Summary

Une intervention chirurgicale pour résection de la Rib souris: un modèle pour à grande échelle de réparation des os longs

Published: January 21, 2015
doi:

Summary

The overall goal of this procedure is to successfully resect a portion of bone from the rib of a mouse. The procedure was developed as a model to study large-scale long bone repair.

Abstract

Ce protocole introduit chercheurs à un nouveau modèle de grande échelle réparation osseuse en utilisant la nervure de la souris. La procédure indications suivantes: préparation de l'animal pour la chirurgie, l'ouverture de la paroi thoracique du corps, l'exposition de la nervure souhaitée dans les muscles intercostaux environnantes, excision de la section de nervure souhaitée sans provoquer un pneumothorax, et la fermeture des incisions. Par rapport aux os du squelette appendiculaire, les nervures sont très accessibles. En outre, aucun fixateur interne ou externe ne est nécessaire étant donné que les nervures adjacentes fournissent une fixation naturelle. La chirurgie utilise commercialement fournitures disponibles, est simple à apprendre, et bien toléré par l'animal. La procédure peut être réalisée avec ou sans enlever le périoste environnant et donc la contribution du périoste de réparation peut être évaluée. Les résultats indiquent que si le périoste est retenu, la réparation robuste se produit dans 1-2 mois. Nous nous attendons à ce que l'utilisation de ce protocolestimuler la recherche sur la réparation des côtes et que les conclusions faciliteront le développement de nouveaux moyens de stimuler la réparation osseuse dans d'autres endroits à travers le corps.

Introduction

Débilitante blessures squelettiques, l'arthrose chronique et les problèmes graves associés à la chirurgie reconstructive impact sur la productivité économique, bien-être familial, et la qualité de vie. Bien que de petites pauses et des lésions peuvent guérir assez bien, les humains ne sont pas capables de réparer des défauts importants et doivent donc compter sur les procédures de reconstruction pour restaurer la structure et la fonction. Reconstruction greffes allogéniques peut impliquer ou heterogeneic, os morcellized, échafaudages implantés, ou de distraction ostéogenèse. Malheureusement, non seulement il ya des facteurs persistants de morbidité associés à ces traitements, mais la force originale de l'os réparé est rarement atteint. Ainsi, de nouvelles approches cliniques sont nécessaires.

Un moyen de développer des méthodes innovantes pour traiter les défauts segmentaires est d'étudier les situations dans lesquelles la réparation à grande échelle se produit naturellement. Amphibiens célèbre peut régénérer éléments squelettiques, tandis que les mammifères sont considérées comme limitées dans eest la capacité. Cependant, depuis le début du 20 e siècle, quelques rapports de la régénération de la nervure humaine ont été publiées suggérant que les humains ne peuvent pas être limitées 1-4. Actuellement ce phénomène est mieux connu par les chirurgiens plasticiens qui utilisent des matériaux de nervure pour la reconstruction mâchoire, le visage et l'oreille, mais il ne est pas plus largement appréciée 5. Afin d'étudier cette réparation plus en détail, nous avons développé un modèle chirurgicale en utilisant la souris. En utilisant ce protocole, les chercheurs peuvent identifier les facteurs innés impliqués et utiliser cette information pour faciliter la cicatrisation osseuse dans d'autres endroits.

