Summary

Måling av Heme Synthesis Levels i pattedyrceller

Published: July 09, 2015
doi:

Summary

Altered intracellular heme levels are associated with common diseases such as cancer. Thus, there is a need to measure heme biosynthesis levels in diverse cells. The goal of this protocol is to provide a fast and sensitive method to measure and compare the levels of heme synthesis in different cells.

Abstract

Heme tjener som protese gruppe for en rekke forskjellige proteiner kjent som hemoproteins, slik som hemoglobin, myoglobin og cytokrom. Det er involvert i ulike molekylære og cellulære prosesser som genet transkripsjon, translasjon, celledifferensiering og celleproliferasjon. Biosyntesen nivåene av heme varierer på tvers av forskjellige vev og celletyper og er endret i syke tilstander som anemi, neuropati og kreft. Denne teknikken bruker [4- 14 C] 5-aminolevulinsyre ([14C] 5-ALA), en av de tidlige forløpere i heme biosyntesebanen å måle nivåene av heme syntese i pattedyrceller. Denne analysen innebærer inkubasjon av cellene med [14C] 5-ALA, etterfulgt av ekstraksjon av heme og måling av radioaktiviteten inkorporert i heme. Denne prosedyren er nøyaktig og rask. Denne fremgangsmåten måler den relative nivåer av heme biosyntese i stedet for den totale heme-innhold. For å demonstrere bruken av dette technik nivåene av heme biosyntese ble målt på flere pattedyrcellelinjer.

Introduction

Heme, et kompleks av toverdig jern og protoporfyrin IX er et sentralt molekyl for transport og anvendelse av oksygen i praktisk talt alle levende organismer 1-3. Den unike strukturen av heme gjør det mulig å virke som en bærer av diatomiske gasser og elektroner, samt for å utføre andre funksjoner 1-5. For eksempel, bindes heme til oksygen i hemoglobin og myoglobin for overføring og lagring av oksygen 6,7. Det fungerer også som en elektronbærer i cytochromes under respirasjon og fungerer som et elektron donor for redoksreaksjoner katalysert av cytokrom P450-enzymer 8,9. En av de mest betydningsfulle trekk ved heme er at den kan spille regulatoriske roller i cellulære og molekylære prosesser som gentranskripsjon, proteinsyntese og mikro-RNA biogenese 4. For eksempel, det påvirker transkripsjonen av mange gener ved å kontrollere aktiviteten av pattedyr transcriptional repressor bach1 og pattedyratom receptor Rev-erbα 10-15. Heme regulerer aktiveringen av heme aktivator protein (Hap) 1, som spiller en viktig rolle i aktivering av gener som er involvert i kontroll av respirasjon og oksidativ skade, i respons til heme eller oksygen 16. Heme også regulerer gentranskripsjon i nerveceller via nervevekstfaktor (NGF) signal 3,17-20. Den regulerer også proteinsyntese i pattedyr erytroide celler ved å modulere aktiviteten av heme-regulert eIF2α kinase (HRI) 21-24. Videre påvirker heme aktiviteten av nøkkelsignaleringsproteiner som tyrosinkinase JAK2 og Src, som er avgjørende for riktig funksjon og celle-cellevekst 4,20,25. Det ble funnet at i HeLa-celler heme inhibering fører til cellesyklus-stans og aktivering av markører assosiert med begynnende alderdom og apoptose 26. Både Heme mangel eller økte nivåer av heme er forbundet med alvorlige helseeffekter hos mennesker 27. Nyere molekylære ennd epidemiologiske studier har vist en positiv sammenheng med høy heme inntak og økt risiko for sykdommer, som type-2 diabetes, hjerte- og karsykdommer og flere krefttyper, inkludert lungekreft, tykktarmskreft og bukspyttkjertelkreft 27,28. Ved hjelp av en matchet par normale og kreftlungeceller forfatternes lab har funnet ut at kreftceller har økt nivå av oksygenforbruk, heme syntese og proteiner involvert i heme opptak og oksygen utnyttelse 28. Interessant, inhibering av heme syntese redusert oksygenforbruk, proliferasjon, migrering og kolonidannelse av kreftceller 28. Dermed blir svingninger i nivåene av endogent heme spiller en viktig rolle i reguleringen av molekylære og cellulære prosesser 3,4,28,29.

