Summary

Imaging Spatial Omorganisering av et MAPK signalveien Bruke Tobacco Transient Expression System

Published: March 20, 2016
doi:

Summary

At the subcellular level, signaling events are dynamically modulated by developmental and environmental cues. Here we describe a protocol that employs the tobacco transient expression system to monitor dynamic protein-protein interaction and to disclose spatial organization of signal transduction in plant cells.

Abstract

Visualisering av dynamiske signal hendelser i levende celler har vært en utfordring. Vi utvidet et etablert transient ekspresjonssystem, det biomolekylære fluorescerende komplemente (BiFC) assay i tobakk epidermale celler, fra forsøk protein-protein interaksjon for å overvåke romlig fordeling av signaltransduksjon i planteceller. I denne protokoll har vi brukt BiFC assay for å vise at interaksjonen og signaleringen mellom Arabidopsis MAPKKK YODAs og MAPK6 forekomme på plasmamembranen. Når scaffoldprotein BASL ble co-uttrykk, Yoda-MAPK interaksjon omfordeles og romlig co-polarisert med CFP-BASL. Denne modifiserte tobakk uttrykk system sørger for rask undersøkelse av signale lokalisering og dynamiske endringer (mindre enn 4 dager) og kan huse flere av fluorescerende protein farger (minst tre). Vi presenterte også detaljerte metoder for å kvantifisere protein distribusjon (asymmetrisk romlig lokalisering, eller "polarisering";) I tobakkceller. Denne avanserte tobakk uttrykk systemet har et potensial til å bli brukt mye for rask testing av dynamiske signal hendelser i levende planteceller.

Introduction

Proteiner samhandle innenfor en intrikat hierarkisk nettverk og danner komplekser som spiller en sentral rolle i nesten alle biologiske prosesser som skjer i en uforutsigbar mobilnettet miljø. Men fra anlegget utvikling til vekstresponser, har det vært en mangel på praktiske verktøy som kan ikke bare raskt, men også effektivt identifisere og overvåke disse dynamiske signal hendelser på den subcellulære nivå.

Den forbigående proteinekspresjon system i tobakksblad epidermis har tiltrekkende fordeler for visualisering av fluorescerende proteiner i levende celler. Dette systemet gir semi- in vivo forhold som gjør at post-translasjonell proteinmodifisering og rask undersøkelse av protein lokalisering. Ved å undersøke den suppleres YFP signal informerer bimolecular fluorescerende komplemente (BiFC) assay muligheten for protein-protein interaksjon i planteceller. Sammenlignet med andre metoder, for eksempel, gjær-to hybrid (Y2H) og co-immunoprecipitation (Co-IP), BiFC gir også et kraftig middel til å visualisere avdelinger der protein-protein interaksjoner kan oppstå på subcellulære nivå.

Fordi asymmetrisk celledeling (ACD) opprettholder stamcelle populasjon under generering av nye celletyper for vev / organ formasjonen, er det uunnværlig en mekanisme for å fremme eukaryot multicellularity. Arabidopsis stomatal utvikling har vært brukt som et modellsystem for å studere ACD i planter. Forløperen celle, meristemoid mor celle, skiller asymmetrisk for å fremstille to forskjellige datterceller, en meristemoid (gjennomgår stamcellelignende divisjoner før terminering inn i et par med skjermcellene) og en stomatal avstamning første celle (SLGC) (kan dele seg og differensiere i et fortau celle), henholdsvis (figur 1). I stomatal ACD, er romanen protein Breaking av Asymmetri i stomatal Lineage (BASL) polarisert premitotically å kjøre divisjon asymmetrier, som incLude fysisk asymmetri og celle skjebne asymmetri en. En MAPK kaskade sammensatt av MAPKKK YODA og MAPKs, MPK3 og 6 er sentral for stomatal divisjon mønster og skjebne adopsjon 2,3, 4,5.

Nylig, Zhang et al. knyttet polariteten protein BASL til YDA-MAPK signalveien i Arabidopsis stomatal ACD 6. Den kanoniske YODA-MAPK vei, gjennom MPK3 / 6, phosphorylates BASL og aktiverer sin polarisering. Fosforylerte BASL fungerer som et stillas og rekrutterer YODAs (YDA) og MPK3 / 6 for å danne et proteinkompleks og konsentrer signale på celle cortex 6. Polarisering av MAPK komponenter og den positive feedback loop mellom BASL og YDA-MAPK vei representerer en ny mekanisme for protein polarisering i planteceller. Lokalt beriket MAPK signal er antatt å være nært knyttet til celle skjebne differensiering i stomatal ACD 6 (figur 1). En av de key eksperimentelle data som støtter denne modellen kom fra tobakks analyser som viste den romlige fordeling av MAPK indusert ved ekspresjon av BASL 6.

