Here, we present a protocol based on c-FOS protein immunohistological detection, a classical technique used for the identification of neuronal populations involved in specific physiological responses in vivo and ex vivo.
Mange studier søker å identifisere og kartlegge områder av hjernen som er involvert i konkrete fysiologiske forskrifter. Proto-oncogenet c-fos, en umiddelbar tidlig genet, blir uttrykt i nerveceller i respons til forskjellige stimuli. Proteinproduktet kan lett påvises med immunohistokjemiske teknikker som fører til bruken av c-fos deteksjon for å kartlegge grupper av neuroner som viser forandringer i deres aktivitet. I denne artikkelen har vi fokusert på identifisering av hjernestammen nevronale populasjoner som er involvert i ventilasjons tilpasning til hypoksi eller hyperkapni. To tilnærminger ble beskrevet til å identifisere involverte neuronpopulasjoner in vivo hos dyr og ex vivo i deafferented hjernestammen forberedelser. In vivo, dyrene ble utsatt for gassblandinger Hyperkapni eller hypoksiske. Ex vivo, deafferented forberedelser ble superfuseres med hypoksisk eller Hyperkapni kunstig spinalvæske. I begge tilfeller, enten kontroll in vivo dyr eller ex vivo forberedelser ble opprettholdt under normoksisk og normocapnic forhold. Sammenligningen av disse to fremgangsmåter gjør det mulig å bestemme opprinnelsen til den neuronale aktiverings ie, perifere og / eller sentral. In vivo og ex vivo, brainstems ble oppsamlet, fiksert, og skåret i seksjoner. Når seksjoner ble fremstilt, ble immunhistokjemisk deteksjon av c-Fos-proteinet laget for å identifisere de hjernestammen grupper av celler aktivert av hypoksiske eller Hyperkapni stimuleringer. Merkede celler ble tellet i hjernestammen respiratoriske strukturer. I forhold til kontroll tilstand, hypoksi eller hyperkapni økt antall c-fos merkede celler i flere spesifikke hjernestammen områder som er således konstitutiv av nervebaner som er involvert i tilpasning av den sentrale respirasjonen.
Den c- fos genet ble identifisert for første gang i begynnelsen av 1980 1,2 og dens produktet ble preget i 1984 som en kjernefysisk protein som har genet-aktivator egenskaper 3,4. Det deltar i langsiktige mekanismer forbundet med nervecelle stimulering. Faktisk, endringer i neuronal aktivitet føre til sekundære budbringersystemer signaleringskaskader som induserer ekspresjon av det umiddelbare tidlige gen c-fos, som induserer produksjonen av transkripsjonsfaktoren c-FOS. Sistnevnte starter uttrykk for sene gener og deltar dermed i tilpasninger i nervesystemet til mange forskjellige typer stimuli 4. Således, siden slutten av 1980 5,6, c-Fos-proteinet detektering har blitt hyppig brukt for å studere virkningene av eksogene faktorer på gentranskripsjon generelt 4 og på aktivitet i sentralnervesystemet (CNS) for kartlegging av nervebaner involvert i forskjellige fysiologiskeal forhold.
Basal c-fos uttrykk har blitt undersøkt i ulike arter, inkludert mus, rotte, katt, ape og menneske fire. Derved kinetikken av dets ekspresjon er relativt godt kjent. Den transkripsjonsaktivering er hurtig (5 til 20 min), 7,8, og mRNA akkumuleringen når et maksimum mellom 30 og 45 min etter starten av stimuleringen 9 og avtar med en kort halveringstid på 12 min. C-Fos proteinsyntese følger mRNA-akkumulering og kan bli detektert ved immunohistokjemi på 20 til 90 minutter etter stimulering 6.
