Summary

Mikrobiologisk Induced Kalsitt Nedbør mediert av<em> Sporosarcina pasteurii</em

Published: April 16, 2016
doi:

Summary

Protocols for microbiologically induced calcite precipitation (MICP) using the bacterium Sporosarcina pasteurii are presented here. The precipitated calcium carbonate was characterized through optical microscopy and scanning electron microscopy (SEM). It is also shown that exposure to MICP increases the compressive strength of sponge.

Abstract

Den spesielle bakterien under etterforskning her (S. pasteurii) er unik i sin evne, under de rette forholdene, for å indusere hydrolyse av urea (ureolysis) i naturlig forekommende miljøer gjennom utskillelse av et enzym urease. Denne prosessen med ureolysis, gjennom en kjede av kjemiske reaksjoner, fører til dannelse av kalsiumkarbonat utfellinger. Dette er kjent som Mikrobiologisk Induced Kalsitt nedbør (MICP). De riktige kultur protokoller for MICP er beskrevet her. Til slutt ble visualiserings forsøk under forskjellige moduser av mikroskopi utført for å forstå forskjellige aspekter av utfellingsprosessen. Teknikker som optisk mikroskopi, ble Scanning elektronmikroskopi (SEM) og X-Ray foto-elektronspektroskopi (XPS) som anvendes for kjemisk å karakterisere sluttproduktet. Videre ble evnen til disse utfellinger for å tette porene i et naturlig porøst medium demonstrert gjennom en kvalitativ eksperiment hvor svampPlatene ble brukt til å etterligne en pore-nettverk med en rekke lengdeskala. En svamp bar dyppet i dyrkningsmedium inneholdende bakteriecellene stivner på grunn av tilstopping av porene som følge av den kontinuerlige prosessen med kjemisk utfelling. Dette herdet svamp bar viser overlegen styrke sammenlignet med en kontrollgruppe svamp bar som blir komprimert og presset under påvirkning av en påført ytre belastning, mens herdet baren er i stand til å støtte den samme vekten med lite deformasjon.

Introduction

Sporosarcina pasteurii er en gram-positive bakterien i stand til å overleve i svært alkaliske miljøer (pH ~ 10) 1 og er en av de bakteriearter som kan bli en utløsende agent for et fenomen som kalles Mikrobiologisk Induced Kalsitt nedbør (MICP) 2-4. MICP er en prosess hvori utfelling av kalsiumkarbonat induseres av visse mikroorganismer under egnede forhold i omgivelsene. S. pasteurii har antatt betydning i de siste årene på grunn av sin identifikasjon som et mulig middel for å fremkalle betydelige mengder MICP under visse betingelser. Denne mulighet stammer fra det faktum at S. pasteurii har den unike evnen til å skille ut store mengder av enzymet urease. Dette enzym virker som en katalysator, fremme en akselerert lysering av urea (et naturlig forekommende biokjemisk forbindelse med utbredt og rikelig tilførsel) i nærvær av vannmolekyler. Gjennom en kaskade av reaksjoner, er denne prosessen endeligely fører til generering av negativt ladede karbonationer. Disse ioner, i sin tur reagerer med positive metallioner som kalsium til slutt danne utfellinger av kalsiumkarbonat (kalsitt); derfor etiketten MICP 5-9.

Prosessen med MICP har vært kjent og studert i flere tiår 10,11. I løpet av de siste årene, har MICP blitt undersøkt for et bredt spekter av engineering og miljøprodukter inkludert bottom-up grønn konstruksjon 12, forbedring av store strukturer 13,14 og karbonbinding og lagring 15,16.

For eksempel Cunnigham 17 et. al utformet et høyt trykk moderat temperatur strømningsreaktor inneholdende en Berea sandsteinskjerne. Reaktoren ble inokulert med bakterier S. fridgidimarina og under forhold med høyt trykk kritisk karbondioksyd injeksjon, en massiv akkumulering av biomasse på innsiden av pore volvolumer ble observert, noe som førte til mer enn 95% reduksjon i permeabilitet. Jonkers og Schlangen 18 studert effekten av visse spesielle stammer av bakterier på selvhelbredende prosess i betong. Eksternt vann transportert inn i pore-nettverk som trenger inn gjennom de overflateporer er forventet å aktivere den sovende bakterier som i sin tur bidrar til strukturell styrke via MICP. Tobler 19 et al. har sammenlignet ureolytic aktiviteten av S. pasteurii med en innfødt grunnvann ureolytic mikrokosmos under betingelser som favoriserer store MCIP og fant at S. pasteurii har en konsekvent evne til å forbedre kalsitt nedbør selv når urfolkssamfunn manglet før urease aktivitet. Mortensen 20 et.al har studert effekten av ytre faktorer som jordtype, konsentrasjon av ammoniumklorid, saltholdighet, oksygenkonsentrasjon og lysis av celler på MICP. Deres demonstrasjon på at den biologiske renseprosessen er meget robust med respect til en stor variasjon i parameter plass underbygger trenings av denne prosessen for en rekke store utbedring programmer som tilbys en skikkelig berikelse prosess for å forsterke bakteriene er foretatt. Phillips 21 et. al utformet eksperimenter for å studere forandringer i permeabilitet og styrke av en sand-kolonne og en sandsteinkjerne etter å ha blitt injisert med S. pasteurii kulturer. De fant at mens permeabiliteten redusert 2 – 4 ganger så lenge bruddstyrken økes tre ganger.

