikk som en mulig måte å montere isolerte lignocellulose polymerer (for eksempel nanocellulose og lignin) i en ordnet måte som det første skrittet mot en biomimetic lignocellulose sammensatt med bladstruktur. Den LbL teknikk ble valgt for dets godartet prosessbetingelser som for eksempel, lufttemperatur, trykk, og vann som løsningsmiddel, som er betingelser for naturlig sammensatt formasjon 54.. I denne studien vi rapportere om den flerlags oppbygging av konstitutive tre komponenter, nemlig cellulose-mikrofibriller fra tetrametylpiperidin 1-oksyl (TEMPO) formidlet oksydasjon av cellulose og lignin isolert inn i frittstående lamellære filmer. To forskjellige ligniner brukes fra ulike utvinning teknikker, en en teknisk lignin fra organosolv masseprosessen, og den andre en lignin isolert fra ball-milling med mindre modifikasjon under isolering. Disse forbindelsene er kombinert med en syntetisk polyelektrolytt i denne første studie for å vise gjennomførbarheten av å lage en stabil frittstående filmer med arkitekturen lik den opprinnelige celleveggen.

Protocol

En. Nanofibrillated Cellulose Forberedelse 55 Oppsett en 3 l tre-halset kolbe med 2 liter avionisert vann, et overliggende røreverk og pH-sonde. Legg delignifiserte sulfatmasse, 88% lysstyrke (20 g, 1% (w / v, tørrvektbasis)), 2,2,6,6-tetrametylpiperidin 1-oksyl (TEMPO) (0.313 g, 0.1 mmol / g cellulose) , og natriumbromid (NaBr, 2,0 g, 1 mmol / g cellulose) til kolben. Bland cellulose fiber med overliggende omrører inntil fiberen er dispergert, og ingen aggregater kan sees i r…

Representative Results

QCM-D Analyse av strukturerte Woody Polymer Film Fabrication Den LbL adsorpsjon av lignin, ble NFC og PDDA overvåkes i sanntid med QCM-D i to forskjellige forsøk med to typer av ligniner. Denne analysemetode er meget følsom for å detektere endringer i frekvens når molekyler adsorberes til overflaten av kvartskrystall Fig. 1 inneholder en detaljert beskrivelse av QCM-D respons i en avsetningssyklus, som omfatter to bilayers (PDDA:. HMWL og PDDA: NC). Dataene representerer d…

Discussion

Fabrikasjon av nanocellulose

For nanocellulose fabrikasjon den vellykkede oksydasjon av massefiber er nødvendig for lettvinte fibrillasjon. Oksidasjon er kontrollert av tilgjengelige natriumhypokloritt, som skal være langsomt tilsatt ved kjente mengder basert på mengden av cellulose. En årsak til begrenset oksydasjon oppstår ved lagring av natrium-hypokloritt-løsning i lengre perioder. Dette reduserte oksidasjon effektivitet kan noteres under reaksjonen; masseoppslemmingen skal slå en bl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble i hovedsak støttet av doktorgrads Scholars program ved Institutt for Critical Teknologi og Applied Science (ICTAS) ved Virginia Tech, Virginia Tech Graduate School for å støtte bærekraftig Nanoteknologi programmet, og også USAs Department of Agriculture, Fiskeriforskning stipend nummer 2010-65504-20429. Forfatterne også takke bidrag fra Rick Caudill, Stephen McCartney, og W. Travis kirke til dette arbeidet.