I pattedyr, oppstår biosyntesen av heme i åtte trinn, som involverer enzymer lokalisert i mitokondriene og cytosol 4 (figur 1). Heme BiosynOppgaven begynner i matriksen i mitokondriene med kondensering av glycin og suksinyl-CoA til å danne 5-aminolevulinsyre (5-ALA), katalysert av ALA-syntase (akk) 4,31. Dette er det hastighetsbegrensende trinnet i biosyntesen heme i nonerythroid celler. 5-ALA blir deretter eksportert inn i cytosolen hvor de neste fire trinn forekommer for å danne coproporphyrinogen III (CPgenIII), som deretter er importert tilbake til mitokondriene, hvor det omdannes til protoporfyrin IX (PpIX). Til slutt blir et molekyl av jern innlemmet i protoporfyrin IX (PpIX) for å produsere heme, en reaksjon katalysert av ferrochelatase (FECH) 2,4.

Graden av heme biosyntesen avhenger først og fremst av nivået på ALAS enzym som er strengt kontrollert av intracellulære jern og heme 4. Biosyntesen av heme kan påvirkes av genetiske defekter, tilgjengelighet av visse mineraler og vitaminer (for eksempel, riboflavin, sink), eksponering for giftstoffer (for eksempel, aluminium, bly), Anoksi, feber, og nivåer av visse steroider (f.eks østrogen) 32-35. Nivået av heme syntese forandres i ulike tilstander syke. Redusert heme biosyntesen kan føre til anemi samt nevrologiske sykdommer 3,36. Alternativt spiller øket heme biosyntese en viktig rolle i progresjon av visse kreftformer 28,37. Heme har vist seg å være kritisk for vekst, differensiering og overlevelse hos pattedyr adipose, erytroide og nevronale celler 4,38-41. For eksempel fører til heme mangel neurite skader i muse kortikale nevroner via inhibering av glutamat NMDA (N-metyl-D-aspartat) reseptorer 17. I tillegg hemming av heme-syntesen fører til programmert celledød i menneske epithelial cervix carcinoma HeLa-celler 26,41. Derfor måle heme biosyntese-nivåer i forskjellige celler under forskjellige forhold er viktig for å studere etiologi og progressipå av mange sykdommer.

Her beskriver vi en rask og følsom metode for å måle nivået av intracellulær heme syntese ved å bruke [4- 14 C] 5-aminolevulic syre. Dette er en alternativ metode til andre metoder som bruker 55 eller 59 Fe Fe. Vi foretrekker å bruke 14 C fordi dens stråling er meget svak. I kontrast er sterk beskyttelse som kreves for å arbeide med Fe isotoper. Videre er denne fremgangsmåte beregnet til å måle og sammenligne heme syntese i forskjellige celler i parallell på en rask måte. For å måle absolutte heme nivåer, kan man anvende den tidligere etablerte metoden involverer bruk av HPLC 42,43.

Protocol

FORSIKTIG: Mens han jobbet med radioaktivitet, ta nødvendige forholdsregler for å unngå forurensning av eksperimentator og omgivelsene. Disponere av alt avfall etter lokale retningslinjer strålingssikkerhet. 1. Utarbeidelse av celler Seed celler i 3,5 cm plater, slik at sammenflytning når 80% -90% på dagen for analysen. Legg merke til at såing sammenflyting for celler er avhengig av celletype og deres vekst. Ved behandling av cellene med et reagens for et bestemt a…

Representative Results

Denne metoden ble anvendt for å sammenligne nivåene av heme-syntese i normal (HBEC30KT) vs. kreft (HCC4017) lungeceller. Figur 2 viser et høyere nivå av heme-syntese i kreftceller (HCC4017) enn normale lungeceller (HBEC30KT). Nivået av heme-syntese ble også målt i normale og kreftceller i nærvær av mitokondriell uncoupler karbonyl cyanid 3-chlorophenylhydrazone (CCCP). Celler ble behandlet med 10 uM CCCP i 24 timer før målingen av heme syntese nivåer. Som forventet, vil nivået av heme-synte…

