Summary

3D modellering av sideventriklene og Histologisk Karakterisering av periventricular Tissue hos mennesker og mus

Published: May 19, 2015
doi:

Summary

Using MRI scans (human), 3D imaging software, and immunohistological analysis, we document changes to the brain’s lateral ventricles. Longitudinal 3D mapping of lateral ventricle volume changes and characterization of periventricular cellular changes that occur in the human brain due to aging or disease are then modeled in mice.

Abstract

The ventricular system carries and circulates cerebral spinal fluid (CSF) and facilitates clearance of solutes and toxins from the brain. The functional units of the ventricles are ciliated epithelial cells termed ependymal cells, which line the ventricles and through ciliary action are capable of generating laminar flow of CSF at the ventricle surface. This monolayer of ependymal cells also provides barrier and filtration functions that promote exchange between brain interstitial fluids (ISF) and circulating CSF. Biochemical changes in the brain are thereby reflected in the composition of the CSF and destruction of the ependyma can disrupt the delicate balance of CSF and ISF exchange. In humans there is a strong correlation between lateral ventricle expansion and aging. Age-associated ventriculomegaly can occur even in the absence of dementia or obstruction of CSF flow. The exact cause and progression of ventriculomegaly is often unknown; however, enlarged ventricles can show regional and, often, extensive loss of ependymal cell coverage with ventricle surface astrogliosis and associated periventricular edema replacing the functional ependymal cell monolayer. Using MRI scans together with postmortem human brain tissue, we describe how to prepare, image and compile 3D renderings of lateral ventricle volumes, calculate lateral ventricle volumes, and characterize periventricular tissue through immunohistochemical analysis of en face lateral ventricle wall tissue preparations. Corresponding analyses of mouse brain tissue are also presented supporting the use of mouse models as a means to evaluate changes to the lateral ventricles and periventricular tissue found in human aging and disease. Together, these protocols allow investigations into the cause and effect of ventriculomegaly and highlight techniques to study ventricular system health and its important barrier and filtration functions within the brain.

Introduction

En ependymal cellemonolag linjer ventrikkel systemet i hjernen som gir toveis barriere og transportfunksjoner mellom cerebrospinalvæsken (CSF) og interstitiell væske (ISF) 1-3. Disse funksjonene bidrar til å holde hjernen giftstoffet frie og i fysiologisk balanse 2,3. Hos mennesker tap av deler av denne foring på grunn av skade eller sykdom synes ikke å resultere i regenerativ erstatning som finnes i andre epitel foringer; heller tap av ependymal celle dekning synes å resultere i periventricular astrogliosis med en nettvare av astrocytter som dekker områder ribbet for ependymal celler ved ventrikkelen overflaten. Alvorlige konsekvenser på viktige CSF / ISF valutakurser og rydnings mekanismer ville bli spådd å skyldes tap av denne epitellaget 1,2,4-7.

Et fellestrekk ved menneskelig aldring er forstørret sideventriklene (ventriculomegaly) og tilhørende periventricular ødem som observatøred ved MR og væske svekket inversjon recovery MR (MRI / FLAIR) 8-14. For å undersøke forholdet mellom ventriculomegaly og mobil organisering av ventrikkelen fôr, ble postmortem menneskelige MR sekvenser matchet med histologiske preparater av lateral ventrikkel periventricular vev. I tilfeller av ventriculomegaly, hadde betydelige områder av gliose erstattet ependymal celle dekning langs side ventrikkel veggen. Når ventrikkel utvidelse ikke ble oppdaget av MRI-baserte volumanalyse, den ependymal celleforingen var intakt og gliose ble ikke påvist langs ventrikkel fôr 6. Dette kombi tilnærming representerer de første omfattende dokumentasjon detaljering endringer i cellulær integritet laterale ventrikkel fôr bruker wholemount preparater av deler eller hele laterale ventrikkel vegg og 3D modellering av ventrikkel volumer 6. Flere sykdommer (Alzheimers sykdom, schizofreni) og skader (traumatisk hjerneskade)vise ventriculomegaly som en tidlig nevropatologiske trekk. Denudasjon områder av ependymal celleforingen dermed ville bli spådd å forstyrre normal ependymal cellefunksjon og kompromittere homeostatic balanse mellom CSF / ISF væske og oppløst stoff utveksling. Dermed vil en grundigere undersøkelse av endringer i ventrikkel systemet, dets cellulære sammensetningen, og konsekvensen til underliggende eller nabo strukturer i hjernen til slutt begynne å avsløre mer om nevropatologi forbundet med ventrikkel utvidelse.

Mangelen på multimodale bildedata, særlig langsgående datasekvenser sammen med begrenset tilgang til tilsvarende histologiske vevsprøver gjør analyse av humane hjernesykdommer vanskelig. Modellering fenotyper funnet i menneskelig aldring eller sykdom kan ofte oppnås med musemodeller og dyremodeller blitt en av våre beste middel til å utforske spørsmål om menneskelig sykdom initiering og progresjon. Flere studier påfriske unge mus har beskrevet cytoarchitecture av laterale ventrikkel vegger og underliggende stamcelle nisje 4,7-15. Disse studiene har blitt utvidet til å inkludere 3D-modellering og cellulær analyse av ventrikkelen veggene gjennom aldring 6,15. Verken periventricular gliose heller ventriculomegaly er observert hos eldre mus, snarere mus viser en relativt robust subventicular sone (SVZ) stamcelle nisje underliggende til en intakt ependymal celle fôr 6,15. Således slående artsspesifikke forskjeller i både generelt vedlikehold og integriteten av den laterale ventrikkel slimhinnen i løpet av aldringsprosessen 6,15. Derfor, for å sikre best mulig utnyttelse mus å avhøre betingelser som finnes hos mennesker, forskjeller mellom de to artene må være preget og hensiktsmessig betraktes i enhver modellering paradigme. Her presenterer vi rutiner for å evaluere langsgående endringer i sideventriklene og tilhørende periventricular vev i både mennesker og mOuse. Våre prosedyrer inkluderer 3D-gjengivelse og volumetri av både mus og menneske ventriklene, og bruk av immunhistokjemisk analyse av hele mount preparater av periventricular vev for å karakterisere både mobilnettet organisering og struktur. Sammen danner disse fremgangsmåtene gir et middel til å karakterisere endringer i det ventrikulære systemet og tilhørende periventricular vev.

Protocol

MERK: Animal prosedyrene ble godkjent av University of Connecticut IACUC og i samsvar med NIH retningslinjer. Menneskelig vev og dataanalyse og prosedyrer var i samsvar med og godkjent av University of Connecticut IRB og i samsvar med NIH retningslinjer. 1. Mus: Analyse av periventricular Cellular Integritet og 3D modellering av Lateral ventrikkel 1.1) Fremstilling av Muse lateral ventrikkel Vegg Hele Mounts Forbered muse laterale ventrikkel hele mounts f…

Representative Results

Contour sporing av muse sideventriklene basert på immunostained 50 mikrometer koronalsnitt og 3D rekonstruksjoner (figur 3) gjør volumdata skal samles i ulike eksperimentelle paradigmer bruker mus som modellsystem for sykdom eller skade. Kritisk for denne prosedyren er utelukkelse av områder der de laterale ventrikkel veggene holder seg til hverandre. Ved subsegmenting regioner i ventriklene og utpeke en annen farge for hver region (Figur 3C), kan sammenhengende seksjoner holdes og r…

Discussion

Vi presenterer verktøy og protokoller som kan brukes til å evaluere integriteten av hjernens ventrikulære system i mus og i mennesker. Disse verktøyene kan imidlertid også anvendes på andre strukturer i hjernen eller organsystemer som gjennomgår endringer som skyldes skade, sykdom eller under aldringsprosessen 14,21,22. Strategiene presenteres dra nytte av programvare som gjør justeringen av tverrsnitt og langsgående MR sekvenser for å generere 3D volum representasjoner av spesifikke regioner eller …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

An NINDS Grant NS05033 (JCC) supported this work. The University of Connecticut RAC, SURF and OUR programs provided additional support.

