Summary

Photothrombotic 기술을 이용하여 외접 캡슐 경색 모델링

Published: June 02, 2016
doi:

Summary

이 원고는 캡슐 경색의 모델링 기법에 대해 설명합니다. 여기에서 우리는 미리 수술 대상 매핑​​ 후 빛의 낮은 강도와​​ 변형 photothrombotic 기술을 이용했다. 이 기술을 사용하여, 우리는 지속적인 운동 장애 외접 캡슐 경색 모델을 만들었습니다.

Abstract

Recent increase in the prevalence rate of white matter stroke demands specific research in the field. However, the lack of a pertinent animal model for white matter stroke has hampered research investigations. Here, we describe a novel method for creating a circumscribed capsular infarct that minimizes damage to neighboring gray matter structures. We used pre-surgery neural tracing with adeno-associated virus-green fluorescent protein (AAV-GFP) to identify somatotopic organization of the forelimb area within the internal capsule. The adjustment of light intensity based on different optical properties of gray and white matter contributes to selective destruction of white matter with relative preservation of gray matter. Accurate positioning of optical-neural interface enables destruction of entire forelimb area in the internal capsule, which leads to a marked and persistent motor deficit. Thus, this technique produces highly replicable capsular infarct lesions with a persistent motor deficit. The model will be helpful not only to study white matter stroke (WMS) at the behavioral, circuit, and cellular levels, but also to assess its usefulness for development of new therapeutic and rehabilitative interventions.

Introduction

최근까지 "회백질 스트로크 (GMS) 모델은"배타적 스트로크 기전을 이해하고, 새로운 치료법의 개발을 유도하기 위해 사용되어왔다. 모든 스트로크 1, 2의 25 % – 그러나, (15)를 구성하는 노인 개인에 피질 하 백질에 영향을 미치는 뇌졸중의 증가 보급되고있다. 많은 연구는 백질 스트로크 (WMS) 모델을 사용하고 몇 가지 연구가있는 반면, GMS 모델을 사용에 관한 스트로크를 실시하고있다. 설치류에 흰색 물질은 사람이나 영장류에 흰색 물질보다 훨씬 작다. 따라서, 선택적 백질 3 목표 영역을 액세스하고 파괴하는 것이 더 어렵다. 게다가, 더 효율적인 툴을 선택적으로 타겟팅 백질의 계획된 범위를 파괴하는 최신 개발되지 않았다. 따라서, 백질 스트로크의 연구에 적합한 모델의 부족이 있었다.

동물 일roke 모델은 종종 새로운 재활 및 치료 방법의 개발을위한 모터 회복의 진행을 모니터하기 위해 사용된다. 인간의 행정 4,5에서 보여준 해부학 적 변화와 조화 된 장기적인 신경 학적 결손을 나타내는 동물 모델을 활용하는 것이 이상적이다. 이와 관련하여, 모터 적자 및 뇌 다음 경색의 lesioning의 폭 넓은 참여의 신속한 복구 뇌졸중 연구의 추구 현실적인하지 않을 수 있습니다. 이전 캡슐 경색 모델 내부 캡슐 6-9으로 엔도 텔린 -1 (ET-1)의 내부 경동맥 또는 전방 맥락막 혈관 및 확산에 의해 폐색되었다. 그럼에도 불구하고, 동맥 폐쇄 동맥 절개주의를 필요로하지만, 영구 행동 결손없이 내부 캡슐 포함 경색 병변의 넓은 영역을 생성한다. 또한 ET-1을 완전히 캡슐 내부의 후방 다리를 파괴 확산하고, 따라서 적은 표시되거나 BEH을 지속하지 않았다avioral 적자.

photothrombotic 경색 모델 널리 피질 경색 병변 및 피질 하 구조 (10)의 다양한 형태를 생성하는 데 사용되어왔다. 이 기술은 경색 병변 (10)의 혈소판 작은 혈관에서 응집 및 생성에 이르게 초점 조명, 다음 정맥 내 투여를 포함한다. 거의 WMS 병변 5,11 생성에 사용되지 않은 반면 Photothrombotic 기술은 광범위 GMS 병변을 만드는 데 사용되고있다. 이 기술의 경우, 로즈 벵갈 염료 및 광 조사의 조합 기능 결핍을 유발 해당 대상 구조의 파괴에 유용한 것으로 입증되었다. 이 경색 병변의 크기를 결정하므로 photothrombotic 기술의 핵심 요소는 광 조사한다. 회색질과 백색질의 다른 효과에 광 조사 결과, 빛의 산란이 흰색 mA 이상 4 배 높기 때문에회색 물질 (12)와 비교 라 자세 히; 빛의 세기가 충분히 낮은 조도 (<1140 mW의 / mm 2)이있는 경우 따라서, 하나는 photothrombotic 병변이 백질에 어느 정도 영향을 미칠하는 확장을 제한 할 수 있습니다 (예. 내부 캡슐). 예를 들어, 높은 에너지의 빛이 모두 회색과 흰색 문제에 경색을 유도 할 수있다, 그러나 낮은 에너지의 빛은 흰색 만에 photothrombosis을 유도 할 수있다. 또한, 광 에너지의 침투가 매우 제한적이었다. 빛 에너지의 약 99 %는 빛 (13)의 소스에서 1mm 이상 끊어졌습니다. 따라서, 정확하게 대상 것으로 예상된다, 낮은 에너지의 빛은 이웃 회색 물질의 최소 침해와 흰색 문제에 photothrombosis을 유도한다.