Materials

sulfate pulp Weyerhaeuser  donated brightness level of 88%
organosolv lignin Sigma Aldrich 371017 discontinued
hardwood milled wood lignin see reference in paper
polydiallyldimethylammonium chloride  Sigma Aldrich 409022 Mn = 7.2×10^4, Mw=2.4×10^5
2,2,6,6-Tetramethylpiperidine 1-oxyl (TEMPO)  Sigma Aldrich 214000 catalytic oxidation of primary alcohols to aldehydes with a purity of 98%, molecular weight is 156.25g/mol
sodium bromide Sigma Aldrich S4547 purity ≥99.0%, molecular weight 102.89
sodium hypochlorite Sigma Aldrich 425044 reagent grade, available chlorine 10~15%, molecular weight 74.44g/mol
sodium hydroxide VWR BDH7221-4 0.5N aqueous solution, density 1.02g/ml, molecular weight 40 g/mol
sodium hydroxide Acros Organics AC12419-0010 0.1N aquesous solution, specific gravity 1.0 g/ml, molecular weight 40 g/mol
ammonium hydroxide Acros Organics AC39003-0025 25% solution in water, pH 13.6, density 0.89, molecular weight 35.04 g/mol
hydrogen peroxide Fisher Scientific H325-100 30.0~32.0% certified ACS, pH 3.3, density 1.11
Mica sheets TED Pella NC9655733 Pelco, grade V5, 10×40mm, 23mm T, minimum air and bubbles, very clean
sulfuric acid Fisher Scientific A300-212 95.0~98.0 w/w%, certified ACS plus, molecular weight 98.08 g/mol
cellulose acetate McMaster Carr 8564K44 degree of substitution 2.5
ethanol Decon Laboratories 04-355-223 200 proof (100%), USP
acetone Fisher Scientific A18-4 purity ≥99.5%, certified ACS reagent grade, density 0.79 g/ml, molecular weight 58.08 g/mol
syringy pump Harvard Apparatus 552226 pump 22 infusion/withdraw with standard syringe holder, flow rate 0.002 ul/h~55.1ml/min
Mill-Q water purification system EMD Millipore D3-UV Direct-Q, UV, water conductivity 18.5 MΩ cm with 20 liter reservair
pH meter Mettler Toledo SeverMulti
balance Mettler Toledo AB135-S accuracy 0.1mg
atomic force microscope Asylum Research MFP-3D, Olympic fluorescent microscope stage
ellipsometer Beaglehole Instruments
fiber centrifuge unknown basket style centrifuge
Warring blender Warring Commercial
ultrasonic processor Sonics Sonics 750W, sound enclosure
Quartz crystal microbalance with dissipation monitoring (QCM-D) Q-Sense Inc.  E4 measure fundamental frequency of 5MHz, and monitor odd number overtones/harmonics from 3~13, use gold-coated piezoelectric quartz crystals
automatted dipper arm Lynxmotion

