Summary

Epigenetisk regulering av Cardiac Differensiering av embryonale stamceller og vev

Published: June 03, 2016
doi:

Summary

En finjustering regulering av gentranskripsjon ligger under embryonal celle skjebne beslutning. Heri beskriver vi kromatin immunoutfellingsstudier analyser som brukes til å undersøke epigenetisk regulering av både hjerte differensiering av stamceller og hjerte utvikling museembryoer.

Abstract

Spesifikk gentranskripsjon er en viktig biologisk prosess som ligger bak celle skjebne beslutning under embryonal utvikling. Den biologiske prosessen er mediert av transkripsjonsfaktorer som binder genomisk regulatoriske regioner, inkludert forsterkere og arrangører av hjerte konstitutive gener. DNA blir pakket rundt histoner som er utsatt for kjemiske modifikasjoner. Modifikasjoner av histoner videre føre til undertrykte, aktivert eller rustet gentranskripsjon, og dermed bringe et annet nivå av finjustering regulering av gentranskripsjon. Embryonale stamceller (ES-celler) rekapitulere innen embryoid organer (dvs. celleaggregater) eller i 2D kultur de tidlige trinnene i hjerte utvikling. De gir i prinsippet nok materiale til kromatin immunopresipitering (chip), en teknologi bredt anvendt for å identifisere genet regulatoriske områder. Videre humane ES-celler representerer en human cellemodell cardiogenesis. På senere stadier av utvikling, mus embryonale vev tillateundersøker spesifikke epigenetiske landskap som kreves for bestemmelse av celle identitet. Heri beskriver vi protokollene chip, sekvensiell ChIP fulgt av PCR eller brikke-sekvensering ved hjelp av ES-celler, embryoid organer og hjertespesifikke embryonale regioner. Disse protokollene tillater å undersøke epigenetisk regulering av hjerte gentranskripsjon.

Introduction

Hjertet er den første organ som skal dannes og til å bli funksjonell i embryo. Hjertet er bygget fra mange celle linjene som oppstår fra den første og andre embryonale hjerte felt 1. Fra post-fertilisering blastocyststadiet opp til formet hjerte, embryonale celler har dermed gjøre mange celle skjebne beslutninger. Gene transkripsjon er regulert i en tids- og plassavhengig måte og er en viktig biologisk prosess som ligger bak celle skjebne beslutning under embryonal utvikling. En slik prosess er mediert av spesifikke transkripsjonsfaktorer som bindes regulatoriske områder i genomet inkludert stimulerende midler og aktivatorer av hjerte konstitutive gener. DNA blir pakket rundt histoner som er utsatt for modifikasjoner slik som acetylering, metylering, ubiquitinylation, og / eller fosforylering. Histone modifikasjon fører til undertrykte, aktivert eller rustet gentranskripsjon avhengig av hvilken lysinresidiet av histon er endret 2.

jove_content "> Chromatin immunoprecipitation assay (chip) har blitt satt opp år siden 3 og er i dag den mest bredt brukt teknologi for å identifisere mål for enten modifiserte histoner eller transkripsjonsfaktorer fire. Etter immunoprecipitation av histoner eller transkripsjonsfaktorer, kan bindes DNA være enten forsterket ved hjelp av polymerase-kjedereaksjon (PCR) eller sekvensert. Brikken er teknisk overvinne mer utfordrende gelretardasjon assays 5. Men ChIP innebærer ikke direkte binding av en transkripsjonsfaktor på DNA, en fordel ved gelretardasjon assay. på den annen side, spon kombineres for å DNA-sekvensering har åpnet en ny genom-wide perspektiv på genregulering.

ES-celler (ES-celler) rekapitulere innen embryoid organer (ie., Celleaggregater) eller i 2D kultur de tidlige trinn av hjerte utvikling 6 og gir i prinsippet nok materiale for chip. Videre humane ES-celler representerer en human cellemodell på ca.rdiogenesis selv om deres kardio potensial avhenger av deres epigenetisk signatur 7. På senere stadier av utvikling, mus embryonale vev tillate for å undersøke bestemte epigenetiske landskap som kreves for bestemmelse av celleidentitet. Imidlertid er genomet transkribert i en tids- og celletype-spesifikk måte 8. Epigenetisk regulering av gentranskripsjon har til å bli studert innenfor lokale områder. Heri beskriver vi protokollene chip, sekvensiell ChIP fulgt av PCR eller sekvensering ved hjelp av ES-celler, embryoid organer og hjertespesifikke embryonale regioner. Disse protokollene tillater å undersøke epigenetisk regulering av hjerte gentranskripsjon.