Discussion

Heme spiller en nøkkelrolle i den generasjonen av mobilnettet energi via respirasjon 26. Altered heme metabolisme er kjent for å være assosiert med ulike sykdommer, inkludert kreft 28,41. Hemming av heme-syntesen er kjent for å forårsake cellesyklus og apoptose i Hela celler 26,41. Det er blitt vist at høy heme syntese nivå er forbundet med progresjon av lungekreftceller 28. Derfor ville det være av stor betydning for å måle nivåene av heme biosyntese i celler under…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De HCC4017 og HBEC30KT cellelinjer ble vennlig levert av Dr. John Minna laboratorium. Dette arbeidet ble støttet av Cecil H. og Ida Grønne midler til Dr. Li Zhang.

Materials

Acetone Sigma 650501
Diethy ether Sigma 296082
HCl (Hydrochloric acid) Fisher A481-212
Liquid Scintillation cocktail  MP Biomedicals 882470
Trypan blue Gibco 15250
Radiolabeled 4-14C aminolevulinic acid Perkin-Elmer life sciences Store @  -80 °C
CelLytic M Sigma C2978 Mammalian cell lysis reagent
Pierce BCA Protein Assay Kit  Thermo Scientific 23227
 Specific reagent
Component Dispense
Heme extraction buffer- Acetone: HCl:Water (25:1.3:5) Acetone 25ml
Concentrated HCl 1.3ml
Water 5ml