Analyse av c-fos ekspresjonen er klassisk anvendes i in vivo studier for å identifisere den sentrale luftnettet involvert i ventilasjons reaksjoner på hypoksi eller hyperkapni 10-14. Flere nylig, dette verktøyet ble også brukt i ex vivo hjernestammen forberedelser for å utforske sentrale luftveisnettverks tilpasninger til hypoksi eller hypercapnia 15-18. Faktisk disse preparatene generere en rytmisk aktivitet klassisk assimilert til den sentrale respirasjonen 19. Således denne type preparat har fordelen av å være fullstendig deafferented, og resulterer derfor av c-fos ekspresjonen bare reflektere konsekvensene av en sentral stimulering uten innblanding av perifere strukturer.
C-Fos deteksjon kan bli tatt opp av immunohistokjemiske eller immunohistofluorescence tilnærminger. Indirekte immundeteksjon nødvendiggjør bruk av et primært antistoff mot c-fos og et sekundært antistoff rettet mot de artene i hvilke det primære antistoff ble produsert. For immunhistokjemisk fremgangsmåte blir det sekundære antistoff konjugert med et enzym (peroksydase, for eksempel) som virker på et substrat (H 2 O 2 for peroksidase). Produktet fra den enzymatiske reaksjon blir utviklet av et kromogen (3,3-diaminobenzidin tetrahydrochloride), som farger det, og kan iakttas i henhold til lysmikroskopi. Reaksjonen kan bli forsterket ved bruk av nikkel ammoniumsulfat. Disse fremgangsmåter tillater påvisning av aktive bestanddeler neuroner i løpet av forskjellige fysiologiske utfordringer og derfor identifikasjon og / eller kartlegging av perifere og sentrale trasé som er involvert i de på hverandre følgende fysiologiske responser.
C-fos er en umiddelbar tidlig genet, og påvisningen av dets produkt, c-Fos-proteinet, er klassisk brukes til å identifisere neuronale populasjoner som er involvert i bestemte luftveisresponser in vivo 11,13,25,28 og ex vivo 16-18, 27,32,33.
Kritiske trinnene i protokollen
Vær forsiktig under perfusjon trinn. 4% PFA løsning må være godt forberedt og feste og post-fiksering sk…
The authors have nothing to disclose.
The University Paris 13 supported this work. ASPT was supported by a University Paris 13 fellowship and the “Association Française pour le Syndrome d’Ondine”. FJ was supported by a Laboratory of Excellence GR-Ex fellowship. The GR-Ex (ref ANR-11-LABX-0051) is funded by the program “Investissement d’avenir” of the French National Research agency (ref ANR-11-IDEX-0005-02).
Cell culture plate 12-Well | Costa | 35/3 | |
15 mm Netwell inserts with mesh polyester membrane | Corning | 3477 | The 15mm diameter well inserts have 74µm polyester mesh bottoms attached to polystyrene inserts |
primary antibody (rabbit polyclonal antibody against the c-Fos protein) | Santa Cruz Biotechnology | sc-52 | |
Vectastain Elite ABC KIT | Vector laboratories | PK-6101 | |
(Rabbit IgG-secondary antibody) | |||
NaH2PO4*2H2O | Sigma | 71505 | |
Na2HPO4 | Sigma | S7907 | |
Paraformaldehyde | Sigma | P6148 | |
NaOH 0.1N | Sigma | 43617 | |
Polyvinyl-Pyrrolidone | Sigma | PVP-360 | |
Sucrose | Sigma | S7903 | |
NaCl | Sigma | S7653 | |
Ethylene-glycol | Sigma | 33068 | |
Triton X100 | Sigma | T8787 | |
Trisma HCl | Sigma | T5941 | |
Trisma Base | Sigma | T1503 | |
3.3-diaminobenzidine tetrahydrochloride | Rockland | DAB50 | |
Nickel ammonium sulphate | Alfa Aesar | 12519 | |
H2O2 | Sigma | H1009 | |
Xylene | Sigma | 33817 | |
Entellan Neo | Merck Millipore | 107961 | |
Slide | Thermo-scientific | 1014356190 | Superfrost ultraplus |
Cover glass | Thermo-scientific | Q10143263NR1 | 24 x 60mm |
BSA | Sigma | A2153 |