여기서는 설치류 내부 캡슐의 앞다리 영역 경색 병변을 생성하는 신규 한 방법을 설명한다. 우리는 내부 CA의 앞다리 영역의 동정 방법을 서술psule, 조정 및 빛의 전달 및 경색 병변의 발생을 포함하여 광 조사의 기술. 또한 캡슐 모델링의 완전성을 평가하는 행동 시험을 설명한다.

Protocol

모든 절차는 과학 기술 (GIST) 광주 연구소의 제도적 지침에 따라 수행되었다, 모든 절차는 GIST에서 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다. 1. 사전의 lesioning 단계 내부 캡슐의 앞다리 지역의 식별 AAV-GFP를 사용하여 기관 및 국가 가이드 라인을 준수 – (13주 ~ 400g, 11) 하우스 스프 라그 돌리 쥐를 처리합니다. 적절한 살균 (스팀 또는 플라즈마 ?…

Representative Results

여기에 제시된 방법은 영구 모터 적자와 외접 캡슐 경색을 만들 것입니다. 따라서, 정확하게 예비 수술 단계에서 내부 캡슐 내에 타겟을 결정하는데 중요하다. 내부 캡슐의 피라미드 섬유의 somatotopic 매핑은 현재까지 해결되지 않았습니다. 제대로 내부 캡슐 내에서 대상을 식별하기 위해, 앞다리 영역을 묘사해야합니다. 운동 피질의 앞다리 영역으로 AAV-GFP의 주입 내부 캡…

Discussion

여기에 제시된 캡슐 경색 모델은 앞다리의 기능에 현저한 및 영구 모터의 손상과 목표 병변을 보여줍니다. 피질 캡슐 스트로크의 이전 모델은 모터의 손상 및 빠른 복구 프로세스 6,8,9의 부족 정도를 증명하고있다. 이런 의미에서,이 모델은 장기 작용 성 손상을 나타내는 임상 캡슐 경색 케이스를 닮았다.

외접 캡슐 경색 모델의 개발에 가장 중요한 단계는 다음과 같?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 의료 시스템 공학 연구소 (iMSE) GIST에서 GIST-Caltech의 공동 기금 (K04592)에서 부여에 의해 과학, ICT와 미래 기획의 교육부에 의해 투자 한국의 NRF을 통해 기초 과학 연구 프로그램에 의해 지원되었다 (NRF-2013R1A2A2A01067890).

Materials

DC Temperature controller WORLD PRECISION INSTRUMENTS, INC. ATC1000
Digital Stereotaxic Instruments STOELTING CO. 51900
Electrical Stimulator CyberMedic Corp. EMGFES 2000
Epoxy  Precision Fiber Products, INC. PFP-353ND1 Mix Ratio:
10(A):1(B-hardener) by weight 
Curing Schedule:
1 minute @150°C
2~5 minutes @120°C
5~10 minutes @100°C
15~30 minutes @80°C
Fiber Optic Scribe  THORLABS, INC S90R
Fiber patch cable KOREA OPTRON Corp. Outer diameter: 3mm
Ø200 µm
0.39 NA
FC/PC-FC/PC
1 m
Laser Power Supply CHANGCHUN NEW INDUSTRIES OPTOELECTRONICS TECH. CO., LTD. MGL-FN-532nm-200mW-14010196
Crimp ring  DAWOOTECH CO.,LTD. Length: 19mm
Inner diameter: 3mm
Outer diameter: 3.8mm
Material: SUS
Micro4-micro syringe pump controller WORLD PRECISION INSTRUMENTS, INC 95100
Optical Power Meter THOLABS, INC PM100D
Paraformaldehyde SIGMA-ALDRICH CO. LLC. P6148 
Diamond lapping (polishing) sheet THORLABS, INC LF3D Grit : 3 µm
Diamond lapping (polishing) sheet THORLABS, INC LF6D Grit : 6 µm
Rose Bengal SIGMA-ALDRICH CO. LLC. 330000
Needle for spinal anesthesia with pencil point tip (Spinal needle)  B.BRAUN MELSUNGEN AG  4502027 Size: 27G
Length: 88mm
Needle: 0.40mm
Waterproof sandpaper  DEERFOS CO.,LTD CC261 Grit : 1000 µm
Nanofil 10uL syringe  WORLD PRECISION INSTRUMENTS, INC NANOFIL
Nanofil 33G BVLD needle WORLD PRECISION INSTRUMENTS, INC NF33BV-2
AAV-GFP virus UNC Vector Core AAV2-CamKIIa-eYFP 2×10^12 virus molecules/ml
Anti-Green Fluorescent Protein, Rabbit IgG fraction Life Technologies, INC A11122 primary antibody (1:200)
Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) Life Technologies, INC A11034 secondary antibody (1:500)
Ceftezole GUJU Pharma CO.,LTD. A27802741 0.1%, 1ml
Lidocain hydrochloride injection JEIL PHARMACEUTICAL CO.,LTD. A04900271 2%, 1ml
Hand Piece Drill Seshin
Digital optical power and energy meter THORLABS, INC PM100D
Ketopropen UNIBIOTech

