Summary

C-FOS Protein Immunohistologisk Detection: Et nyttig verktøy som en markør av Central Pathways involvere seg i det fysiologiske responser<em> I Vivo</em> og<em> Ex Vivo</em

Published: April 25, 2016
doi:

Summary

Here, we present a protocol based on c-FOS protein immunohistological detection, a classical technique used for the identification of neuronal populations involved in specific physiological responses in vivo and ex vivo.

Abstract

Mange studier søker å identifisere og kartlegge områder av hjernen som er involvert i konkrete fysiologiske forskrifter. Proto-oncogenet c-fos, en umiddelbar tidlig genet, blir uttrykt i nerveceller i respons til forskjellige stimuli. Proteinproduktet kan lett påvises med immunohistokjemiske teknikker som fører til bruken av c-fos deteksjon for å kartlegge grupper av neuroner som viser forandringer i deres aktivitet. I denne artikkelen har vi fokusert på identifisering av hjernestammen nevronale populasjoner som er involvert i ventilasjons tilpasning til hypoksi eller hyperkapni. To tilnærminger ble beskrevet til å identifisere involverte neuronpopulasjoner in vivo hos dyr og ex vivo i deafferented hjernestammen forberedelser. In vivo, dyrene ble utsatt for gassblandinger Hyperkapni eller hypoksiske. Ex vivo, deafferented forberedelser ble superfuseres med hypoksisk eller Hyperkapni kunstig spinalvæske. I begge tilfeller, enten kontroll in vivo dyr eller ex vivo forberedelser ble opprettholdt under normoksisk og normocapnic forhold. Sammenligningen av disse to fremgangsmåter gjør det mulig å bestemme opprinnelsen til den neuronale aktiverings ie, perifere og / eller sentral. In vivo og ex vivo, brainstems ble oppsamlet, fiksert, og skåret i seksjoner. Når seksjoner ble fremstilt, ble immunhistokjemisk deteksjon av c-Fos-proteinet laget for å identifisere de hjernestammen grupper av celler aktivert av hypoksiske eller Hyperkapni stimuleringer. Merkede celler ble tellet i hjernestammen respiratoriske strukturer. I forhold til kontroll tilstand, hypoksi eller hyperkapni økt antall c-fos merkede celler i flere spesifikke hjernestammen områder som er således konstitutiv av nervebaner som er involvert i tilpasning av den sentrale respirasjonen.

Introduction

Den c- fos genet ble identifisert for første gang i begynnelsen av 1980 1,2 og dens produktet ble preget i 1984 som en kjernefysisk protein som har genet-aktivator egenskaper 3,4. Det deltar i langsiktige mekanismer forbundet med nervecelle stimulering. Faktisk, endringer i neuronal aktivitet føre til sekundære budbringersystemer signaleringskaskader som induserer ekspresjon av det umiddelbare tidlige gen c-fos, som induserer produksjonen av transkripsjonsfaktoren c-FOS. Sistnevnte starter uttrykk for sene gener og deltar dermed i tilpasninger i nervesystemet til mange forskjellige typer stimuli 4. Således, siden slutten av 1980 5,6, c-Fos-proteinet detektering har blitt hyppig brukt for å studere virkningene av eksogene faktorer på gentranskripsjon generelt 4 og på aktivitet i sentralnervesystemet (CNS) for kartlegging av nervebaner involvert i forskjellige fysiologiskeal forhold.

Basal c-fos uttrykk har blitt undersøkt i ulike arter, inkludert mus, rotte, katt, ape og menneske fire. Derved kinetikken av dets ekspresjon er relativt godt kjent. Den transkripsjonsaktivering er hurtig (5 til 20 min), 7,8, og mRNA akkumuleringen når et maksimum mellom 30 og 45 min etter starten av stimuleringen 9 og avtar med en kort halveringstid på 12 min. C-Fos proteinsyntese følger mRNA-akkumulering og kan bli detektert ved immunohistokjemi på 20 til 90 minutter etter stimulering 6.

