Summary

Fenotyping Mouse lungefunksjon<em> I Vivo</em> Med Lung diffuse Kapasitet

Published: January 06, 2015
doi:

Summary

We describe a means to quickly and simply measure the lung diffusing capacity in mice and show that it is sufficiently sensitive to phenotype changes in multiple common lung pathologies. This metric thus brings direct translational relevance to the mouse models, since diffusing capacity is also easily measured in humans.

Abstract

Musen er nå den primære dyr brukes til å modellere et utvalg av lungesykdommer. Å studere mekanismene som ligger bak slike sykdommer, er fenotypiske metoder nødvendig som kan kvantifisere patologiske endringer. Videre, for å tilveiebringe translasjonell relevans i forhold til musemodeller, bør slike målinger være tester som lett kan bli gjort i både mennesker og mus. Dessverre, i den foreliggende litteratur noen fenotypiske måling av lungefunksjon har direkte applikasjon til mennesker. Et unntak er diffuserende kapasitet for karbonmonoksyd, som er en måling som er rutinemessig utført i mennesker. I denne rapporten beskriver vi et middel for å raskt og enkelt måle dette spredende kapasitet hos mus. Fremgangsmåten innebærer kort lungeinnblåsning med sporstoffgasser i en bedøvet mus, etterfulgt av en 1 min gassanalysetiden. Vi har testet evnen av denne metoden for å påvise flere lunge patologier, inkludert emfysem, fibrose, akutt lungeskade, og influensa ogsopplungeinfeksjoner, samt overvåking lungemodning hos unge valper. Resultatene viser en signifikant reduksjon i alle lunge patologier, så vel som en økning av det diffuserende kapasitet lunge modning. Denne måling av lunge spre kapasitet gir dermed en lungefunksjonstest som har bred anvendelse med sin evne til å oppdage fenotypiske strukturelle endringer med de fleste av de eksisterende patologiske lunge-modeller.

Introduction

Musen er nå den primære dyr brukes til å modellere et utvalg av lungesykdommer. Å studere mekanismene som underly slike sykdommer, er fenotypiske metoder nødvendig som kan kvantifisere det de patologiske forandringer. Selv om det er mange mus studier hvor ventilasjons mekanikk måles, disse målingene er generelt relatert til standard vurdering av lungefunksjon normalt gjort hos mennesker. Dette er uheldig, siden evnen til å utføre tilsvarende målinger i mus og humane individer kan lette translasjon av resultatene i musemodeller til human sykdom.

En av de mest vanlige og lett gjort målinger i humane individer er det diffuserende kapasitet for karbonmonoksyd (DLCO) 1,2, men denne måling har kun sjelden vært gjort i musemodeller. I de studiene der det har blitt rapportert 3-7, har det ikke vært noen oppfølgingsstudier, delvis fordi prosedyrene er ofte tungvint eller kan require komplisert utstyr. En annen tilnærming er å bruke en CO rebreathing fremgangsmåte i en stabil tilstand system, som har fordelen av å være i stand til å måle CO diffusjon i bevisste mus. Men denne metoden er svært tungvint, og resultatene kan variere med nivået på musens ventilasjon samt O 2 og CO to konsentrasjoner 8,9. Disse vanskeligheter synes å ha utelukket rutinemessig bruk av diffuserende kapasitet til å detektere lunge patologier hos mus, til tross for sine mange fordeler.

For å omgå problemene med måling av spre kapasitet hos mus, til detaljer om en enkel måte å måle det på mus har nylig blitt rapportert 10. Fremgangsmåten eliminerer vanskelige problemet med prøvetaking ukontaminert alveolar gass ved hurtig sampling et volum lik hele inspirert gass. Denne fremgangsmåten resulterer i en meget reproduserbar måling, betegnet diffusjon faktor for karbonmonoksyd (DFCO), som er følsom for en rekke pathologic forandringer i lunge fenotype. Den DFCO blir således beregnet som 1 – (CO 9 / CO-c) / (Ne 9 / Ne c), hvor c og 9 indekser henviser til konsentrasjoner av kalibreringsgassene injiseres og gassene som fjernes etter en 9 sek pust holdetiden henholdsvis. DFCO er en dimensjonsløs variabel, som varierer mellom 0 og 1, med en reflekterende fullstendige opptak av all CO og 0-gjenspeiler ikke opptaket av CO.

I denne presentasjonen viser vi hvordan du gjør dette spre måling kapasitet, og hvordan den kan brukes til å dokumentere endringer i nesten alle de eksisterende mus lungesykdom modeller, inkludert emfysem, fibrose, akutt lungeskade, og virus- og soppinfeksjoner.

Protocol

MERK: Alle dyre protokollene ble godkjent av Johns Hopkins University Animal Care og bruk komité. 1. Animal Forberedelse Forbered 6 C57BL / 6 kontrollmus for DFCO måling, ved bedøvelse dem med ketamin og xylazin som beskrevet i trinn 2.3 nedenfor. Forbered alle de andre mus med de forskjellige lunge- sykdommer som er vist i tabell 1 ved hjelp av samme prosedyre som for kontrollene. Spesifikke detaljer som trengs for å etablere hver av disse modellene…

Representative Results

Figur 1 viser DFCO målinger fra de voksne mus i gruppe A, B, C, D, E og F. Det var betydelig nedgang med både Aspergillus og influensa infeksjoner, samt en betydelig nedgang i fibrotisk, emphysematous, og akutt lungeskade modeller. Figur 2 viser den gruppa utviklings endringer i DFCO over tid som musene alder fra 2-6 uker. Det var en liten, men signifikant økning med lunge utvikling over denne gangen kurset. Effekten av å bruke et mindre inflasjon volum var også ganske tydelig ved …

