Summary

Generering Primær fibroblastkulturer fra Muse øre og hale Vev

Published: January 10, 2016
doi:

Summary

Vi beskriver en enkel og rask eksperimentelle fremgangsmåte for å generere primære fibroblaster fra ører og hale i mus. Fremgangsmåten krever ikke spesiell opplæring dyr, og kan brukes for generering av fibroblastkulturer fra ørene som er lagret ved romtemperatur i opp til 10 dager.

Abstract

Primære celler som er avledet direkte fra vev, og er antatt å være mer representativ for den fysiologiske tilstanden til cellene in vivo enn etablerte cellelinjer. Imidlertid primære cellekulturer som regel har en begrenset levetid og må ofte reetablert. Fibroblaster er en lett tilgjengelig kilde til primære celler. Her har vi diskuterer en enkel og rask Fremgangsmåten for å etablere primære fibroblastkulturer fra ører og hale i mus. Protokollen kan brukes til å etablere primære fibroblastkulturer fra ørene som er lagret ved romtemperatur i opp til 10 dager. Når protokollen blir fulgt nøye, forurensninger er lite sannsynlig å oppstå til tross for bruk av ikke-sterilt vev lagres i lengre tid i noen tilfeller. Fibroblaster sprer seg raskt i kultur og kan utvides til et betydelig antall før under replicative senescence.

Introduction

Primære celler som er avledet fra levende vev og dyrket under in vitro betingelser. Det er generelt antatt at primærceller ligner nærmere den fysiologiske tilstand og genetisk bakgrunn av vev hvorfra de stammer enn immortaliserte cellelinjer eller tumor 1. Av den grunn primære celler representerer en nyttig modell for å studere biologiske spørsmål 2,3. Men i motsetning til etablerte cellelinjer som vokser i det uendelige, primære celler til slutt gjennomgår alderdom i kultur og må ofte reetablert.

Vanlig anvendte primære celler omfatter fibroblaster, epitelceller, endotelceller, T-celler, B-celler, benmarg-avledede makrofager (BMDM) og benmarg-avledede dendrittceller (BMDC). Fibroblaster blir ofte brukt som primærcellekultur modell. De tilbyr viktige fordeler fremfor andre primære celler. Cellekulturer kan lett etableres, opprettholdes lett og krever ingen purificasjon av celler før kultur. De har rask innledende spredning og ingen krav til spesialiserte middels eller aktiverings protokoller. Fibroblaster kan effektivt transfektert bruker biologiske, kjemiske og fysiske protokoller 4,5. Det er en mulighet for å lagre ører for opp til 10 dager ved RT forut for etablering av cellekulturer. Fibroblast kulturer er bidrar til visualisering av cytoplasmatiske prosesser og egnet for omprogrammering til induserte pluripotente stamceller (iPS-celler) 6.

Fibroblaster er viktige celler i bindevevet som kollagen utskiller proteiner og ekstracellulær matriks 7. De gir den strukturelle rammer i mange vev 8 og spiller en viktig rolle i sårheling og vev reparasjon 9,10.

Her beskriver vi en enkel og rask (4-t <) protokoll for å etablere fibroblastkulturer fra ører og hale i mus 11. Protokollen krever minimal muserfaring for å høste de vev (i motsetning til andre protokoller 12,13) ​​og kan brukes til å etablere kulturer fra ørene som er lagret i mediet ved romtemperatur i opp til 10 dager.

Protocol

Mus ble plassert i patogenfrie vilkår i samsvar med de institusjonelle retningslinjer inntil euthanization (The Institutional Animal Care og bruk Committee (IACUC) retningslinjer ved National University of Singapore og National Advisory Committee for Forsøksdyrforskning (NACLAR) retningslinjer). 1. Mus Bestill ett muse av den aktuelle genetiske bakgrunn. Denne protokollen er basert på vev avledet fra en C57BL / 6 mus. 2. Utarbeidelse av komplett medium …

Representative Results

Utvinning av fibroblaster fra vev resulterer i en betydelig mengde vevsrester (figur 1). I motsetning til vev rusk, fibroblaster holde vev kultur plastflatene mellom dag 1 og 3 av kultur. Mediet av fibroblastkulturer trygt kan endres på dag tre av kulturen, som skal betydelig redusere nivåene av rusk som er tilstede i kulturen (figur 2). Fibroblaster viser en langstrakt morfologi og en klart synlig cytoplasma (figur 1 og 2). Mitotiske celler bør vær…

Discussion

Her har vi tilveiebringe en enkel, billig og hurtig Fremgangsmåten for å etablere primære fibroblastkulturer fra ører og hale i mus. Ekstraksjonen bør resultere i adherente og raskt delende fibroblaster i løpet av 3 dager etter isolering av vevet. En viktig begrensning av primære celler er senescence, en permanent vekst arrest 15. Ved hjelp av protokollen, kan fibroblast kulturer skal passeres i 5 til 6 ganger før fibroblaster bli senescent, indikert av utflating av cellene, øker i størrelse (2-3 ga…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the NRF grant HUJ-CREATE – Cellular and Molecular Mechanisms of Inflammation.