Il ya plusieurs avantages à utiliser les nervures comme un modèle pour l'étude de la réparation du squelette. Tout d'abord, les nervures entourant fournissent un fixateur naturel (par rapport à la résection du fémur 6,7). Cela diminue le risque de morbidité des fixateurs internes et externes et simplifie la procédure chirurgicale. Deuxièmement, les couches musculaires minces des wa poitrinell prévoir un accès facile et une excellente visibilité qui font le test comparable à la commodité de la voûte du crâne résections 8. Troisièmement, contrairement à la calottes qui forment par ossification dermique, la forme de nervures par ossification endochondrale et croître en longueur via l'extension à plaques de croissance situés à chaque extrémité d'une diaphyse central. Par conséquent, la réparation des nervures peut être plus comparable à la réparation des os longs du squelette appendiculaire. En outre, nous avons trouvé que, par rapport au fémur, le périoste de la nervure est plus épais et peut être plus facilement manipulé. Ainsi, les enquêteurs qui souhaitent doser la réparation osseuse dans le but d'étudier le périoste ou de tester des thérapies cellulaires, des agents pharmacologiques, et / ou échafaudages tissulaires peuvent trouver ce modèle chirurgicale utile. En résumé, ce modèle de résection costale fournit un contexte dans lequel l'étude à grande échelle de réparation naturelle de l'os chez les mammifères comme aucun tel modèle d'usage général qui existe actuellement.

Protocol

NOTE: Toutes les procédures sont conformes à un protocole animale approuvé par le Comité institutionnel de protection des animaux et l'utilisation (IACUC) à l'Université de Californie du Sud. 1. Préparation pour l'intervention Disposez les outils chirurgicaux et les fournitures nécessaires (stérilisée, articles 1 à 18 dans la liste des matériaux) et d'organiser un microscope à dissection et un fibre optique trans-illuminateur dans une …

Representative Results

Les animaux sont habituellement récupérer rapidement de cette procédure, l'incision guérit bien, et les animaux présentent un comportement normal. La procédure utilise les fournitures disponibles dans le commerce et après la pratique, peut être complété en moins de 1 h. Avant d'utiliser cette procédure pour générer des données expérimentales, il est important d'analyser la résection au point de temps 0 jour pour déterminer si des grands fragments d'os peuvent rester dans la zone de rése…

Discussion

Lors de la première apprendre ce protocole, déterminer où trouver l'incision initiale peut être difficile. Cependant, la pratique sur des souris euthanasiés aide le chirurgien apprendre où placer l'incision initiale et exposer la nervure souhaitée à réséquer. Travailler sur des cadavres améliore également les motricité fine requises pour supprimer la partie thoracique avec ou sans le périoste. En outre, quelqu'un de nouveau à cette procédure pourrait trouver manipuler les outils et fines sutu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank members of the Mariani lab for critical reading of the manuscript. Our funding sources were: the Baxter Medical Scholar Research Fellowship (to M.K.S.), USC undergraduate fellowships and the Provost, Dean Joan M. Schaeffer, and Rose Hills Fellowships, (to M.K.S.). We also acknowledge a CIRM BRIDGES fellowship through Pasadena City College (to T.T.T). and the James H. Zumberge Research and Innovation Fund, the USC Regenerative Medicine Initiative, and the NIAMS NIH under Award Number R21AR064462 (to F.V.M).

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Medium sized micro-dissection scissors (Vannas-Tübingen Spring Scissors 5 mm) Fine Science Tools 15003-08
Fine micro-dissection scissors (Vannas Spring Scissors – 2mm Cutting Edge) Fine Science Tools 15000-04 curved tip is beneficial
Micro-scalpel 5.0 mm Fine Science Tools 10315-12 other fine scalpels can be substituted
Dumont 55 forceps Fine Science Tools 11295-51
Retractor  Fine Science Tools 17004-05 adjustability is convenient
Micro-needle holders Fine Science Tools 12060-01
9.0 nylon sutures (Ethilon), taper point best Ethicon 2819G or similar taper point best but reverse cutting is also good
7.0 prolene sutures (Prolene) Ethicon 8700H or similar 6-0 can be used too, needle point can vary
Large forceps (Adson Forceps) Fine Science Tools 11006-12 other brands are fine
Lubricant Eye Ointment (Akwa Tears) Akorn 17478-062-35
Suture glue (GLUture Topical Tissue Adhesive) Abbot 32046-01 has excellent working time
Shaver Wahl 9918-6171 or similar
Clamp lamp Zoo Med LF-5
Infrared Bulb, 75W Zoo Med RS-75
RC2 Rodent Anesthesia System VetEquip  922100
IsoFlo (Isoflurane) Abbot 05260-05
Buprenorphine (Buprenex) Reckitt Benckiser 12496-0757-1
Betadine Purdue Frederick 67618015017
Flavored Gelatin, raspberry Jell-O B000E1FYL0 made up firm, to the consistency of 'jigglers'