Materials

Name of the Materal/Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Phosphate buffered saline (PBS) Life Technologies 21600-069
Paraformaldehyde (PFA) Electron Microscopy Sciences 19210 Use at 4% in PBS, 4 °C
Normal Horse Serum Life Technologies 16050 10% in PBS-TX (v/v)
Normal Goat Serum Life Technologies 16210 10% in PBS-TX (v/v)
Triton X-100 (TX) Sigma-Aldrich T8787 0.1% in PBS (v/v)
Vibratome Leica VT1000S
Fluorescence Microscope Zeiss Imager.M2
Camera Hamamatsu ORCA R2
Microscope Stage Controller Ludl Electronic Products MAC 6000
Stereology software MBF Bioscience Stereo Investigator 11
Stereology software ImageJ/NIH NIH freeware
3D Reconstruction software MBF Bioscience Neurolucida Explorer
Confocal Microscope Leica TCS SP2
MRI Software
Freesurfer https://surfer.nmr.mgh.harvard.edu/fswiki/DownloadAndInstall Segmentation and Volume
ITK-Snap http://www.itksnap.org/pmwiki/pmwiki.php Segmentation and Volume
Multi-image Analysis GUI (Mango) http://ric.uthscsa.edu/mango/ Longitudinal overlay
Whole Mount Equipment
22.5° microsurgical straight stab knife Fisher Scientific NC9854830
parafilm
wax bottom dissecting dish 
pins
fine forceps
aquapolymount
Dissecting Microscope Leica MZ95
Whole Mount Antibodies
mouse anti-b-catenin BD Bioschiences, San Jose, CA, USA 1:250
goat anti-GFAP Santa Cruz Biotechnology 1:250
rabbit anti-AQP4 (aquaporin-4)  Sigma-Aldrich 1:400
Coronal Antibodies
Anti-S100β antibody Sigma-Aldrich 1:500
4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) Life Technologies D-1306 10 µg/mL in PBS