Analyse av c-fos ekspresjonen er klassisk anvendes i in vivo studier for å identifisere den sentrale luftnettet involvert i ventilasjons reaksjoner på hypoksi eller hyperkapni 10-14. Flere nylig, dette verktøyet ble også brukt i ex vivo hjernestammen forberedelser for å utforske sentrale luftveisnettverks tilpasninger til hypoksi eller hypercapnia 15-18. Faktisk disse preparatene generere en rytmisk aktivitet klassisk assimilert til den sentrale respirasjonen 19. Således denne type preparat har fordelen av å være fullstendig deafferented, og resulterer derfor av c-fos ekspresjonen bare reflektere konsekvensene av en sentral stimulering uten innblanding av perifere strukturer.

C-Fos deteksjon kan bli tatt opp av immunohistokjemiske eller immunohistofluorescence tilnærminger. Indirekte immundeteksjon nødvendiggjør bruk av et primært antistoff mot c-fos og et sekundært antistoff rettet mot de artene i hvilke det primære antistoff ble produsert. For immunhistokjemisk fremgangsmåte blir det sekundære antistoff konjugert med et enzym (peroksydase, for eksempel) som virker på et substrat (H 2 O 2 for peroksidase). Produktet fra den enzymatiske reaksjon blir utviklet av et kromogen (3,3-diaminobenzidin tetrahydrochloride), som farger det, og kan iakttas i henhold til lysmikroskopi. Reaksjonen kan bli forsterket ved bruk av nikkel ammoniumsulfat. Disse fremgangsmåter tillater påvisning av aktive bestanddeler neuroner i løpet av forskjellige fysiologiske utfordringer og derfor identifikasjon og / eller kartlegging av perifere og sentrale trasé som er involvert i de på hverandre følgende fysiologiske responser.

Protocol

Merk: c-FOS påvisning er en standardisert prosedyre som involverer flere trinn (figur 1). Alle forsøkene ble utført på rotter eller mus. Eksperimentelle protokoller ble godkjent av etikkomiteen i dyreforsøk Charles Darwin (Ce5 / 2011/05), gjort i samsvar med europeiske fellesskap Rådsdirektiv av 22 september 2010 (2010/63 / EU) for dyr omsorg, og gjennomføres i samsvar med franske lover for dyr omsorg. 1. Utarbeidelse av Solutions Fremstille 0,2 M natriumfo…

Representative Results

C-FOS gjenkjenning er et nyttig verktøy som gjør det mulig å identifisere grupper av aktiverte celler under spesielle forhold som hypoksi og hyperkapni in vivo (figur 2A) eller i situasjoner som etterligner disse forholdene ex vivo (figur 2B). In vivo, nyfødt, unge eller voksen gnagere ble plassert i en lufttett boks i hvilken det gassformige omgivelsene blir kontinuerlig fornyes ved en gassblanding med en sammensetning nø…

Discussion

C-fos er en umiddelbar tidlig genet, og påvisningen av dets produkt, c-Fos-proteinet, er klassisk brukes til å identifisere neuronale populasjoner som er involvert i bestemte luftveisresponser in vivo 11,13,25,28 og ex vivo 16-18, 27,32,33.

Kritiske trinnene i protokollen

Vær forsiktig under perfusjon trinn. 4% PFA løsning må være godt forberedt og feste og post-fiksering sk…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The University Paris 13 supported this work. ASPT was supported by a University Paris 13 fellowship and the “Association Française pour le Syndrome d’Ondine”. FJ was supported by a Laboratory of Excellence GR-Ex fellowship. The GR-Ex (ref ANR-11-LABX-0051) is funded by the program “Investissement d’avenir” of the French National Research agency (ref ANR-11-IDEX-0005-02).

Materials

Cell culture plate 12-Well Costa 35/3
15 mm Netwell inserts with mesh polyester membrane Corning 3477 The 15mm diameter well inserts have 74µm polyester mesh bottoms attached to polystyrene inserts
primary antibody (rabbit polyclonal antibody against the c-Fos protein) Santa Cruz Biotechnology sc-52
Vectastain Elite ABC KIT  Vector laboratories PK-6101
(Rabbit IgG-secondary antibody)
NaH2PO4*2H2O Sigma 71505
Na2HPO4 Sigma S7907
Paraformaldehyde Sigma P6148
NaOH 0.1N Sigma 43617
Polyvinyl-Pyrrolidone Sigma PVP-360
Sucrose Sigma S7903
NaCl Sigma S7653
Ethylene-glycol Sigma 33068
Triton X100 Sigma T8787
Trisma HCl Sigma T5941
Trisma Base Sigma T1503
3.3-diaminobenzidine tetrahydrochloride  Rockland DAB50
Nickel ammonium sulphate Alfa Aesar 12519
H2O2 Sigma H1009
Xylene Sigma 33817
Entellan Neo Merck Millipore 107961
Slide  Thermo-scientific 1014356190 Superfrost ultraplus
Cover glass Thermo-scientific Q10143263NR1 24 x 60mm
BSA Sigma A2153