Materials

RPMI-1640 HyClone SH30027.01
Fetal Calf Serum HyClone SV30160.03
2-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148
Asparagine Sigma-Aldrich A4159
Glutamine Sigma-Aldrich G8540
Penicillin/Streptomycin HyClone SV30010
Ethanol Merck Millipore 107017 Absolute for analysis
Collagenase D Roche Diagnostics 11088866001 From Clostridium histolyticum, lyophilized, non-sterile
Pronase protease Merck Millipore 53702 From Streptomyces griseus 
Tris buffer (pH 8) 1st BASE 1415 Ultra pure grade
0.5M EDTA (pH 8) 1st BASE BUF-1053 Biotechnology grade
10X Phosphate Buffered Saline (PBS) 1st BASE BUF-2040-10X4L Ultra pure grade
Trypsin-EDTA solution 10X Sigma-Aldrich 59418C-100ML 0.5% trypsin, 0.2% EDTA, trypsin gamma irradiated by SER-TAIN process, without phenol red, in saline
Amphotericin B Sigma-Aldrich A2492-20ml 250 μg/ml in deionized water, sterile-filtered
Scissors Aesculap
Forcep Aesculap AE-BD312R
0.2 μM syringe filter Sartorius Stedim 16534
70 μM cell strainer SPL 93070
Syringe plunger Terumo SS+10L
Cryovial tube NUNC 368362
1.7 ml microcentrifuge tube Axygen MCT-175-C
10 cm cell culture dish Greiner 664160 Cell culture treated dish 
15 ml conical bottom tube Greiner 188271
50 ml conical bottom tube Greiner 227261
Water bath GFL 1002
Centrifuge Eppendorf 5810R
Incubation shaker Sartorius Stedim Certomat-BS1
Zeiss Axiovert 25 light microscope Carl Zeiss AG

References

  1. Fitzpatrick, L. E., McDevitt, T. C. Cell-derived matrices for tissue engineering and regenerative medicine applications. Biomater Sci. 3 (1), 12-24 (2015).
  2. Elenbaas, B., et al. Human breast cancer cells generated by oncogenic transformation of primary epithelial cells. Genes Dev. 15 (1), 50-65 (2001).
  3. Stansley, B., Post, J., Hensley, K. A comparative review of cell culture systems for the study of microglial biology in Alzheimer’s disease. J Neuroinflammation. 9 (1), 115 (2012).
  4. Lim, J., Dobson, J. Improved transfection of HUVEC and MEF cells using DNA complexes with magnetic nanoparticles in an oscillating field. J Genet. 91 (2), 223-227 (2012).
  5. Li, M., et al. High-efficiency transduction of fibroblasts and mesenchymal stem cells by tyrosine-mutant AAV2 vectors for their potential use in cellular therapy. Hum Gene Ther. 21 (11), 1527-1543 (2010).
  6. Patel, M., Yang, S. Advances in reprogramming somatic cells to induced pluripotent stem cells. Stem Cell Rev. 6 (3), 367-380 (2010).
  7. Newman, A. C., Nakatsu, M. N., Chou, W., Gershon, P. D., Hughes, C. C. The requirement for fibroblasts in angiogenesis: fibroblast-derived matrix proteins are essential for endothelial cell luman formation. Mol Biol Cell. 22 (20), 3791-3800 (2011).
  8. Ohlund, D., Elyada, E., Tuveson, D. Fibroblast heterogeneity in the cancer wound. J Exp Med. 211 (8), 1503-1523 (2014).
  9. Guo, S., Dipietro, L. A. Factors affecting wound healing. J Dent Res. 89 (3), 219-229 (2010).
  10. Werner, S., Krieg, T., Smola, H. Keratinocyte-fibroblast interactions in wound healing. J Invest Dermatol. 127 (5), 998-1008 (2007).
  11. Shen, Y. J., et al. Genome-derived cytosolic DNA mediates type I interferon-dependent rejection of B cell lymphoma cells. Cell Rep. 11 (3), 460-473 (2015).
  12. Seluanov, A., Vaidya, A., Gorbunova, A. Establishing primary adult fibroblast cultures from rodents. J Vis Exp. (44), (2010).
  13. Baglole, C. J., et al. Isolation and phenotypic characterization of lung fibroblasts. Methods Mol Med. 117, 115-127 (2005).
  14. Alt, E., et al. Fibroblasts share mesenchymal phenotypes with stem cells, but lack their differentiation and colony-forming potential. Biol Cell. 103 (4), 197-208 (2011).
  15. Kuilman, T., Michaloglou, C., Mooi, W. J., Peeper, D. S. The essence of senescence. Genes Dev. 24 (22), 2463-2479 (2010).
  16. Lander, M. R., Moll, B., Rowe, W. P. A procedure for culture of cells from mouse tail biopsies: brief communication. J Natl Cancer Inst. 60 (2), 477-478 (1978).
  17. Moore, C. B., Allen, I. C. Primary ear fibroblast derivation from mice. Methods Mol Biol. (1031), 65-70 (2013).
  18. Liu, J., et al. Generation of stable pluripotent stem cells from NOD mouse tail-tip fibroblasts. Diabetes. 60 (5), 1393-1398 (2011).

Play Video

Cite This Article
Khan, M., Gasser, S. Generating Primary Fibroblast Cultures from Mouse Ear and Tail Tissues. J. Vis. Exp. (107), e53565, doi:10.3791/53565 (2016).

View Video