References

  1. Furuyama, K., Kaneko, K., Vargas, P. D. Heme as a magnificent molecule with multiple missions: heme determines its own fate and governs cellular homeostasis. Tohoku J Exp Med. 213, 1-16 (2007).
  2. Hamza, I., Dailey, H. A. One ring to rule them all: trafficking of heme and heme synthesis intermediates in the metazoans. Biochim Biophys Acta. 1823, 1617-1632 (2012).
  3. Zhu, Y., Hon, T., Ye, W., Zhang, L. Heme deficiency interferes with the Ras-mitogen-activated protein kinase signaling pathway and expression of a subset of neuronal genes. Cell Growth Differ. 13, 431-439 (2002).
  4. Zhang, L. HEME BIOLOGY: The Secret Life of Heme in Regulating Diverse Biological Processes. Singapore: World Scientific Publishing Company. , (2011).
  5. Mense, S. M., Zhang, L. Heme: a versatile signaling molecule controlling the activities of diverse regulators ranging from transcription factors to MAP kinases. Cell Res. 16, 681-692 (2006).
  6. Ingram, D. J., Kendrew, J. C. Orientation of the haem group in myoglobin and its relation to the polypeptide chain direction. Nature. 178, 905-906 (1956).
  7. Perutz, M. F. X-ray analysis of hemoglobin. Science. 140, 863-869 (1963).
  8. Chance, B. The nature of electron transfer and energy coupling reactions. FEBS Lett. 23, 3-20 (1972).
  9. Guengerich, F. P., MacDonald, T. L. Mechanisms of cytochrome P-450 catalysis. Faseb J. 4, 2453-2459 (1990).
  10. Igarashi, K., et al. Multivalent DNA binding complex generated by small Maf and Bach1 as a possible biochemical basis for beta-globin locus control region complex. J Biol Chem. 273, 11783-11790 (1998).
  11. Ogawa, K., et al. Heme mediates derepression of Maf recognition element through direct binding to transcription repressor Bach1. Embo J. 20, 2835-2843 (2001).
  12. Oyake, T., et al. Bach proteins belong to a novel family of BTB-basic leucine zipper transcription factors that interact with MafK and regulate transcription through the NF-E2 site. Mol Cell Biol. 16, 6083-6095 (1996).
  13. Snyder, S. H., Jaffrey, S. R., Zakhary, R. Nitric oxide and carbon monoxide: parallel roles as neural messengers. Brain Res Brain Res Rev. 26, 167-175 (1998).
  14. Sun, J., et al. Hemoprotein Bach1 regulates enhancer availability of heme oxygenase-1 gene. Embo J. 21, 5216-5224 (2002).
  15. Zhang, L., Guarente, L. Heme binds to a short sequence that serves a regulatory function in diverse proteins. Embo J. 14, 313-320 (1995).
  16. Hon, T., Lee, H. C., Hu, Z., Iyer, V. R., Zhang, L. The heme activator protein Hap1 represses transcription by a heme-independent mechanism in Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 169, 1343-1352 (2005).
  17. Chernova, T., et al. Neurite degeneration induced by heme deficiency mediated via inhibition of NMDA receptor-dependent extracellular signal-regulated kinase 1/2 activation. J Neurosci. 27, 8475-8485 (2007).
  18. Chernova, T., et al. Early failure of N-methyl-D-aspartate receptors and deficient spine formation induced by reduction of regulatory heme in neurons. Mol Pharmacol. 79, 844-854 (2011).
  19. Sengupta, A., Hon, T., Zhang, L. Heme deficiency suppresses the expression of key neuronal genes and causes neuronal cell death. Brain Res Mol Brain Res. 137, 23-30 (2005).
  20. Smith, A. G., Raven, E. L., Chernova, T. The regulatory role of heme in neurons. Metallomics. 3, 955-962 (2011).
  21. Raghuram, S., et al. Identification of heme as the ligand for the orphan nuclear receptors REV-ERBalpha and REV-ERBbeta. Nat Struct Mol Biol. 14, 1207-1213 (2007).
  22. Wu, N., Yin, L., Hanniman, E. A., Joshi, S., Lazar, M. A. Negative feedback maintenance of heme homeostasis by its receptor Rev-erbalpha. Genes Dev. 23, 2201-2209 (2009).
  23. Yin, L., et al. Rev-erbalpha, a heme sensor that coordinates metabolic and circadian pathways. Science. 318, 1786-1789 (2007).
  24. Zhu, Y., Hon, T., Zhang, L. Heme initiates changes in the expression of a wide array of genes during the early erythroid differentiation stage. Biochemical and biophysical research communications. 258, 87-93 (1999).
  25. Yao, X., Balamurugan, P., Arvey, A., Leslie, C., Zhang, L. Heme controls the regulation of protein tyrosine kinases Jak2 and Src. Biochemical and biophysical research communications. 402, 30-35 (2010).
  26. Ye, W., Zhang, L. Heme controls the expression of cell cycle regulators and cell growth in HeLa cells. Biochem and biophys res comm. 315, 546-554 (2004).
  27. Hooda, J., Shah, A., Zhang, L. Heme, an essential nutrient from dietary proteins, critically impacts diverse physiological and pathological processes. Nutrients. 6, 1080-1102 (2014).