References

  1. Philip, S. J., Kumar, R. J., Menon, K. V. Morphological study of rib regeneration following costectomy in adolescent idiopathic scoliosis. Eur Spine J. 14 (8), 772-776 (2005).
  2. Munro, I. R., Guyuron, B. Split-rib cranioplasty. Ann Plast Surg. 7 (5), 341-346 (1981).
  3. Taggard, D. A., Menezes, A. H. Successful use of rib grafts for cranioplasty in children. Pediatric neurosurgery. 34 (3), 149-155 (2001).
  4. Head, J. R. Prevention of Regeneration fo the Ribs: A problem in thoracic surgery. Archives of Surgery. 14 (6), 1215-1221 (1927).
  5. Kawanabe, Y., Nagata, S. A new method of costal cartilage harvest for total auricular reconstruction: part I. Avoidance and prevention of intraoperative and postoperative complications and problems. Plastic and reconstructive surgery. 117 (6), 2011-2018 (2006).
  6. Cheung, K. M., et al. An externally fixed femoral fracture model for mice. Journal of orthopaedic research : official publication of the Orthopaedic Research Society. 21 (4), 685-690 (2003).
  7. Matthys, R., Perren, S. M. Internal fixator for use in the mouse. Injury. 40, S103-S109 (2009).
  8. Cooper, G. M., et al. Testing the critical size in calvarial bone defects: revisiting the concept of a critical-size defect. Plastic and reconstructive surgery. 125 (6), 1685-1692 (2010).
  9. . Ask the Vet. JAX NOTES. 499, (2005).
  10. Flecknell, P. A., Roughan, J. V., Stewart, R. Use of oral buprenorphine (‘buprenorphine jello’) for postoperative analgesia in rats–a clinical trial. Laboratory animals. 33 (2), 169-174 (1999).
  11. Rigueur, D., Lyons, K. M. Whole-mount skeletal staining. Methods in molecular biology. 1130, 113-121 (2014).
  12. Evans, D. J. Contribution of somitic cells to the avian ribs. Developmental biology. 256 (1), 114-126 (2003).
  13. Colnot, C., Thompson, Z., Miclau, T., Werb, Z., Helms, J. A. Altered fracture repair in the absence of MMP9. Development. 130 (17), 4123-4133 (2003).
  14. Lu, C., et al. Cellular basis for age-related changes in fracture repair. Journal of orthopaedic research : official publication of the Orthopaedic Research Society. 23 (6), 1300-1307 (2005).
  15. Zilberman, Y., Gafni, Y., Pelled, G., Gazit, Z., Gazit, D. Bioluminescent imaging in bone. Methods in molecular biology. 455, 261-272 (2008).
  16. Pelled, G., Gazit, D. Imaging using osteocalcin-luciferase. Journal of musculoskeletal. 4 (4), 362-363 (2004).
  17. Elefteriou, F., Yang, X. Genetic mouse models for bone studies–strengths and limitations. Bone. 49 (6), 1242-1254 (2011).
  18. Srour, M. K., et al. Natural large-scale regeneration of rib cartilage in a mouse. J. Bone Miner. , (2014).
check_url/52375?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tripuraneni, N., Srour, M. K., Funnell, J. W., Thein, T. Z. T., Mariani, F. V. A Surgical Procedure for Resecting the Mouse Rib: A Model for Large-Scale Long Bone Repair. J. Vis. Exp. (95), e52375, doi:10.3791/52375 (2015).

View Video