References

  1. Roger, V. L., et al. Heart disease and stroke statistics–2012 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 125, 2-220 (2012).
  2. Debette, S., Markus, H. S. The clinical importance of white matter hyperintensities on brain magnetic resonance imaging: systematic review and meta-analysis. Bmj. 341, 3666 (2010).
  3. Zhang, K., Sejnowski, T. A universal scaling law between gray matter and white matter of cerebral cortex. PNAS. 97 (10), 5621-5626 (2000).
  4. Kim, H. S., et al. A rat model of photothrombotic capsular infarct with a marked motor deficit: a behavioral, histologic, and microPET study. J Cereb Blood Flow Metab. 34 (4), 683-689 (2014).
  5. Kleim, J. A., Boychuk, J. A., Adkins, D. L. Rat models of upper extremity impairment in stroke. ILAR J. 48 (4), 374-384 (2007).
  6. Frost, S. B., Barbay, S., Mumert, M. L., Stowe, A. M., Nudo, R. J. An animal model of capsular infarct: endothelin-1 injections in the rat. Behav Brain Res. 169 (2), 206-211 (2006).
  7. He, Z., et al. Definition of the anterior choroidal artery territory in rats using intraluminal occluding technique. J Neurol Sci. 182 (1), 16-28 (2000).
  8. Tanaka, Y., et al. Experimental model of lacunar infarction in the gyrencephalic brain of the miniature pig: neurological assessment and histological, immunohistochemical, and physiological evaluation of dynamic corticospinal tract deformation. Stroke. 39 (1), 205-212 (2008).
  9. Shibata, M., Ohtani, R., Ihara, M., Tomimoto, H. White matter lesions and glial activation in a novel mouse model of chronic cerebral hypoperfusion. Stroke. 35 (11), 2598-2603 (2004).
  10. Watson, B. D., Dietrich, W. D., Busto, R., Wachtel, M. S., Ginsberg, M. D. Induction of reproducible brain infarction by photochemically initiated thrombosis. Ann Neurol. 17 (5), 497-504 (1985).
  11. Kuroiwa, T., et al. Development of a rat model of photothrombotic ischemia and infarction within the caudoputamen. Stroke. 40 (1), 248-253 (2009).
  12. Bashkatov, A. N., Genina, E. A., Tuchin, V. V. . Handbook of biomedical optics. 83, (2011).
  13. Yizhar, O., Fenno, L. E., Davidson, T. J., Mogri, M., Deisseroth, K. Optogenetics in neural systems. Neuron. 71 (1), 9-34 (2011).
  14. Whishaw, I. Q., Whishaw, P., Gorny, B. The structure of skilled forelimb reaching in the rat: a movement rating scale. J Vis Exp. (18), e816 (2008).
  15. Jang, S. H. A review of corticospinal tract location at corona radiata and posterior limb of the internal capsule in human brain. NeuroRehabilitation. 24 (3), 279-283 (2009).
  16. Kim, D., et al. Longitudinal changes in resting-state brain activity in a capsular infarct model. J Cereb Blood Flow Metab. 35 (1), 11-119 (2014).
  17. Blasi, F., Whalen, M. J., Ayata, C. Lasting pure-motor deficits after focal posterior internal capsule white-matter infarcts in rats. J Cereb Blood Flow Metab. 35 (6), 977-984 (2015).
  18. Metz, G. A., Antonow-Schlorke, I., Witte, O. W. Motor improvements after focal cortical ischemia in adult rats are mediated by compensatory mechanisms. Behavioural brain research. 162 (1), 71-82 (2005).

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Cite This Article
Song, H., Park, J., Kim, H., Lee, M., Kim, Y., Kim, H. Circumscribed Capsular Infarct Modeling Using a Photothrombotic Technique. J. Vis. Exp. (112), e53281, doi:10.3791/53281 (2016).

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