Generelt er det ikke lett å overvåke hvor MAPK signalering skjer fordi MAPK-molekyler ble ofte funnet overalt inne i en celle. I denne studien, benyttet vi split-YFP system for å visualisere interaksjonen mellom oppstrøms og nedstrøms kinasen de til å foreslå hvor signaler relé inntreffer. Vi ytterligere utvidet bruk av BiFC system ved ko-uttrykker et tredje protein (CFP-merket) med splitten YFP paret (mulighet for protein-protein interaksjon) for å visualisere om og hvordan den suppleres YFP kan bli rommessig modulert av co- uttrykte CFP protein. Ved å gjøre dette, viste vi at samtidig uttrykk for CFP-BASL indusert romlig omorganisering av interaksjoner mellom YDA og MPK6, fra og med distribusjon til polarisert mønster på celle cortex av tobakk epidermal celler. Dette systemet har derfor potensial til å bli utviklet for å overvåke dynamiske signal hendelser i planteceller under forhold når cellene blir utfordret av interne eller eksterne stimuli (f.eks, co-uttrykk av andre proteiner, kjemiske søknad, patogen angripe eller miljømessige endringer, osv. ).

Protocol

1. Plasmid Construction Generer konstruksjonene ved kloning teknologi som tidligere beskrevet 1,6. Først bruker en high fidelity DNA polymerase med egnede primere for å forsterke de kodende sekvenser av BASL, YDA og MPK6 og sub-klone dem inn i inngangs vektorer. Finn detaljert protokoll i 7. For å generere de dominerende negative versjoner av (henholdsvis DNmpk6 8 og DNyda 4,) MPK6 og YDA, bruke oppføringen plasmidene MPK6 og YDA som mal og in…

Representative Results

For å forhindre celledød indusert av den hyperaktive MAPK-signalering, ble kinase inaktive versjoner av YDA (DNyda) og MPK6 (DNmpk6) som benyttes i koekspresjon analyse i tobakkcellene. Verken samspillet mellom DNyda og DNmpk6 avslørt av BiFC eller CFP-BASL selv generert ujevn fordeling mønster (figur 3A-B). Når imidlertid CFP-BASL ble innført i DNyda-DNmpk6 interaksjon paret, ble både CFP og YFP signaler videreformidles til en sterkt polarisert måte (fig…

Discussion

Generell bruk og mulige endringer i tobakks Transient Expression System for signaltransduksjon: Overuttrykte fluorescerende protein (FP) -tagged proteiner i tobakk epidermis har blitt brukt for rask undersøkelse av protein subcellulære lokalisering i planteceller. Men å studere dynamisk signaldistribusjon av proteinkompleks i planta er en utfordrende tema på grunn av kompliserte subcellulære sammenhenger, forbigående protein-protein interaksjon og signaltransduksjon hendelser. For å møt…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Yumeng (Helen) Xia (Rutgers University) for manuscript editing. The work on BASL polarity formation is supported by grants from the U.S. National Institute of General Medical Sciences to J.D. (R01GM109080) and Rutgers University.

Materials

Phusion DNA polymerase New England Biolabs M0530S
pENTR/D/TOPO Life Technologies K2400-20
QuickChange II XL Site-directed Mutagenesis Kit Agilent Technology 200521
LB broth AMRESCO J106-2KG
Bacto Agar AMRESCO J673-1KG
Gentamycin Sigma-Aldrich G3632-1G
Rifampicin Sigma-Aldrich R3501-1G
Kanamycin Sigma-Aldrich K4000-25G
Spectinomycin Sigma-Aldrich S4014-5G
MgCl2 Sigma-Aldrich M8266-100G
25x75mm Slide VWR 16004-382
24×50 mm Cover glass VWR 48393-241
Laser scanning confocal microscope Leica  TCS SP5 II  LAS AF Lite software
40 x objective lens Leica HCX Plan APO  HCX Plan APO , NA 1.30
Centrifuge Thermo Scientific SORVALL 6+
Hole puncher Staples
50 ml falcon tubes Genesee Scientific 21-108
No. 5 Forceps Canemco & Marivac 205EQA-Spec