Discussion

I det foreliggende arbeid, definert vi en ny beregning for å kvantifisere gass utveksling evne til mus lungen. Denne beregningen er analog med den diffuserende kapasitet, et vanlig klinisk måling som måler den primære funksjon av lungen, det vil si dets evne til å utveksle gassen. Den diffuserende kapasitet er den eneste lunge funksjonell måling som lett og raskt utført i både mus og mennesker. For detektering av lungesykdom hos mus, er et vesentlig mål for kvantifisering av endringer i lungefunksjonen mellom k…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by NIH HL-10342

Materials

Gas Chromatograph Inficon Micro GC Model 3000A Agilent makes a comparable model
18 g Luer stub needle Becton Dickenson Several other possible vendors
3 mL plastic syringe Becton Dickenson Several other possible vendors
Polypropylene gas sample bags SKC 1 or 2 liter capacity works well Other gas tight bags will work well
Gas tank, 0.3% Ne,0.3% CO, balance air; (size ME) Airgas, Inc Z04 NI785ME3012 This is the standard mixture used for DLCO in humans
25 TCID50/mouse of influenza virus A/PR8 diluted in phosphate buffered saline.
Porcine pancreatic elastase Elastin Products, Owensville, MO 5.4 U
Bleomycin APP Pharmaceuticals, Schaumburg, IL 0.25 U
Escherichia coli LPS8 Sigma L2880 3 μg/g body weight; O55:B5
Aspergillus fumigatus (isolate Af293) conidia were collected from mature colonies grown on potato dextrose agar.

References

  1. Ogilvie, C. M., Forster, R. E., Blakemore, W. S., Morton, J. W. A standardized breath holding technique for the clinical measurement of the diffusing capacity of the lung for carbon monoxide. J Clin Invest. 36 (1 Pt 1), 1-17 (1957).
  2. Miller, A., Warshaw, R., Nezamis, J. Diffusing capacity and forced vital capacity in 5,003 asbestos-exposed workers: Relationships to interstitial fibrosis (ILO profusion score) and pleural thickening. Am J Ind Med. 56 (12), 1383-1393 (2013).
  3. Enelow, R. I., et al. Structural and functional consequences of alveolar cell recognition by CD8(+) T lymphocytes in experimental lung disease. J Clin Invest. 102 (9), 1653-1661 (1998).
  4. Hartsfield, C. L., Lipke, D., Lai, Y. L., Cohen, D. A., Gillespie, M. N. Pulmonary mechanical and immunologic dysfunction in a murine model of AIDS. Am J Physiol. 272 (4 Pt 1), 699-706 (1997).
  5. Wegner, C. D., et al. Intercellular adhesion molecule-1 contributes to pulmonary oxygen toxicity in mice: role of leukocytes revised. Lung. 170 (5), 267-279 (1992).
  6. Reinhard, C., et al. Inbred strain variation in lung function. Mamm Genome. 13 (8), 429-437 (2002).
  7. Sabo, J. P., Kimmel, E. C., Diamond, L. Effects of the Clara cell toxin, 4-ipomeanol, on pulmonary function in rats. J Appl Physiol. 54 (2), 337-344 (1983).
  8. Depledge, M. H. Respiration and lung function in the mouse, Mus musculus (with a note on mass exponents and respiratory variables). Respir Physiol. 60 (1), 83-94 (1985).
  9. Depledge, M. H., Collis, C. H., Barrett, A. A technique for measuring carbon monoxide uptake in mice. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 7 (4), 485-489 (1981).
  10. Fallica, J., Das, S., Horton, M. R., Mitzner, W. Application of Carbon Monoxide Diffusing Capacity in the Mouse Lung. J Appl Physiol. 110 (5), 1455-1459 (2011).
  11. Chaudhary, N., Datta, K., Askin, F. B., Staab, J. F., Marr, K. A. Cystic fibrosis transmembrane conductance regulator regulates epithelial cell response to Aspergillus and resultant pulmonary inflammation. Am J Respir Crit Care Med. 185 (3), 301-310 (2012).
  12. Foster, W. M., Walters, D. M., Longphre, M., Macri, K., Miller, L. M. Methodology for the measurement of mucociliary function in the mouse by scintigraphy. J Appl Physiol. 90 (3), 1111-1117 (2001).
  13. Yildirim, A. O., et al. Palifermin induces alveolar maintenance programs in emphysematous mice. Am J Respir Crit Care Med. 181 (7), 705-717 (2010).
  14. Collins, S. L., Chan-Li, Y., Hallowell, R. W., Powell, J. D., Horton, M. R. Pulmonary vaccination as a novel treatment for lung fibrosis. PLoS One. 7 (2), e31299 (2012).
  15. Alessio, F. R., et al. CD4+CD25+Foxp3+ Tregs resolve experimental lung injury in mice and are present in humans with acute lung injury. J Clin Invest. 119 (10), 2898-2913 (2009).
  16. Martinez, F. J., et al. The clinical course of patients with idiopathic pulmonary fibrosis. Ann Intern Med. 142 (12 Pt 1), 963-967 (2005).
  17. Zhou, L., et al. Correction of lethal intestinal defect in a mouse model of cystic fibrosis by human CFTR. Science. 266 (5191), 1705-1708 (1994).
check_url/52216?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Limjunyawong, N., Fallica, J., Ramakrishnan, A., Datta, K., Gabrielson, M., Horton, M., Mitzner, W. Phenotyping Mouse Pulmonary Function In Vivo with the Lung Diffusing Capacity. J. Vis. Exp. (95), e52216, doi:10.3791/52216 (2015).

View Video