Summary

Modelagem Encefalopatia da Prematuridade Usando pré-natal hipóxia-isquemia com Lipopolysaccharide intra-amniótica em Ratos

Published: November 20, 2015
doi:

Summary

Encephalopathy of prematurity encompasses the central nervous system abnormalities associated with injury from preterm birth. This report describes a clinically relevant rat model of in utero transient systemic hypoxia-ischemia and intra-amniotic lipopolysaccharide administration (LPS) that mimics chorioamnionitis, and the related impact of infectious stimuli and placental underperfusion on CNS development.

Abstract

Encefalopatia da prematuridade (final do período) é um termo que engloba o sistema nervoso central (CNS) anormalidades associadas à prematuridade. Para melhores objetivos translacionais antecedência e descobrir novas estratégias terapêuticas para a lesão cerebral associada ao nascimento prematuro, modelos pré-clínicos de EoP deve incluir mecanismos semelhantes de lesões pré-natal mundial observada em humanos e envolvem múltiplos componentes do sistema materno-fetal-placentária. Idealmente, os modelos devem produzir um espectro semelhante de déficits funcionais no animal maduro e recapitular vários aspectos da fisiopatologia. Para imitar os defeitos humanos sistêmicas da placenta de perfusão, subperfusão placentária e / ou chorioamnionitis associadas com a inflamação induzida por patógeno em parto prematuro cedo, foi desenvolvido um modelo de pré-natal transitória sistêmica a hipóxia-isquemia (tshi) combinado com lipopolissacarídeo intra-amniótica (LPS). Em grávidas ratos Sprague Dawley, tshi via oclusão da artéria uterina on dia embrionário 18 (E18) induz um defeito subperfusão placentária graduada associada com o aumento da lesão do SNC do feto. Quando combinado com injeções de LPS intra-amniótica, inflamação da placenta é aumentada e danos CNS é agravado com a matéria, da marcha e de imagem brancos anormalidades associadas. Pré-natal tshi e tshi + LPS insultos pré-natal atender vários dos critérios de um modelo EoP incluindo recapitulando o insulto intra-uterina, causando perda de neurônios, oligodendrócitos e axônios, perda de subplate e déficits funcionais em animais adultos que imitam aqueles observados em crianças nascidas extremamente prematuro. Além disso, este modelo permite a dissecção da inflamação induzida por tipos de lesões divergentes.

Introduction

Com mais de 12% das crianças nascidas nos Estados Unidos antes da idade gestacional de 37 semanas estimada 1, lesão cerebral perinatal (PBI) da prematuridade é uma importante causa de incapacidade permanente. PBI da prematuridade, encefalopatia também denominado de prematuridade (EOP), afecta todo o sistema nervoso central (SNC). Lesão CNS muitas vezes começa no útero, e é agravada por processos de pré-natal, incluindo chorioamnionitis e complicações pós-natais, como hipóxia e sepse. PBI de insultos sistêmicos altera neurodesenvolvimento e leva à paralisia cerebral, epilepsia, atraso cognitivo e inúmeros transtornos neuropsiquiátricos afetando regulação emocional, memória e função executiva 1,2. Embora muito progresso tenha sido feito, uma compreensão limitada de como continua a ser as conseqüências celulares e moleculares da lesão CNS desde o nascimento prematuro traduzir para o grande número de sequelas neurológicas em crianças que nascem prematuros. Esta falta de conhecimento traseiraers diagnóstico em tempo real do CNS gravidade da lesão e dosagem informado das intervenções emergentes. Além disso, as estratégias terapêuticas adequadas à idade para essa população vulnerável paciente ainda imperceptíveis.

Inflamação intra-uterino é muito comum na prematuridade extrema e envolve uma cascata inflamatória materno-fetal-placentária complexo 3. Infecção intra-uterina é frequentemente subclínica. Achados placentários específicos consistentes com inflamação aguda, ou corioamnionite histológica, são os principais determinantes da resposta inflamatória fetal e são coincidentes com lesão cerebral associada com o nascimento pré-termo 3-5. Na verdade, a resposta inflamatória fetal tem implicações clínicas distintas para resultados a longo prazo desde o nascimento prematuro. Os bebês que são pequenos para a idade gestacional (PIG) ​​ou que experimentam infecção são excepcionalmente vulneráveis ​​aos déficits neurológicos 3,4. Corioamnionite é um diagnóstico patológico típico após o nascimento prematuro <sup> 6,7, e exame histológico revela sinais de inflamação em 70% das placentas de recém-nascidos muito prematuros 4. Além disso, corioamnionite é associado à disfunção cognitiva em dois anos 8. Evidência de subperfusão vascular materno na placenta de recém-nascidos prematuros extremos também está associada com paralisia cerebral na infância 9. O impacto sinérgico de corioamnionite e placentários defeitos de perfusão é bem ilustrado pelo notavelmente alto risco de resultados neurológicos anormais nessa população de pacientes aos dois anos de idade 10,11.