S. pasteurii og dens rolle i MICP er tema for aktiv forskning og flere spørsmål knyttet til mekanismen for kjemisk felling er fortsatt ikke fullt ut forstått. I lys av dette, er det svært viktig å ha et sett av konsistente standardiserte protokoller for nøyaktig kultur en passende beriket lager av S. pasteurii å oppnå MICP. Her skisserer vi en streng protokoll som vil sikre repeterbarhet og reproduserbarhet. dette manuscript beskriver detaljerte protokoller for dyrking S. pasteurii og hensiktsmessig å anrike kulturmediet for å indusere utfelling. Prosessen blir undersøkt ved forskjellige mikroskopiske teknikker så som optiske og Scanning elektronmikroskopi (SEM) og X-Ray foto-elektronspektroskopi (XPS). Fokuset i manuskript er på prosessen med MICP. Prosedyrer som SEM og SIMS, blir veletablerte standardprotokoller, ikke er særskilt beskrevet.

Protocol

MERK: Utfør de eksperimentelle protokollene i den rekkefølgen som er beskrevet nedenfor. Bakteriekultur protokollen er omtalt i kapittel 1 (se også figur 1). Avsnitt 2 beskriver protokollen for berikende kulturmediet ved hjelp av eksterne tilsetningsstoffer. § 3 beskriver protokollene for multi-mode mikroskopi. Vekter av alle de individuelle komponentene kan måles ved anvendelse av en analysevekt. Volum av hver løsning kan måles ved hjelp av en volumetrisk sylinder. M…

Representative Results

S. pasteurii være en alkalifil 24 kan overleve relativt tøffe forhold. Når den ovennevnte kultur-protokollen blir fulgt, og S. pasteurii dyrkes inne i et kammer, bakterier fører til utfelling av kalsiumkarbonat over tid (figur 2A). Figur 2 (b) viser et fasekontrast optisk mikroskopisk bilde av bakteriecellepopulasjon i kulturmediet. Enkeltceller kan være tydelig atskilt, med stavlignende figurer karakteristiske av Bacill…

Discussion

Kritiske trinn: Dette manuskriptet beskriver i detalj de protokoller for dyrking av en levedyktig utvalg av S. pasteurii. Etter at kulturen er blitt klargjort, må det være passende beriket. Dette er et viktig skritt avgjørende for å lykkes med forsøket fordi en unnlatelse av å gi riktig kjemisk miljø fører til enten svært lange tidsskalaer av nedbør eller en komplett mangel. S. pasteurii er ganske følsom for flere eksterne etater og må dyrkes med en høy grad av omsorg og p…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We wish to acknowledge the partners in the Helmholtz-Alberta Initiative, the Helmholtz Association and the University of Alberta, for the support resulting from participation in this collaboration. Research funding is provided by the Helmholtz Association’s Initiative and Networking Fund, the participating Helmholtz Centers and by the Government of Alberta through Alberta Environment’s ecoTrust program.

Dr. Tanushree Ghosh is gratefully acknowledged for her critical inputs at a number of crucial stages.

Materials

Petridish Fisher Scientific FB0875712 Petridishes being used as Agar plate
Pyrex Flasks Fisher Scientific S63268 Corning Erlenmeyer
Tris-Base Promega H5133 being used to make Tris-Buffer
Hydrochloric Acid Sigma-Aldrich H9892 1.0 N, Bioreagent, suitable for cell culture
Agar Powder Sigma-Aldrich A1296 microbiology tested, plant cell culture tested, cell culture tested, powder
Ammonium Sulphate Sigma-Aldrich A4418 for Molecular Biology
Yeast extract powder Sigma-Aldrich 51475
Measuring Cylinder Cole-Parmer CP08559GC Cole-Parmer Class A Graduated Cylinder w/Cal Cert,TC;1000ml,1/Pk
Analytical Balance OHAUS AX124E being used to measure weight of reagents
Autoclave Brinkmann 58619000
Autoclave Tape VWR 52428864
Aluminum Foil Sigma-Aldrich Z185140 being used to seal the flask before placing it in Autoclave
Bacterial Stock Cedarlane 11859 -80°C stock of S. pasteurii, ATCC No. is mentioned against Cat. No.
Mline Single-Channel Mechanical Pipettors, Variable Volume Biohit 725010 Marketed by VWR under catalog number 14005976
Micropipette Tip Fisher Scientific 212772B Used for scratching Agar plates
Incubator Binder 80079098 Microbiology Incubator,BF Series
Shaking Incubator VWR 14004300 VWR Signature Benchtop Shaking Incubators
Phosphate Buffer Saline (PBS)  Sigma-Aldrich P7059
BD Falcon Express Pipet-Aid Pipetting Device BD Biosciences 357590 Marketed by VWR under catalog number 53106220
Parafilm Sigma-Aldrich P7793 Being used to seal Agar plates
Urea Sigma-Aldrich U1250 Enrichment for nutrient medium
Sodium Bicarbonate Sigma-Aldrich S8875 Enrichment for nutrient medium
Calcium chloride Sigma-Aldrich C1016 Enrichment for nutrient medium