References

  1. Del Bigio, M. R. Ependymal cells: biology and pathology. Acta Neuropathol. 119, 55-73 (2010).
  2. Johanson, C., et al. The distributional nexus of choroid plexus to cerebrospinal fluid, ependyma and brain: toxicologic/pathologic phenomena, periventricular destabilization, and lesion spread. Toxicol Pathol. 39, 186-212 (2011).
  3. Roales-Bujan, R., et al. Astrocytes acquire morphological and functional characteristics of ependymal cells following disruption of ependyma in hydrocephalus. Acta Neuropathologica. 124, 531-546 (2012).
  4. Cserr, H. F. Physiology of the choroid plexus. Physiol Rev. 51, 273-311 (1971).
  5. Iliff, J. J., et al. A paravascular pathway facilitates CSF flow through the brain parenchyma and the clearance of interstitial solutes, including amyloid beta. Science Translational Medicine. 4, 147ra111 (2012).
  6. Shook, B. A., et al. Ventriculomegaly associated with ependymal gliosis and declines in barrier integrity in the aging human and mouse brain. Aging Cell. , (2013).
  7. Xie, L., et al. Sleep drives metabolite clearance from the adult brain. Science. 342, 373-377 (2013).
  8. Fazekas, F., et al. Pathologic correlates of incidental MRI white matter signal hyperintensities. Neurology. 43, 1683-1689 (1993).
  9. Meier-Ruge, W., Ulrich, J., Bruhlmann, M., Meier, E. Age-related white matter atrophy in the human brain. Ann N Y Acad Sci. 673, 260-269 (1992).
  10. Resnick, S. M., Pham, D. L., Kraut, M. A., Zonderman, A. B., Davatzikos, C. Longitudinal magnetic resonance imaging studies of older adults: a shrinking brain. The Journal Of Neuroscience : The Official Journal Of The Society For Neuroscience. 23, 3295-3301 (2003).
  11. Sener, R. N. Callosal changes in obstructive hydrocephalus: observations with FLAIR imaging, and diffusion MRI. Comput Med Imaging Graph. 26, 333-337 (2002).
  12. Sze, G., et al. Foci of MRI signal (pseudo lesions) anterior to the frontal horns: histologic correlations of a normal finding. AJR Am J Roentgenol. 147, 331-337 (1986).
  13. Tisell, M., et al. Shunt surgery in patients with hydrocephalus and white matter changes. Journal of Neurosurgery. 114, 1432-1438 (2011).
  14. Valdes Hernandez Mdel, C., et al. Automatic segmentation of brain white matter and white matter lesions in normal aging: comparison of five multispectral techniques. Magn Reson Imaging. 30, 222-229 (2012).
  15. Shook, B. A., Manz, D. H., Peters, J. J., Kang, S., Conover, J. C. Spatiotemporal changes to the subventricular zone stem cell pool through aging. The Journal of Neuroscience : The Official Journal Of The Society For Neuroscience. 32, 6947-6956 (2012).
  16. Mirzadeh, Z., Merkle, F. T., Soriano-Navarro, M., Garcia-Verdugo, J. M., Alvarez-Buylla, A. Neural stem cells confer unique pinwheel architecture to the ventricular surface in neurogenic regions of the adult brain. Cell Stem Cell. 3, 265-278 (2008).
  17. Mirzadeh, Z., Doetsch, F., Sawamoto, K., Wichterle, H., Alvarez-Buylla, A. The subventricular zone en-face: wholemount staining and ependymal flow. J Vis Exp. , (2010).
  18. Luo, J., Daniels, S. B., Lennington, J. B., Notti, R. Q., Conover, J. C. The aging neurogenic subventricular zone. Aging Cell. 5, 139-152 (2006).
  19. Luo, J., Shook, B. A., Daniels, S. B., Conover, J. C. Subventricular zone-mediated ependyma repair in the adult mammalian brain. J Neurosci. 28, 3804-3813 (2008).
  20. Marcus, D. S., Fotenos, A. F., Csernansky, J. G., Morris, J. C., Buckner, R. L. Open access series of imaging studies: longitudinal MRI data in nondemented and demented older adults. J Cogn Neurosci. 22, 2677-2684 (2010).
  21. Giorgio, A., De Stefano, N. Clinical use of brain volumetry. J Magn Reson Imaging. 37, 1-14 (2013).
  22. Caspers, S., et al. Studying variability in human brain aging in a population-based German cohort-rationale and design of 1000BRAINS. Front Aging Neurosci. 6, 149 (2014).
  23. Keuken, M. C., et al. Ultra-high 7T MRI of structural age-related changes of the subthalamic nucleus. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 33, 4896-4900 (2013).
  24. Marti-Bonmati, L., Sopena, R., Bartumeus, P., Sopena, P. Multimodality imaging techniques. Contrast Media Mol Imaging. 5, 180-189 (2010).
  25. Bergmann, O., et al. The age of olfactory bulb neurons in humans. Neuron. 74, 634-639 (2012).
  26. Sanai, N., et al. Corridors of migrating neurons in the human brain and their decline during infancy. Nature. 478, 382-386 (2011).
  27. Wang, C., et al. Identification and characterization of neuroblasts in the subventricular zone and rostral migratory stream of the adult human brain. Cell Res. 21, 1534-1550 (2011).
  28. Carmen Gomez-Roldan, D. e. l., M, , et al. Neuroblast proliferation on the surface of the adult rat striatal wall after focal ependymal loss by intracerebroventricular injection of neuraminidase. The Journal of Comparative Neurology. 507, 1571-1587 (2008).
check_url/52328?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Acabchuk, R. L., Sun, Y., Wolferz, Jr., R., Eastman, M. B., Lennington, J. B., Shook, B. A., Wu, Q., Conover, J. C. 3D Modeling of the Lateral Ventricles and Histological Characterization of Periventricular Tissue in Humans and Mouse. J. Vis. Exp. (99), e52328, doi:10.3791/52328 (2015).

View Video