References

  1. Dong, J., MacAlister, C. A., Bergmann, D. C. BASL controls asymmetric cell division in Arabidopsis. Cell. 137, 1320-1330 (2009).
  2. Lukowitz, W., Roeder, A., Parmenter, D., Somerville, C. A MAPKK kinase gene regulates extra-embryonic cell fate in Arabidopsis. Cell. 116, 109-119 (2004).
  3. Bergmann, D. C., Lukowitz, W., Somerville, C. R. Stomatal development and pattern controlled by a MAPKK kinase. Science. 304, 1494-1497 (2004).
  4. Lampard, G. R., Lukowitz, W., Ellis, B. E., Bergmann, D. C. Novel and expanded roles for MAPK signaling in Arabidopsis stomatal cell fate revealed by cell type-specific manipulations. Plant Cell. 21, 3506-3517 (2009).
  5. Wang, H., Ngwenyama, N., Liu, Y., Walker, J. C., Zhang, S. Stomatal development and patterning are regulated by environmentally responsive mitogen-activated protein kinases in Arabidopsis. Plant Cell. 19, 63-73 (2007).
  6. Zhang, Y., Wang, P., Shao, W., Zhu, J. K., Dong, J. The BASL Polarity Protein Controls a MAPK Signaling Feedback Loop in Asymmetric Cell Division. Dev Cell. 33, 136-149 (2015).
  7. Xu, R., Li, Q. Q. Protocol: Streamline cloning of genes into binary vectors in Agrobacterium via the Gateway(R) TOPO vector system. Plant methods. 4, 4 (2008).
  8. Bush, S. M., Krysan, P. J. Mutational evidence that the Arabidopsis MAP kinase MPK6 is involved in anther, inflorescence, and embryo development. J Exp Bot. 58, 2181-2191 (2007).
  9. Carey, M. F., Peterson, C. L., Smale, S. T. PCR-mediated site-directed mutagenesis. Cold Spring Harbor protocols. , 738-742 (2013).
  10. Kubo, M., et al. Transcription switches for protoxylem and metaxylem vessel formation. Genes Dev. 19, 1855-1860 (2005).
  11. Yuan, L., et al. Allosteric regulation of transport activity by heterotrimerization of Arabidopsis ammonium transporter complexes in vivo. Plant Cell. 25, 974-984 (2013).
  12. Weigel, D., Glazebrook, J. Transformation of agrobacterium using the freeze-thaw method. CSH protocols. 2006 (7), (2006).
  13. Voinnet, O., Rivas, S., Mestre, P., Baulcombe, D. An enhanced transient expression system in plants based on suppression of gene silencing by the p19 protein of tomato bushy stunt virus. Plant J. 33, 949-956 (2003).
  14. Rivero, L., et al. Handling Arabidopsis plants: growth, preservation of seeds, transformation, and genetic crosses. Methods in molecular biology. 1062, 3-25 (2014).
  15. Yang, Z. Cell polarity signaling in Arabidopsis. Annu Rev Cell Dev Biol. 24, 551-575 (2008).
  16. Zhang, J., Nodzynski, T., Pencik, A., Rolcik, J., Friml, J. PIN phosphorylation is sufficient to mediate PIN polarity and direct auxin transport. Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 918-922 (2010).
  17. Furutani, M., et al. Polar-localized NPH3-like proteins regulate polarity and endocytosis of PIN-FORMED auxin efflux carriers. Development. 138, 2069-2078 (2011).
  18. Takano, J., et al. Polar localization and degradation of Arabidopsis boron transporters through distinct trafficking pathways. Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 5220-5225 (2010).
  19. Truernit, E., Bauby, H., Belcram, K., Barthelemy, J., Palauqui, J. C. OCTOPUS, a polarly localised membrane-associated protein, regulates phloem differentiation entry in Arabidopsis thaliana. Development. 139, 1306-1315 (2012).
  20. Pillitteri, L. J., Peterson, K. M., Horst, R. J., Torii, K. U. Molecular profiling of stomatal meristemoids reveals new component of asymmetric cell division and commonalities among stem cell populations in Arabidopsis. Plant Cell. 23, 3260-3275 (2011).
  21. Mouchel, C. F., Osmont, K. S., Hardtke, C. S. BRX mediates feedback between brassinosteroid levels and auxin signalling in root growth. Nature. 443, 458-461 (2006).
check_url/53790?article_type=t&slug=imaging-spatial-reorganization-mapk-signaling-pathway-using-tobacco

Play Video

Cite This Article
Zhang, Y., Dong, J. Imaging Spatial Reorganization of a MAPK Signaling Pathway Using the Tobacco Transient Expression System. J. Vis. Exp. (109), e53790, doi:10.3791/53790 (2016).

View Video