Para imitar defeitos sistêmicos humanos placentária de perfusão e chorioamnionitis associadas com a inflamação induzida por patógeno, foi desenvolvido um modelo de pré-natal transitória sistêmica a hipóxia-isquemia (tshi) combinado com lipopolissacarídeo intra-amniótica (LPS) em ratos. Nosso objetivo foi adaptar o nosso modelo de tshi sozinho em ratos 12-16 para incluir a inflamação intra-uterina,para facilitar a modelagem pré-clínico de lesão do SNC associada com o nascimento prematuro. Tshi sozinho revelou perda persistente de células da linhagem oligodendrogliais, neurônios corticais, aumento da morte celular, e níveis elevados de citocinas pró-inflamatórias, com intervalos de isquemia progressivas que levam a um padrão de lesão classificada consistente com lesão cerebral pré-natal 16. Modificações isquémicos os componentes deste modelo também demonstraram défices de codificação da memória, a memória de curto e longo prazo e alterações músculo-esqueléticas leves em ratos com a idade 17-19. Na verdade, nós já demonstraram que a combinação de tshi + LPS recapitula as características fisiopatológicas da EoP, incluindo oligodendrócitos e perda neuronal, lesão axonal, inflamação celular e anormalidades funcionais 20.

Protocol

Cuidado Institucional e Comissões Use no hospital de ambos Boston Children ea Universidade do Novo México Centro de Ciências da Saúde aprovou todos os procedimentos experimentais. NOTA: Antes de iniciar o procedimento, selo, esterilizar e autoclave todos os instrumentos cirúrgicos e campos cirúrgicos. Além disso, preparar medicamentos pós-operatórios em frascos esterilizados, incluindo 0,125% bipivucaine e 0,1 mg / kg de buprenorfina. Também preparar a solução de lipopolissacarí…

Representative Results

Seguindo tshi + LPS em E18, hematoxilina e eosina revela anormalidades histopatológicas significativas, tanto na placenta (Figura 1) e no cérebro (Figura 2). Placentas examinadas em E19 e E21 são grosseiramente edematosa com micro-hemorragia e necrose em toda a decídua e labirinto. Também se observa infiltrado inflamatório significativo e aumento da vascularização. Cérebros examinados em P2 revelar ventriculomegalia, bem como a substância branca e perda subplate neurônio em c…

Discussion

Encefalopatia da prematuridade é difícil de modelar em animais por causa da complexa interação de etiologias, curso do tempo do desenvolvimento neurológico, complexidade da formação da rede cerebral humano, sobrepondo mecanismos de lesão, e os diversos fenótipos de CNS insulta manifesto em prematuros humanos. EoP está associada com as vulnerabilidades no tipo específico de célula (isto é, oligodendrócitos imaturos) 21, bem como diversas vias desenvolvente reguladas (isto é sub…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores agradecem a Dan Firl, Chris Corbett e Jesse Denson, PhD. O financiamento foi fornecido pelo NIH R01 NINDS NS060765 para SR, o P30 Cobre Programa Piloto para a LJ e do Programa de Saúde da Criança Assinatura para LJ na Universidade do Novo México.