References

  1. Gibson, T. An investigation of the Bacillus pasteurii group. Journal of Bacteriology. 28, 491-502 (1934).
  2. Greenfield, L. J. Metabolism and concentration of calcium and magnesium and precipitation of calcium carbonate by a marine bacterium. Annals of the New York Academy of Sciences. 109, 23-45 (1963).
  3. Phillips, A. J. Engineered applications of ureolytic biomineralization: a review. Biofouling. 29, 715-733 (2013).
  4. Dhami, N. K., et al. Biomineralization of calcium carbonates and their engineered applications: a review. Frontiers in microbiology. 4, 314 (2013).
  5. Cuthbert, M. O., et al. Controls on the rate of ureolysis and the morphology of carbonate precipitated by S. Pasteurii biofilms and limits due to bacterial encapsulation. Ecological Engineering. 41, 32-40 (2012).
  6. Okwadha, G. D., et al. Optimum conditions for microbial carbonate precipitation. Chemosphere. 81, 1143-1148 (2010).
  7. Stocks-Fischer, S., et al. Microbiological precipitation of CaCO3. Soil Biology and Biochemistry. 31, 1563-1571 (1999).
  8. Lauchnor, E. G., et al. Bacterially induced calcium carbonate precipitation and strontium coprecipitation in a porous media flow system. Environmental science & technology. 47, 1557-1564 (2013).
  9. Al Qabany, A., et al. Factors Affecting Efficiency of Microbially Induced Calcite Precipitation. Journal of Geotechnical and Geoenvironmental Engineering. 138, 992-1001 (2012).
  10. Morita, R. Y. Calcite precipitation by marine bacteria. Geomicrobiology Journal. 2, 63-82 (2009).
  11. Chafetz, H. S. Marine peloids: A product of bacterially induced carbonate precipitation. Journal of Sedimentary Petrology. 56, 812-817 (1986).
  12. Whiffin, V. S. . Microbial CaCO3 precipitation for the production of biocement. , (2004).
  13. Paassen, L. A., et al. Scale up of BioGrout: a biological ground reinforcement method. Proceedings of the 17th International Conference on Soil Mechanics and Geotechnical Engineering. , 2328-2333 (2009).
  14. Cunningham, A. B., et al. Microbially enhanced geologic containment of sequestered supercritical CO2. Energy Procedia. 1, 3245-3252 (2009).
  15. Mitchell, A. C., et al. Biofilm enhanced geologic sequestration of supercritical CO2. International Journal of Greenhouse Gas Control. 3, 90-99 (2009).
  16. Cunningham, A. B., et al. Reducing the risk of well bore leakage of CO2 using engineered biomineralization barriers. Energy Procedia. 4, 5178-5185 (2011).
  17. Jonkers, H. M., et al. Application of bacteria as self-healing agent for the development of sustainable concrete. Ecological Engineering. 36, 230-235 (2010).
  18. Tobler, D. J., et al. Transport of Sporosarcina pasteurii in sandstone and its significance for subsurface engineering technologies. Applied Geochemistry. 42, 38-44 (2014).
  19. Mortensen, B. M., et al. Effects of environmental factors on microbial induced calcium carbonate precipitation. Journal of applied microbiology. 111, 338-349 (2011).
  20. Phillips, A. J., et al. Potential CO2 leakage reduction through biofilm-induced calcium carbonate precipitation. Environmental science & technology. 47, 142-149 (2013).
  21. vander Heide, P. . X-ray Photoelectron Spectroscopy: An introduction to Principles and Practices. , (2011).
  22. Wiley, W. R., et al. Requirement of an alkaline pH and ammonia for substrate oxidation by Bacillus pasteurii. Journal of Bacteriology. 84, (1962).
  23. Tagliaferri, F., et al. Observing strain localisation processes in bio-cemented sand using x-ray imaging. Granular Matter. 13, 247-250 (2011).
  24. Kumar, A., et al. Microscale confinement features can affect biofilm formation. Microfluidics and Nanofluidics. 14, 895-902 (2012).
  25. Valiei, A., et al. A web of streamers: biofilm formation in a porous microfluidic device. Lab on a chip. 12, 5133-5137 (2012).
  26. . LIVE/DEAD Bacterial Viability kit, Two-color bacterial viability assay Available from: https://tools.lifetechnologies.com/content/sfs/manuals/mp07007.pdf (2004)

Play Video

Cite This Article
Bhaduri, S., Debnath, N., Mitra, S., Liu, Y., Kumar, A. Microbiologically Induced Calcite Precipitation Mediated by Sporosarcina pasteurii. J. Vis. Exp. (110), e53253, doi:10.3791/53253 (2016).

View Video