  28. Hooda, J., et al. Enhanced heme function and mitochondrial respiration promote the progression of lung cancer cells. PloS one. 8, e63402 (2013).
  29. Atamna, H., Walter, P. B., Ames, B. N. The role of heme and iron-sulfur clusters in mitochondrial biogenesis, maintenance, and decay with age. Arch Biochem Biophys. 397, 345-353 (2002).
  30. Atamna, H., Killilea, D. W., Killilea, A. N., Ames, B. N. Heme deficiency may be a factor in the mitochondrial and neuronal decay of aging. Proc Natl Acad Sci U S A. 99, 14807-14812 (2002).
  31. Ponka, P. Cell biology of heme. Am J Med Sci. 318, 241-256 (1999).
  32. Brawer, J. R., Naftolin, F., Martin, J., Sonnenschein, C. Effects of a single injection of estradiol valerate on the hypothalamic arcuate nucleus and on reproductive function in the female rat. Endocrinol. 103, 501-512 (1978).
  33. Daniell, W. E., et al. Environmental chemical exposures and disturbances of heme synthesis. Environ Health Perspect. 105, 37-53 (1997).
  34. Kihara, T., et al. Hepatic heme metabolism in rats with fever induced by interleukin 1beta. Res Commun Mol Pathol Pharmacol. 104, 115-126 (1999).
  35. Vijayasarathy, C., Damle, S., Prabu, S. K., Otto, C. M., Avadhani, N. G. Adaptive changes in the expression of nuclear and mitochondrial encoded subunits of cytochrome c oxidase and the catalytic activity during hypoxia. Eur J Biochem. 270, 871-879 (2003).
  36. Anderson, K. E. S. S., Bishop, D. F., Desnick, R. J. Disorders of heme biosynthesis: X-linked sideroblastic anemia and the porphyrias. The Metabolic and Molecular Bases of Inherited Disease. , 1-53 (2009).
  37. Salvo, M. L., Contestabile, R., Paiardini, A., Maras, B. Glycine consumption and mitochondrial serine hydroxymethyltransferase in cancer cells: the heme connection. Med Hypotheses. 80, 633-636 (2013).
  38. Ishii, D. N., Maniatis, G. M. Haemin promotes rapid neurite outgrowth in cultured mouse neuroblastoma cells. Nature. 274, 372-374 (1978).
  39. Padmanaban, G., Venkateswar, V., Rangarajan, P. N. Haem as a multifunctional regulator. Trends Biochem Sci. 14, 492-496 (1989).
  40. Rutherford, T. R., Clegg, J. B., Weatherall, D. J. K562 human leukaemic cells synthesise embryonic haemoglobin in response to haemin. Nature. 280, 164-165 (1979).
  41. Ye, W., Zhang, L. Heme deficiency causes apoptosis but does not increase ROS generation in HeLa cells. Biochemical and biophysical research communications. 319, 1065-1071 (2004).
  42. Bonkovsky, H. L., et al. High-performance liquid chromatographic separation and quantitation of tetrapyrroles from biological materials. Anal Biochem. 155, 56-64 (1986).
  43. Sinclair, P. R., Gorman, N., Jacobs, J. M. Measurement of heme concentration. Curr Protoc Toxicol. 8, Unit 8.3 (2001).
  44. Barros, M. H., Carlson, C. G., Glerum, D. M., Tzagoloff, A. Involvement of mitochondrial ferredoxin and Cox15p in hydroxylation of heme O. FEBS Lett. 492, 133-138 (2001).
  45. Shinjyo, N., Kita, K. Up-regulation of heme biosynthesis during differentiation of Neuro2a cells. J Biochem. 139, 373-381 (2006).
  46. Israels, L. G., Yoda, B., Schacter, B. A. Heme binding and its possible significance in heme movement and availability in the cell. Ann N Y Acad Sci. 244, 651-661 (1975).
  47. Yannoni, C. Z., Robinson, S. H. Early-labelled haem in erythroid and hepatic cells. Nature. 258, 330-331 (1975).
  48. Robinson, S. H. Formation of bilirubin from erythroid and nonerythroid sources. Semin Hematol. 9, 43-53 (1972).
  49. Granick, S., Granick, D. Nucleolar necklaces in chick embryo myoblasts formed by lack of arginine. J Cell Biol. 51, 636-642 (1971).
  50. Morell, D. B., Barrett, J., Clezy, P. S. The prosthetic group of cytochrome oxidase. 1. Purification as porphyrin alpha and conversion into haemin alpha. Biochem J. 78, 793-797 (1961).
  51. Sinclair, P., Gibbs, A. H., Sinclair, J. F., de Matteis, F. Formation of cobalt protoporphyrin in the liver of rats. A mechanism for the inhibition of liver haem biosynthesis by inorganic cobalt. Biochem J. 178, 529-538 (1979).
  52. Chung, J., Haile, D. J., Wessling-Resnick, M. Copper-induced ferroportin-1 expression in J774 macrophages is associated with increased iron efflux. Proc Natl Acad Sci U S A. 101, 2700-2705 (2004).
check_url/51579?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hooda, J., Alam, M., Zhang, L. Measurement of Heme Synthesis Levels in Mammalian Cells. J. Vis. Exp. (101), e51579, doi:10.3791/51579 (2015).

View Video