Materials

Saline Solution, 0.9% Sigma S8776
LPS 011B4 Sigma L2630
Evan's Blue Dye Sigma E2129
Surgical gloves Biogel 40870
OR Towels Cardinal Health 287000-008 Sterile
PDI Alcohol Prep Pads Fisherbrand 06-669-62
Mini Arco Rechargeable Clippers Kent Scientific Corp. CL8787
Betadine surgical scrub Purdue Products L.P. 67618-151-17
Eye Lubricant Refresh Lacri Lube 00023-0312
Blunt Forceps Roboz RS-8100
Scissors Roboz RS-6808
Surgical Scissors Roboz RS-5880
Surgical Scissors F.S.T. 14002-16
Syringe BD 309628 1 ml
Needle BD 305122 25G 5/8
Needle BD 305128 30G 1
Cotton-tipped Applicators Fisherbrand 23-400-114 Small, 6 inch sterile
Cotton Gauze Sponge Fisherbrand 22-362-178
Needle Holders Kent Scientific Corp. INS600109 12.5 CM STR
Vessel Clips Kent Scientific Corp. INS600120 30G Pressure
3-0 Perma Hand Silk Sutures Ethicon 1684G Black braided, 3-0 (2 metric), 18", non-absorbable,  PS-1 24mm needle, 3/8 circle
Insulin Syringes BD 328438 0.3cc 3mm 31G
Pentobarbital
Buprenorphine
Bupivacaine
Isoflurane
Lithium Carbonate Acros Chemicals 554-13-2
Superfrost Plus Microscope Slides VWR 48311-703
Hematoxylin Leica 3801521 Surgipath Gill II Hematoxylin
Eosin Leica 3801601 Surgipath Eosin
Xylenes Fisherbrand X3S-4 Histological Grade
Permount Fisherbrand SP15-100
Coverglass Fisherbrand 12-548-5P Fisher Finest Premium Coverglass