References

  1. Fratzl, P., et al. On the role of interface polymers for the mechanics of natural polymeric composites. Phys. Chem. Chem. Phys. 6, 5575-5579 (2004).
  2. Terashima, N., Fukushima, K., He, L. F., Takabe, K. Forage cell wall structure and digestibity. American Society of Agronomy. , 247-270 (1993).
  3. Himmel, M. E., et al. Biomass Recalcitrance: Engineering Plants and Enzymes for Biofuels Production. Science. 315, 804-807 (2007).
  4. Terashima, N., et al. Nanostructural assembly of cellulose, hemicellulose, and lignin in the middle layer of secondary wall of ginkgo tracheid. J. Wood. Sci. 55, 409-416 (2009).
  5. Fahlén, J., Salmén, L. Pore and Matrix Distribution in the Fiber Wall Revealed by Atomic Force Microscopy and Image Analysis. Biomacromolecules. 6, 433-438 (2005).
  6. Baer, E., et al. Biological and synthetic hierarchical composites. Phys. Today. 45, 60-67 (1992).
  7. Tirrell, D. A., Aksay, I., Baer, E., Calvert, P. D., Cappello, J., Dimarzio, E. A., Evans, E. A., Fessler, J. Hierarchical structures in biology as a guide for new materials technology. National Academy of Sciences. , (1994).
  8. Fengel, D., Wegener, G. . Wood: Chemistry, Ultrastructure, Reactions. , (1984).
  9. Santa-Maria, M., Jeoh, T. Molecular-Scale Investigations of Cellulose Microstructure during Enzymatic Hydrolysis. Biomacromolecules. 11, 2000-2007 (2010).
  10. Saar, B. G., et al. Label-free, real-time monitoring of biomass processing with stimulated Raman scattering microscopy. Angew. Chem. Int. Edit. 49, 5476-5479 (2010).
  11. Schmidt, M., et al. Label-free in situ imaging of lignification in the cell wall of low lignin transgenic Populus trichocarpa. Planta. 230, 589-597 (2009).
  12. Ding, S. -. Y., Himmel, M. E. The maize primary cell wall microfibril: a new model derived from direct visualization. J. Agricul. Food Chem. 54, 597-606 (2006).
  13. Turon, X., et al. Enzymatic kinetics of cellulose hydrolysis: a QCM-D study. Langmuir. 24, 3880-3887 (2008).
  14. Dammströem, S., et al. On the interactions between cellulose and xylan, a biomimetic simulation of the hardwood cell wall. BioResources. 4, 3-14 (2009).
  15. Barakat, A., et al. Studies of xylan interactions and cross-linking to synthetic lignins formed by bulk and end-wise polymerization: a model study of lignin carbohydrate complex formation. Planta. 226, 267-281 (2007).
  16. Micic, M., et al. Study of the lignin model compound supramolecular structure by combination of near-field scanning optical microscopy and atomic force microscopy. Colloids Surf. B Biointerfaces. 34, 33-40 (2004).
  17. Li, Z., et al. Nanocomposites prepared by in situ enzymatic polymerization of phenol with TEMPO-oxidized nanocellulose. Cellulose. 17, 57-68 (2010).
  18. Gradwell, S. E., et al. Surface modification of cellulose fibers: towards wood composites by biomimetics. C. R. Biologies. 327, 945-953 (2004).
  19. Kaya, A., et al. Surface plasmon resonance studies of pullulan and pullulan cinnamate adsorption onto cellulose. Biomacromolecules. 10, 2451-2459 (2009).
  20. Gustafsson, E., et al. Direct adhesive measurements between wood biopolymer model surfaces. Biomacromolecules. 13, 3046-3053 (2012).
  21. Karabulut, E., Wagberg, L. Design and characterization of cellulose nanofibril-based freestanding films prepared by layer-by-layer deposition technique. Soft Matter. 7, 3467-3474 (2011).
  22. Decher, G., Hong, J. D. Buildup of ultrathin multilayer films by a self-assembly process: II. consecutive adsorption of anionic and cationic bipolar amphiphiles and polyelectrolytes on charged surfaces. Ber. Bunsen. Phys. Chem. 95, 1430-1434 (1991).
  23. Decher, G. Fuzzy nanoassemblies: toward layered polymeric multicomposites. Science. 277, 1232 (1997).
  24. Hammond, P. T. Form and function in multilayer assembly: new applications at the nanoscale. Adv. Mater. 16, 1271-1293 (2004).
  25. Decher, G., Schlenoff, J. B. . Multilayer thin films- sequential assembly of nanocomposite materials. , (2003).
  26. Mamedov, A. A., Kotov, N. A. Free-standing layer-by-layer assembled films of magnetite nanoparticles. Langmuir. 16, 5530-5533 (2000).
  27. Mamedov, A. A., et al. Molecular design of strong single-wall carbon nanotube/polyelectrolyte multilayer composites. Nat. Mater. 1, 257-257 (2002).
  28. Podsiadlo, P., et al. Fusion of seashell nacre and marine bioadhesive analogs: high-strength nanocomposite by layer-by-layer assembly of clay and L-3,4-dihydroxyphenylalanine polymer. Adv. Mater. 19, 949-955 (2007).
  29. Podsiadlo, P., et al. Ultrastrong and stiff layered polymer nanocomposites. Science. 318, 80-83 (2007).
  30. Podsiadlo, P., et al. Can nature’s design be improved upon? High strength, transparent nacre-like nanocomposites with double network of sacrificial cross links. J. Phys. Chem. B. 112, 14359-14363 (2008).
  31. Becker, A. L., et al. Layer-by-layer-assembled capsules and films for therapeutic delivery. Small. 6 (17), (2010).
  32. Taylor, A. D., et al. Fuel cell membrane electrode assemblies fabricated by layer-by-layer electrostatic self-assembly techniques. Adv. Funct. Mater. 18, 3003-3009 (2008).
  33. Ashcraft, J. N., et al. Structure-property studies of highly conductive layer-by-layer assembled membranes for fuel cell PEM applications. J. Mater. Chem. 20, 6250-6257 (2010).
  34. Lee, S. W., et al. High-power lithium batteries from functionalized carbon-nanotube electrodes. Nat. Nano. 5, 531-537 (2010).