References

  1. Curran, T., Teich, N. M. Identification of a 39,000-dalton protein in cells transformed by the FBJ murine osteosarcoma virus. Virology. 116, 221-235 (1982).
  2. Curran, T., MacConnell, W. P., van Straaten, F., Verma, I. M. Structure of the FBJ murine osteosarcoma virus genome: molecular cloning of its associated helper virus and the cellular homolog of the v-fos gene from mouse and human cells. Mol Cell Biol. 3, 914-921 (1983).
  3. Curran, T., Miller, A. D., Zokas, L., Verma, I. M. Viral and cellular fos proteins: a comparative analysis. Cell. 36, 259-268 (1984).
  4. Herdegen, T., Leah, J. D. Inducible and constitutive transcription factors in the mammalian nervous system: control of gene expression by Jun, Fos and Krox, and CREB/ATF proteins. Brain Res Brain Res Rev. 28, 370-490 (1998).
  5. Dragunow, M., Faull, R. The use of c-fos as a metabolic marker in neuronal pathway tracing. J Neurosci Methods. 29, 261-265 (1989).
  6. Bullitt, E. Expression of c-fos-like protein as a marker for neuronal activity following noxious stimulation in the rat. J Comp Neurol. 296, 517-530 (1990).
  7. Greenberg, M. E., Ziff, E. B. Stimulation of 3T3 cells induces transcription of the c-fos proto-oncogene. Nature. 311, 433-438 (1984).
  8. Greenberg, M. E., Greene, L. A., Ziff, E. B. Nerve growth factor and epidermal growth factor induce rapid transient changes in proto-oncogene transcription in PC12 cells. J Biol Chem. 260, 14101-14110 (1985).
  9. Muller, R., Bravo, R., Burckhardt, J., Curran, T. Induction of c-fos gene and protein by growth factors precedes activation of c-myc. Nature. 312, 716-720 (1984).
  10. Teppema, L. J., Berkenbosch, A., Veening, J. G., Olievier, C. N. Hypercapnia induces c-fos expression in neurons of retrotrapezoid nucleus in cats. Brain Res. 635, 353-356 (1994).
  11. Teppema, L. J., et al. Expression of c-fos in the rat brainstem after exposure to hypoxia and to normoxic and hyperoxic hypercapnia. J Comp Neurol. 388, 169-190 (1997).
  12. Larnicol, N., Wallois, F., Berquin, P., Gros, F., Rose, D. c-fos-like immunoreactivity in the cat’s neuraxis following moderate hypoxia or hypercapnia. J Physiol Paris. 88, 81-88 (1994).
  13. Bodineau, L., Larnicol, N. Brainstem and hypothalamic areas activated by tissue hypoxia: Fos-like immunoreactivity induced by carbon monoxide inhalation in the rat. Neuroscience. 108, 643-653 (2001).
  14. Erickson, J. T., Millhorn, D. E. Hypoxia and electrical stimulation of the carotid sinus nerve induce Fos-like immunoreactivity within catecholaminergic and serotoninergic neurons of the rat brainstem. J Comp Neurol. 348, 161-182 (1994).
  15. Bodineau, L., et al. Consequences of in utero caffeine exposure on respiratory output in normoxic and hypoxic conditions and related changes of Fos expression: a study on brainstem-spinal cord preparations isolated from newborn rats. Pediatr Res. 53, 266-273 (2003).
  16. Voituron, N., Frugiere, A., Gros, F., Macron, J. M., Bodineau, L. Diencephalic and mesencephalic influences on ponto-medullary respiratory control in normoxic and hypoxic conditions: an in vitro study on central nervous system preparations from newborn rat. Neuroscience. 132, 843-854 (2005).
  17. Voituron, N., Frugiere, A., Champagnat, J., Bodineau, L. Hypoxia-sensing properties of the newborn rat ventral medullary surface in vitro. J Physiol. 577, 55-68 (2006).
  18. Voituron, N., et al. The kreisler mutation leads to the loss of intrinsically hypoxia-activated spots in the region of the retrotrapezoid nucleus/parafacial respiratory group. Neuroscience. 194, 95-111 (2011).