References

  1. Blencowe, H., et al. Preterm birth associated neurodevelopmental impairment estimates at regional and global levels for 2010. Pediatr Res. 74, 17-34 (2013).
  2. Mwaniki, M. K., Atieno, M., Lawn, J. E., Newton, C. R. Long term neurodevelopmental outcomes after intrauterine and neonatal insults a systematic review. Lancet. 379, 445-452 (2012).
  3. Dammann, O., Leviton, A. Intermittent or sustained systemic inflammation and the preterm brain. Pediatr Res. 75, 376-380 (2014).
  4. Leviton, A., et al. Microbiologic and histologic characteristics of the extremely preterm infant’s placenta predict white matter damage and later cerebral palsy. the ELGAN study Pediatr Res. 67, 95-101 (2010).
  5. Redline, R. W. Inflammatory responses in the placenta and umbilical cord. Semin Fetal Neonatal Med. 11, 296-301 (2006).
  6. Lee, J., et al. Chronic chorioamnionitis is the most common placental lesion in late preterm birth. Placenta. 34, 681-689 (2013).
  7. Lee, S. M., et al. Acute histologic chorioamnionitis is a risk factor for adverse neonatal outcome in late preterm birth after preterm premature rupture of membranes. PloS one. 8, e79941 (2013).
  8. Pappas, A., et al. Chorioamnionitis and early childhood outcomes among extremely low gestational age neonates. JAMA Peds. 168, 137-147 (2014).
  9. Gaillard, R., Arends, L. R., Steegers, E. A., Hofman, A., Jaddoe, V. W. Second and third trimester placental hemodynamics and the risks of pregnancy complications the Generation R Study. Am J Epidemiol. 177, 743-754 (2013).
  10. Trivedi, S., et al. Fetal placental inflammation but not adrenal activation is associated with extreme preterm delivery. Am J Obstet Gynecol. 206, 236 (2012).
  11. Yanowitz, T. D., et al. Hemodynamic disturbances in premature infants born after chorioamnionitis association with cord blood cytokine concentrations. Pediatr Res. 51, 310-316 (2002).
  12. Jantzie, L. L., Corbett, C. J., Firl, D. J., Robinson, S. Postnatal Erythropoietin Mitigates Impaired Cerebral Cortical Development Following Subplate Loss from Prenatal Hypoxia Ischemia. Cereb Cortex. , (2014).
  13. Jantzie, L. L., et al. Erythropoietin attenuates loss of potassium chloride co transporters following prenatal brain injury. Mol Cell Neurosci. 61, 152-162 (2014).
  14. Jantzie, L. L., Miller, R. H., Robinson, S. Erythropoietin signaling promotes oligodendrocyte development following prenatal systemic hypoxic ischemic brain injury. Pediatric Res. 74, 658-667 (2013).
  15. Mazur, M., Miller, R. H., Robinson, S. Postnatal erythropoietin treatment mitigates neural cell loss after systemic prenatal hypoxic ischemic injury. J Neurosurg Peds. 6, 206-221 (2010).
  16. Robinson, S., et al. Developmental changes induced by graded prenatal systemic hypoxic ischemic insults in rats. Neurobiol Dis. 18, 568-581 (2005).
  17. Delcour, M., et al. Neuroanatomical sensorimotor and cognitive deficits in adult rats with white matter injury following prenatal ischemia. Brain Pathol. 22, 1-16 (2012).
  18. Delcour, M., et al. Impact of prenatal ischemia on behavior cognitive abilities and neuroanatomy in adult rats with white matter damage. Behav Brain Res. 232, 233-244 (2012).
  19. Delcour, M., et al. Mild musculoskeletal and locomotor alterations in adult rats with white matter injury following prenatal ischemia. Intl J Devel Neurosci. 29, 593-607 (2011).
  20. Jantzie, L. L., et al. Complex pattern of interaction between in utero hypoxia ischemia and intra amniotic inflammation disrupts brain development and motor function. J Neuroinflam. 11, 131 (2014).
  21. Back, S., et al. Selective vulnerability of late oligodendrocyte progenitors to hypoxia ischemia. J Neurosci. 22, 455-463 (2002).
  22. Jantzie, L. L., et al. Developmental Expression of N Methyl d Aspartate (NMDA) Receptor Subunits in Human White and Gray Matter Potential Mechanism of Increased Vulnerability in the Immature Brain. Cereb Cortex. 25, 482-495 (2015).
  23. Jantzie, L. L., Robinson, S. Preclinical Models of Encephalopathy of Prematurity. Devel Neurosci. , (2015).
  24. Workman, A. D., Charvet, C. J., Clancy, B., Darlington, R. B., Finlay, B. L. Modeling transformations of neurodevelopmental sequences across mammalian species. J Neurosci. 33, 7368-7383 (2013).
  25. Herlenius, E., Lagercrantz, H. Development of neurotransmitter systems during critical periods. Exper Neurol. 190, S8-S21 (2004).
  26. Kelsom, C., Lu, W. Development and specification of GABAergic cortical interneurons. Cell Biosci. 3, 19 (2013).
  27. Kinney, H., Back, S. Human oligodendroglial development Relationship to periventricualr leukomalacia. Semin Pediatr Neuro. 5, 180-189 (1998).
  28. Robinson, S., Li, Q., DeChant, A., Cohen, M. Neonatal loss of gamma amino butyric acid pathway expression after human perinatal brain injury. J Neurosurg Peds. 104, 396-408 (2006).
  29. Xu, G., et al. Late development of the GABAergic system in the human cerebral cortex and white matter. J Neuropathol Exp Neurol. 70, 841-858 (2011).
  30. Segovia, K. N., et al. Arrested oligodendrocyte lineage maturation in chronic perinatal white matter injury. Ann Neurol. 63, 520-530 (2008).
  31. Robinson, S., Li, Q., Dechant, A., Cohen, M. L. Neonatal loss of gamma aminobutyric acid pathway expression after human perinatal brain injury. J Neurosurg. 104, 396-408 (2006).
  32. Boksa, P. Effects of prenatal infection on brain development and behavior a review of findings from animal models. Brain Behav Immun. 24, 881-897 (2010).
  33. Burd, I., Brown, A., Gonzalez, J. M., Chai, J., Elovitz, M. A. A mouse model of term chorioamnionitis unraveling causes of adverse neurological outcomes. Repro Sci. 18, 900-907 (2011).
  34. Bergeron, J. D., et al. White matter injury and autistic like behavior predominantly affecting male rat offspring exposed to group B streptococcal maternal inflammation. Devel Neurosci. 35, 504-515 (2013).
  35. Uchida, K., et al. Effects of Ureaplasma parvum lipoprotein multiple banded antigen on pregnancy outcome in mice. J Reprod Immunol. 100, 118-127 .
check_url/53196?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jantzie, L. L., Winer, J. L., Maxwell, J. R., Chan, L. A., Robinson, S. Modeling Encephalopathy of Prematurity Using Prenatal Hypoxia-ischemia with Intra-amniotic Lipopolysaccharide in Rats. J. Vis. Exp. (105), e53196, doi:10.3791/53196 (2015).

View Video