Protocol

1. DNA-protein Cross-linking Fix i 15 ml rør høstet-ES-celler (2 x 10 6 celler for vanlig chip, 2 x 10 5 celler for microchip), embryoid organer (EBS) generert fra ES-celler og embryonale hjerte vev dissekert fra E9.5 museembryoer (atrioventrikulær kanalen, utløpskanalen og ventrikkel) ved anvendelse av 1% formaldehyd i PBS i celler eller i permeabiliseringen PB2 buffer for embryonale vev. Plasser røret på orbital ristemaskin ved en hastighet på 60 opm ved romtemperatur i nøyakti…

Representative Results

Figur 1A illustrerer første fremstillingen av DNA-bindende kuler og kvalitetskontroll ved bruk av DNA fra forskjellige størrelser (1 kb stige). 0ne, 2 og 2,5 volumer (1 til 3) av perler ble tilsatt til en volum av prøven for å rense med høy og lav molekyl størrelse DNA-fragmenter. Figurene 1 B, C, D er typiske eksempler på DNA-geler fra hel sonikert DNA ekstrahert fra mus ES-celler, emb…

Discussion

Epigenetikk er blitt et viktig forskningsfelt i utviklingsbiologi. Hvor en genetisk program blir aktivert i embryonale celler til å tillate cellene å anskaffe en spesifikk identitet innenfor en embryonisk linjen har i lang tid et viktig spørsmål for utviklings biologer.

Brikken er bredt anvendt i løpet av de siste årene, og kombineres for å DNA-sekvense følgende forbedring i oppløsningen av sekvensering. Dette har blitt en kraftig teknikk for å undersøke i et genom bred avhengig m…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors acknowledge funding agencies, the IMI StemBANCC European community programme, the leducq Foundation (SHAPEHEART) and the Agence Nationale de la Recherche (Genopath)

Materials

Formaldehyde  Sigma F8775 Cell Fixation 
Glycine Sigma G8898 Cross-link stop
Aprotinin Fluka 10820 Proteases inhibitor
Leupeptin hemisulfate Sigma L2882 Proteases inhibitor
PMSF Sigma P7626 Proteases inhibitor
Protein A magnetic beads  Life technologies 10001D Immunoprecipitation
SPRI magnetic beads Thermo Scientific 15002-01 DNA purification
Proteinase K Life technologies 25530-015 Protein digestion 
DNA BR standard  Life technologies Q32850 Calibration range 
Syber green Molecular Probes S-11484 DNA quantification
TE buffer  Invitrogen P7589 DNA quantification
PBX 1X Life technologies 14190-094 Washing
DNase RNase free water Life technologies 10977-035 Dilution
Axygen tube Axygen MCT-175-C ChIP purifiction
Antibody  Company Reference ChIP concentration
H3K27ac Abcam ab4729 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues
H3K4me1 Diagenode C15410194 (pAb-194-050) 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues
H3K36me3 Diagenode C15410058 (pAb-058-050) 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues
H3K9me2 Diagenode C15410060 (pAb-060-050) 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues
H3K4me3 Diagenode C15410030 (pAb-030-050) 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues
H3K27me3 Diagenode C15410069 (pAb-069-050) 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues

References

  1. Buckingham, M., Meilhac, S., Zaffran, S. Building the mammalian heart from two sources of myocardial cells. Nat Rev Genet. 6, 826-835 (2005).
  2. Chen, T., Dent, S. Y. Chromatin modifiers and remodellers: regulators of cellular differentiation. Nat Rev Genet. 15, 93-106 (2014).
  3. Collas, P. The current state of chromatin immunoprecipitation. Mol Biotechnol. 45, 87-100 (2010).
  4. Gade, P., Kalvakolanu, D. V. Chromatin immunoprecipitation assay as a tool for analyzing transcription factor activity. Methods Mol Biol. 809, 85-104 (2012).
  5. Scott, V., Clark, A. R., Docherty, K. The gel retardation assay. Methods Mol Biol. 31, 339-347 (1994).
  6. Van Vliet, P., Wu, S. M., Zaffran, S., Puceat, M. Early cardiac development: a view from stem cells to embryos. Cardiovasc Res. 96, 352-362 (2012).
  7. Leschik, J., Caron, L., Yang, H., Cowan, C., Puceat, M. A view of bivalent epigenetic marks in two human embryonic stem cell lines reveals a different cardiogenic potential. Stem Cells Dev. 24, 384-392 (2015).
  8. Bonn, S., Zinzen, R. P., Girardot, C., Gustafson, E. H., Perez-Gonzalez, A., Delhomme, N., Ghavi-Helm, Y., Wilczynski, B., Riddell, A., Furlong, E. E. Tissue-specific analysis of chromatin state identifies temporal signatures of enhancer activity during embryonic development. Nat Genet. 44, 148-156 (2012).
  9. Kim, T. K., Shiekhattar, R. Architectural and Functional Commonalities between Enhancers and Promoters. Cell. 162, 948-959 (2015).
  10. Abboud, N., Moore-Morris, T., Hiriart, E., Yang, H., Bezerra, H., Gualazzi, M. G., Stefanovic, S., Guenantin, A. C., Evans, S. M., Puceat, M. A cohesin-OCT4 complex mediates Sox enhancers to prime an early embryonic lineage. Nat Commun. 6, 6749 (2015).
  11. Dahl, J. A., Collas, P. