Summary

Härledning av renat Cardiomyocytes från Human inducerade pluripotenta stamceller Använda småmolekylära-module Differentiering och Efterföljande Glukos Svält

Published: March 18, 2015
doi:

Summary

Here, we describe a robust protocol for human cardiomyocyte derivation that combines small molecule-modulated cardiac differentiation and glucose deprivation-mediated cardiomyocyte purification, enabling production of purified cardiomyocytes for the purposes of cardiovascular disease modeling and drug screening.

Abstract

Mänskliga inducerade pluripotenta stamceller som härrör hjärtmuskelceller (hiPSC-CMS) har blivit en viktig cellkälla att åtgärda bristen på primära kardiomyocyter som grundforskning och translationell applikationer. För att skilja hiPSCs till hjärtmuskelceller har olika protokoll inklusive embryoid kropp (EB) -baserad differentiering och tillväxtfaktor induktion utvecklats. Emellertid, dessa protokoll är ineffektiva och mycket varierande i sin förmåga att generera renade kardiomyocyter. Nyligen genomfördes en liten molekyl-baserat protokoll utnyttjar modulering av Wnt / β-catenin signalering visat att främja hjärt differentiering med hög effektivitet. Med detta protokoll, var större än 50% -60% av differentierade celler kardiellt troponin-positiva kardiomyocyter konsekvent observerats. För att ytterligare öka cardiomyocyte renhet, var de differentierade cellerna utsattes för glukos svält för att specifikt eliminera icke-kardiomyocyter baserade på den metaboliska skillnadens mellan kardiomyocyter och icke-hjärtmuskelceller. Med hjälp av denna urvalsstrategi, konsekventa resultat vi en ökning som är större än 30% i förhållandet kardiomyocyter till icke-kardiomyocyter i en population av differentierade celler. Dessa högrenade hjärtmuskelceller bör öka tillförlitligheten av resultaten från human iPSC-baserade in vitro sjukdomsmodelleringsstudier och narkotikascreeninganalyser.

Introduction

Primära humana kardiomyocyter är svåra att erhålla på grund av kravet på invasiva kardiologiska biopsier, svårighet att dissociera till enstaka celler, och på grund av dålig långtidscellöverlevnad i kultur. Givet denna brist på primära humana hjärtmuskelceller, patientspecifika människa inducerade pluripotenta stamceller som härrör cardiomyocyte (hiPSC-CM) teknik har betraktats som ett kraftfullt alternativ cardiomyocyte källa för grundforskning samt kliniska och translation applikationer såsom sjukdomsmodellering och narkotika upptäckt en. Tidiga insatser i differentiering pluripotenta stamceller till kardiomyocyter anställd differentieringsprotokoll som använder embryoidkroppar (EBS), men denna metod är ineffektiv i producerande cardiomyocytes eftersom det ofta mindre än 25% av cellerna i en EB är att slå cardiomyocytes 2,3. Jämförelsevis, ett monolager baserad differentiering protokollet använder cytokinerna Activin A och BMP4 visade en högre verkningsgrad än EBS, menDetta protokoll är fortfarande relativt ineffektiv, kräver dyra tillväxtfaktorer, och bara fungerar i ett begränsat antal mänskliga pluripotenta stamcellslinjer 4. Nyligen var en mycket effektiv, hiPSC monobaserad cardiomyocyte differentiering protokoll som utvecklats genom att modulera Wnt / β-catenin signalering 5. Dessa hiPSC-CM uttrycka kardiellt troponin T och alfa actinin, två sarcomeric proteiner som är standard markörer för hjärtmuskelceller 6. Protokollet beskriver här är en anpassning av denna lilla molekyl-baserade, matarcellfritt, monolager differentiering metod 5,7. Vi kan få slå cardiomyocytes från hiPSCs efter 7-10 dagar (Figur 1). Men efter en cardiomyocyte differentiering vilket resulterade i 50% slå celler, immunfärgning konsekvent visar att det finns en population av icke-hjärtmuskelceller som är negativa för cardiomyocyte specifika markörer såsom hjärtspecifika troponin T och alfa-actinin. Till further rena hjärtmuskelceller och eliminera icke-kardiomyocyter var heterogena differentierade cellpopulationer utsatt till glukos svält genom att behandla dem med en extremt låg glukosodlingsmedium för flera dagar (Figur 2). Denna behandling selektivt eliminerar icke-kardiomyocyter grund av möjligheten för hjärtmuskelceller, men inte icke-cardiomyocytes, att metabolisera laktat som primär energikälla för att överleva i en låg glukos miljö 8. Efter detta reningssteg, är en ökning av kvoten mellan kardiomyocyter till icke-hjärtmuskelceller 40% observerats, (figur 3, Figur 4) och dessa celler kan användas för nedströms genuttrycksanalys, sjukdomsmodellering, och drogscreeninganalyser.

Protocol

OBS: Vendor information för alla reagenser som används i detta protokoll har listade i tabell 1 och Materiallista. Alla lösningar och utrustning som kommer i kontakt med cellerna måste vara steril, och aseptisk teknik skall användas i enlighet med detta. Utför alla odlings inkubationer i en fuktad 37 ° C, 5% CO2 inkubator om inte annat anges. I detta protokoll är alla skillnader utförs i 6-brunnars plattor, i vilka hiPSCs sås. Efter differentiering och rening, kan…

Representative Results

De morfologiska förändringar under hiPSC differentiering. Den hiPSC odlas i matarfria plåtar växte som platta, tvådimensionella kolonier. På att nå omkring 85% sammanflytades hiPSCs behandlades med 6 iM CHIR för differentiering (Figur 1A). Betydande mängder av celldöd, ett normalt och vanligt fenomen, observerades efter 24 h av CHIR behandling. Efter två dagar av CHIR behandling, de hiPSCs fortsatte att differentiera mot en mesodermalt öde. I jä…

Discussion

Skaffa en stor mängd högrenade hiPSC-derived kardiomyocyter är avgörande för grundläggande hjärtforskning samt kliniska och translationapplikationer. Hjärtdifferentieringsprotokoll har genomgått enorma förbättringar under de senaste åren, övergår från embryoidkroppar kroppsbaserade metoder som utnyttjar kardiogen tillväxtfaktorer 2, till matrissandwichmetoder 12, och slutligen till små molekyl-modulerad och monolager-baserade metoder 5. Av de ovannämnda protokollen, det…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported in part by the NIH/NHBI (U01 HL099776-5), the NIH Director’s New Innovator Award (DP2 OD004411-2), the California Institute of Regenerative Medicine (RB3-05129), the American Heart Association (14GRNT18630016) and the Endowed Faculty Scholar Award from the Lucile Packard Foundation for Children and the Child Health Research Institute at Stanford (to SMW). We also acknowledge funding support from the American Heart Association Predoctoral Fellowship 13PRE15770000, and National Science Foundation Graduate Research Fellowship Program DGE-114747 (AS).

Materials

Name Company Catalog number
Matrigel (9-12 mg/mL) BD Biosciences 354277
RPMI media Invitrogen 11835055
Glucose free RPMI media Invitrogen 11879-020
B27 Minus Insulin Invitrogen A1895601
B27 Supplement (w/ insulin) Invitrogen 17504-044
Pen-strep antibiotic Invitrogen 15140122
Fetal bovine serum BenchMark 100-106
DMSO Sigma D-2650
ROCK inhibitor Y-27632 EMD Millipore 688000
CHIR99021 Thermo Fisher 508306
IWR1 Sigma I0161
EDTA Invitrogen 15575-020
Accutase Millipore SCR005
Cell lifter Fisher 08-100-240
Cryovial Fisher (NUNC tubes) 375418
TrypLE Select Enzyme Invitrogen 12563-011

References

  1. Sharma, A., Wu, J. C., Wu, S. M. Induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes for cardiovascular disease modeling and drug screening. Stem Cell Research & Therapy. 4 (6), 150 (2013).
  2. Kehat, I., et al. Human embryonic stem cells can differentiate into myocytes with structural and functional properties of cardiomyocytes. The Journal of Clinical Investigation. 108 (3), 407-414 (2001).
  3. Zhang, J., et al. Functional cardiomyocytes derived from human induced pluripotent stem cells. Circulation Research. 104 (4), e30-e41 (2009).
  4. Kattman, S. J., et al. Stage-specific optimization of activin/nodal and BMP signaling promotes cardiac differentiation of mouse and human pluripotent stem cell lines. Cell Stem Cell. 8 (2), 228-240 (2011).
  5. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (27), E1848-E1857 (2012).
  6. Sharma, A., et al. Human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes as an in vitro model for coxsackievirus B3-induced myocarditis and antiviral drug screening platform. Circulation Research. 115 (6), 556-566 (2014).
  7. Lian, X., et al. Directed cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells by modulating Wnt/beta-catenin signaling under fully defined conditions. Nature Protocols. 8 (1), 162-175 (2013).
  8. Tohyama, S., et al. Distinct metabolic flow enables large-scale purification of mouse and human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Cell Stem Cell. 12 (12), 127-137 (2013).
  9. Rodin, S., et al. Long-term self-renewal of human pluripotent stem cells on human recombinant laminin-511. Nature Biotechnology. 28 (6), 611-615 (2010).
  10. Li, X., Meng, G., Krawetz, R., Liu, S., Rancourt, D. E. The ROCK inhibitor Y-27632 enhances the survival rate of human embryonic stem cells following cryopreservation. Stem Cells And Development. 17 (6), 1079-1085 (2008).
  11. Burridge, P. W., et al. Chemically defined generation of human cardiomyocytes. Nature Methods. 11 (8), 855-860 (2014).
  12. Zhang, J., et al. Extracellular matrix promotes highly efficient cardiac differentiation of human pluripotent stem cells: the matrix sandwich method. Circulation Research. 111 (9), 1125-1136 (2012).
  13. Burridge, P. W., Keller, G., Gold, J. D., Wu, J. C. Production of de novo cardiomyocytes: human pluripotent stem cell differentiation and direct reprogramming. Cell Stem Cell. 10 (1), 16-28 (2012).
check_url/52628?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sharma, A., Li, G., Rajarajan, K., Hamaguchi, R., Burridge, P. W., Wu, S. M. Derivation of Highly Purified Cardiomyocytes from Human Induced Pluripotent Stem Cells Using Small Molecule-modulated Differentiation and Subsequent Glucose Starvation. J. Vis. Exp. (97), e52628, doi:10.3791/52628 (2015).

View Video