  19. Suzue, T. Respiratory rhythm generation in the in vitro brain stem-spinal cord preparation of the neonatal rat. J Physiol. 354, 173-183 (1984).
  20. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. , e3564 (2012).
  21. Rousseau, J. P., Caravagna, C. Electrophysiology on isolated brainstem-spinal cord preparations from newborn rodents allows neural respiratory network output recording. J Vis Exp. , e53071 (2015).
  22. Start, R. D., Layton, C. M., Cross, S. S., Smith, J. H. Reassessment of the rate of fixative diffusion. J Clin Pathol. 45, 1120-1121 (1992).
  23. Paxinos, G., Watson, C. . The rat brain in stereotaxic coordinates. , (1998).
  24. Paxinos, G., Franklin, K. B. . The mouse brain in stereotaxic coordinates. , (2001).
  25. Berquin, P., Bodineau, L., Gros, F., Larnicol, N. Brainstem and hypothalamic areas involved in respiratory chemoreflexes: a Fos study in adult rats. Brain Res. 857, 30-40 (2000).
  26. Berquin, P., Cayetanot, F., Gros, F., Larnicol, N. Postnatal changes in Fos-like immunoreactivity evoked by hypoxia in the rat brainstem and hypothalamus. Brain Res. 877, 149-159 (2000).
  27. Bodineau, L., Cayetanot, F., Frugiere, A. Fos study of ponto-medullary areas involved in the in vitro hypoxic respiratory depression. Neuroreport. 12, 3913-3916 (2001).
  28. Takakura, A. C., et al. Peripheral chemoreceptor inputs to retrotrapezoid nucleus (RTN) CO2-sensitive neurons in rats. J Physiol. 572, 503-523 (2006).
  29. Mulkey, D. K., et al. Respiratory control by ventral surface chemoreceptor neurons in rats. Nat Neurosci. 7, 1360-1369 (2004).
  30. Finley, J. C., Katz, D. M. The central organization of carotid body afferent projections to the brainstem of the rat. Brain Res. 572, 108-116 (1992).
  31. Bodineau, L., et al. Data supporting a new physiological role for brain apelin in the regulation of hypothalamic oxytocin neurons in lactating rats. Endocrinology. 152, 3492-3503 (2011).
  32. Okada, Y., Chen, Z., Jiang, W., Kuwana, S., Eldridge, F. L. Anatomical arrangement of hypercapnia-activated cells in the superficial ventral medulla of rats. J Appl Physiol (1985). 93, 427-439 (2002).
  33. Saadani-Makki, F., Frugiere, A., Gros, F., Gaytan, S., Bodineau, L. Involvement of adenosinergic A1 systems in the occurrence of respiratory perturbations encountered in newborns following an in utero caffeine exposure. a study on brainstem-spinal cord preparations isolated from newborn rats. Neuroscience. 127, 505-518 (2004).
  34. Morgan, J. I., Cohen, D. R., Hempstead, J. L., Curran, T. Mapping patterns of c-fos expression in the central nervous system after seizure. Science. 237, 192-197 (1987).
  35. Sagar, S. M., Sharp, F. R., Curran, T. Expression of c-fos protein in brain: metabolic mapping at the cellular level. Science. 240, 1328-1331 (1988).
  36. Herdegen, T., Kovary, K., Leah, J., Bravo, R. Specific temporal and spatial distribution of JUN, FOS, and KROX-24 proteins in spinal neurons following noxious transsynaptic stimulation. J Comp Neurol. 313, 178-191 (1991).
  37. Marina, N., Morales, T., Diaz, N., Mena, F. Suckling-induced activation of neural c-fos expression at lower thoracic rat spinal cord segments. Brain Res. 954, 100-114 (2002).

Play Video

Cite This Article
Perrin-Terrin, A., Jeton, F., Pichon, A., Frugière, A., Richalet, J., Bodineau, L., Voituron, N. The c-FOS Protein Immunohistological Detection: A Useful Tool As a Marker of Central Pathways Involved in Specific Physiological Responses In Vivo and Ex Vivo. J. Vis. Exp. (110), e53613, doi:10.3791/53613 (2016).

View Video