  35. Eriksson, M., et al. The influence on paper strength properties when building multilayers of weak polyelectrolytes onto wood fibres. J. Colloid Interf. Sci. 292, 38-45 (2005).
  36. Lvov, Y. M., et al. Dry and wet strength of paper: layer-by-layer nanocoating of mill broken fibers for improved paper. 21, 552-557 (2006).
  37. Lin, Z., et al. Nanocomposite-based lignocellulosic fibers 1. Thermal stability of modified fibers with clay-polyelectrolyte multilayers. Cellulose. 15, 333-346 (2008).
  38. Cranston, E. D., Gray, D. G., Barrett, C. J. Abstracts; 32nd Northeast Regional Meeting of the American Chemical Society. , (2004).
  39. Podsiadlo, P., et al. Molecularly engineered nanocomposites: layer-by-layer assembly of cellulose nanocrystals. Biomacromolecules. 6, 2914-2918 (2005).
  40. Cranston, E. D., Gray, D. G. Formation of cellulose-based electrostatic layer-by-layer films in a magnetic field. Sci. Tech. Adv. Mater. 7, 319-321 (2006).
  41. Cranston, E. D., Gray, D. G. Morphological and optical characterization of polyelectrolyte multilayers incorporating nanocrystalline cellulose. Biomacromolecules. 7, 2522-2530 (2006).
  42. Jean, B., et al. Structural details of cellulose nanocrystals/polyelectrolytes multilayers probed by neutron reflectivity and AFM. Langmuir. 24, 3452-3458 (2008).
  43. Renneckar, S., Zink-Sharp, A., Esker Alan, R., Johnson Richard, K., Glasser Wolfgang, G. Cellulose Nanocomposites. ACS Symposium Series. , 78-96 (2006).
  44. Podsiadlo, P., et al. Layer-by-layer assembled films of cellulose nanowires with antireflective properties. Langmuir. 23, 7901-7906 (2007).
  45. Jean, B., et al. Non-electrostatic building of biomimetic cellulose-xyloglucan multilayers. Langmuir. 25, 3920-3923 (2009).
  46. de Mesquita, J. P., et al. Biobased nanocomposites from layer-by-layer assembly of cellulose nanowhiskers with chitosan. Biomacromolecules. 11, 473-480 (2010).
  47. Wågberg, L., et al. The build-up of polyelectrolyte multilayers of microfibrillated cellulose and cationic polyelectrolytes. Langmuir. 24, 784-795 (2008).
  48. Aulin, C., et al. Buildup of polyelectrolyte multilayers of polyethyleneimine and microfibrillated cellulose studied by in situ dual-polarization interferometry and quartz crystal microbalance with dissipation. Langmuir. 24, 2509-2518 (2008).
  49. Aulin, C., et al. Self-organized films from cellulose I nanofibrils using the layer-by-layer technique. Biomacromolecules. 11, 872-882 (2010).
  50. Azizi Samir, M. A., et al. Review of recent research into cellulosic whiskers, their properties and their application in nanocomposite field. Biomacromolecules. 6, 612-626 (2005).
  51. Siró, I., Plackett, D. Microfibrillated cellulose and new nanocomposite materials: a review. Cellulose. 17, 459-494 (2010).
  52. Eichhorn, S., et al. Review: current international research into cellulose nanofibres and nanocomposites. J. Mat. Sci. 45, 1-33 (2010).
  53. Habibi, Y., et al. Cellulose nanocrystals: chemistry, self-assembly, and applications. Chem. Rev. 110, 3479 (2010).
  54. Teeri, T. T., et al. Biomimetic engineering of cellulose-based materials. Trends Biotechnol. 25, 299-306 (2007).
  55. Saito, T., et al. Homogeneous suspensions of individualized microfibrils from TEMPO-catalyzed oxidation of native cellulose. Biomacromolecules. 7, 1687-1691 (2006).
  56. Pillai, K. V., Renneckar, S. Cation-π Interactions as a Mechanism in Technical Lignin Adsorption to Cationic Surfaces. Biomacromolecules. 10, 798-804 (2009).
  57. Notley, S. M., Norgren, M. Adsorption of a strong polyelectrolyte to model lignin surfaces. Biomacromolecules. 9, 2081-2086 (2008).
  58. Aulin, C., et al. Buildup of polyelectrolyte multilayers of polyethyleneimine and microfibrillated cellulose studied by in situ dual-polarization interferometry and quartz crystal microbalance with dissipation. Langmuir. 24, 2509-2518 (2008).
  59. Argun, A. A., et al. Highly conductive, methanol resistant polyelectrolyte multilayers. Adv. Mater. 20, 1539-1543 (2008).
  60. Li, Q., Renneckar, S. Molecularly thin nanoparticles from cellulose: isolation of sub-microfibrillar structures. Cellulose. 16, 1025-1032 (2009).
  61. Höök, F., et al. Variations in coupled water, viscoelastic properties, and film thickness of a Mefp-1 protein film during adsorption and cross-linking: a auartz crystal microbalance with dissipation monitoring, ellipsometry, and surface plasmon resonance study. Anal. Chem. 73, 5796-5804 (2001).
  62. Naderi, A., Claesson, P. M. Adsorption properties of polyelectrolyte-surfactant complexes on hydrophobic surfaces studied by QCM-D. Langmuir. 22, 7639-7645 (2006).
  63. Kaufman, E. D., et al. Probing protein adsorption onto mercaptoundecanoic acid stabilized gold nanoparticles and surfaces by quartz crystal microbalance and z-potential measurements. Langmuir. 23, 6053-6062 (2007).
  64. Glasser, W. G., Barnett, C. A., Sano, Y. Classification of lignins with different genetic and industrial origins. J. Appl. Polym. Sci.: Appl. Polym. Symp. , (1983).
  65. Van de Steeg, H. G. M., et al. Polyelectrolyte adsorption: a subtle balance of forces. Langmuir. 8, 2538-2546 (1992).
check_url/51257?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Pillai, K., Navarro Arzate, F., Zhang, W., Renneckar, S. Towards Biomimicking Wood: Fabricated Free-standing Films of Nanocellulose, Lignin, and a Synthetic Polycation. J. Vis. Exp. (88), e51257, doi:10.3791/51257 (2014).

View Video