A method for imaging changes in membrane potential using genetically encoded voltage indicators is described.
Genetically encoded voltage indicators (GEVIs) have improved to the point where they are beginning to be useful for in vivo recordings. While the ultimate goal is to image neuronal activity in vivo, one must be able to image activity of a single cell to ensure successful in vivo preparations. This procedure will describe how to image membrane potential in a single cell to provide a foundation to eventually image in vivo. Here we describe methods for imaging GEVIs consisting of a voltage-sensing domain fused to either a single fluorescent protein (FP) or two fluorescent proteins capable of Förster resonance energy transfer (FRET) in vitro. Using an image splitter enables the projection of images created by two different wavelengths onto the same charge-coupled device (CCD) camera simultaneously. The image splitter positions a second filter cube in the light path. This second filter cube consists of a dichroic and two emission filters to separate the donor and acceptor fluorescent wavelengths depending on the FPs of the GEVI. This setup enables the simultaneous recording of both the acceptor and donor fluorescent partners while the membrane potential is manipulated via whole cell patch clamp configuration. When using a GEVI consisting of a single FP, the second filter cube can be removed allowing the mirrors in the image splitter to project a single image onto the CCD camera.
इस पत्र के प्रमुख ध्यान केंद्रित आनुवंशिक रूप से इनकोडिंग फ्लोरोसेंट प्रोटीन का उपयोग कर इन विट्रो में झिल्ली क्षमता में परिवर्तन के ऑप्टिकल इमेजिंग का प्रदर्शन है। झिल्ली क्षमता में परिवर्तन इमेजिंग neuronal सर्किट की गतिविधि का अध्ययन करने के रोमांचक संभावना प्रदान करता है। एक प्रतिदीप्ति तीव्रता परिवर्तन में झिल्ली क्षमता परिणाम में परिवर्तन, कैमरे के प्रत्येक पिक्सेल एक किराए की इलेक्ट्रोड neuronal गतिविधि के nonintrusive माप सक्षम हो जाता है। चालीस से अधिक वर्षों के लिए, कार्बनिक वोल्टेज के प्रति संवेदनशील रंगों झिल्ली क्षमता 1-4 में परिवर्तन के अवलोकन के लिए उपयोगी हो गया है। हालांकि, इन रंगों सेलुलर विशिष्टता की कमी है। इसके अलावा, कुछ प्रकार की कोशिकाओं के दाग के लिए मुश्किल हैं। आनुवंशिक रूप से इनकोडिंग वोल्टेज संकेतक (GEVIs) कोशिकाओं विशेष रूप से अध्ययन किया जा फ्लोरोसेंट वोल्टेज के प्रति संवेदनशील जांच अभिव्यक्त होने से इन सीमाओं को पार।
वहाँ GEVIs के तीन वर्गों रहे हैं। GEVI के प्रथम श्रेणी VO का उपयोग करता हैया तो एक फ्लोरोसेंट प्रोटीन (एफपी) 5-9 या एक Förster प्रतिध्वनि ऊर्जा हस्तांतरण (झल्लाहट) की जोड़ी को 10-12 के साथ ltage संवेदन वोल्टेज संवेदन फॉस्फेट से डोमेन। सेंसर के द्वितीय श्रेणी के एक फ्लोरोसेंट सूचक सीधे 13-15 के रूप में या electrochromic झल्लाहट 16,17 के माध्यम से माइक्रोबियल rhodopsin उपयोग करता है। तृतीय श्रेणी के दो घटकों, आनुवंशिक घटक एक झिल्ली लंगर एफपी और एक दूसरे घटक एक झिल्ली बाध्य शमन डाई 18-20 जा रहा जा रहा है इस्तेमाल करता है। दूसरी और तीसरी कक्षाओं विट्रो और टुकड़ा प्रयोगों में 19,20 के लिए उपयोगी होते हैं, केवल सेंसर के प्रथम श्रेणी वर्तमान में विवो 6 विश्लेषण के लिए उपयोगी होते हैं।
इस रिपोर्ट में हम इन विट्रो में (चित्रा 1) GEVIs के प्रथम श्रेणी का उपयोग कर झिल्ली क्षमता की इमेजिंग प्रदर्शन करेंगे। वोल्टेज सेंसर की यह प्रथम श्रेणी के लिए सबसे आसान vivo इमेजिंग के लिए संक्रमण है। GEVIs यू के बाद सेएक वोल्टेज संवेदन डोमेन एक एफपी के लिए जुड़े हुए हैं के बारे में tilizing सेंसर की rhodopsin वर्ग की तुलना में उज्जवल 50 गुना, वे बजाय चाप दीपक रोशनी का उपयोग कर एक अत्यंत शक्तिशाली लेजर की आवश्यकता होती है imaged किया जा सकता है। चमक में असमानता का एक और परिणाम है कि GEVIs के प्रथम श्रेणी आसानी से मस्तिष्क की ऑटो प्रतिदीप्ति अधिक हो सकती है। rhodopsin आधारित जांच नहीं कर सकते। सेंसर के तृतीय श्रेणी के बस के रूप में प्रथम श्रेणी के रूप में उज्ज्वल है, लेकिन एक रासायनिक पीने की वस्तु है जो विवो में प्रशासन के लिए मुश्किल है के अलावा आवश्यकता है।
हम होगा, इसलिए, एक एकल एफपी (Bongwoori) 8 और एक झल्लाहट जोड़ी से मिलकर एक जांच (नबी 2) 12 के साथ एक जांच के अधिग्रहण प्रदर्शित करता है। 11 एक हरी फ्लोरोसेंट दाता, तिपतिया घास से मिलकर, और एक लाल फ्लोरोसेंट स्वीकर्ता, mRuby2, नबी २.२४२ और नबी २.२४४ नाम – झल्लाहट इस रिपोर्ट में constructs VSFP-सीआर (तिपतिया घास-mRuby2 वोल्टेज के प्रति संवेदनशील फ्लोरोसेंट प्रोटीन) की तितली संस्करण हैं <s> 12 अप। रिकॉर्डिंग के इन प्रकार के परिचय के शोधकर्ताओं जानकारी GEVIs के प्रकार प्रदान कर सकते हैं की एक बेहतर समझ देना चाहिए।
चित्रा 1. वोल्टेज संकेतक आनुवंशिक रूप से इनकोडिंग (GEVIs) यह रिपोर्ट (ए) में imaged एक मोनो आधारित GEVI एक पार झिल्ली वोल्टेज संवेदन डोमेन और एक फ्लोरोसेंट प्रोटीन होने एफपी की दो प्रकार। (बी) के एक झल्लाहट आधारित एक पार झिल्ली वोल्टेज संवेदन डोमेन, एक झल्लाहट दाता और स्वीकर्ता के शामिल GEVI। यह आंकड़ा का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।
तंत्रिका तंत्र कई अलग अलग तरीकों में वोल्टेज, अवरोध एक मामूली hyperpolarization, synaptic इनपुट एक अपेक्षाकृत बड़े वोल्टेज परिवर्तन में एक मामूली विध्रुवण और एक संभावित कार्रवाई के परिणाम का कारण बनता है का कारण बनता …
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by the World Class Institute (WCI) program of the National Research Foundation of Korea funded by Ministry of Education, Science, and Technology of Korea Grant WCI 2009-003 and Korea Institute of Science and Technology Institutional Program Project 2E24210. Sungmoo Lee was supported by Global Ph.D. Fellowship program (NRF-2013H1A2A1033344) of the National Research Foundation (NRF) under the Ministry of Education (MOE, Korea).
Inverted Microscope | Olympus | IX71 | |
60X objective lens (numerical aperture = 1.35) | Olympus | UPLSAPO 60XO | |
Excitation filter | Semrock | FF02-472/30 | For voltage imaging of super ecliptic pHluorin in Bongwoori |
Dichroic mirror | Semrock | FF495-Di03-25×36 | |
Emission filter | Semrock | FF01-497/LP | |
75W Xenon arc lamp | CAIRN | OptoSource Illuminator | LEDs and lasers are also effective light sources |
Slow speed CCD camera | Hitachi | KP-D20BU | |
Dual port camera adaptor | Olympus | U-DPCAD | |
High speed CCD camera | RedShirtImaging, LLC | NeuroCCD-SM | |
Image splitter | CAIRN | Optosplit 2 | |
Excitation filter | Semrock | FF01-475/23-25 | For voltage imaging of FRET pair based GEVI consisting of Clover and mRuby2) |
Dichroic mirror | Semrock | FF495-Di03-25×36 | |
Emission filter | Chroma | ET520/40 | |
Dichroic mirror | Semrock | FF560-FDi01-25X36 | |
Emission filter | Chroma | ET645/75 | |
Vibration isolation system | Kinetic systems | 250BM-IC, 5702E-3036-31 | |
Patching chamber | Warner instruments | RC-26G, 64-0235 | |
#0 Micro Coverglass (22x40mm) | Electron Microscopy Sciences | 72198-20 | |
Temperature controller | Warner instruments | TC-344B | |
#0 (0.08~0.13mm) – 10mm diameter glass coverslip | Ted Pella | 260366 | |
Lipofection agent | Life Technologies | 11668-027 | |
Calcium phosphate reagent | Clontech – Takara | 631312 | |
Patch clamp amplifier | HEKA | EPC 10 USB amplifier | |
Multi-channel data acquisition software | HEKA | Patchmaster | |
Image acquisition and analysis software | RedShirtImaging | Neuroplex | |
Spreadsheet application software | Microsoft | Microsoft Excel 2010 | |
Data analysis software | OriginLab | OriginPro 8.6.0 | |
Demagnifier | Qioptiq LINOS | Optem standard camera coupler 0.38x SC38 J clamp | |
Confocal microscope | Nikon | Nikon A1R confocal microscope | |
Anti-fade reagent | Life Technologies | P36930 |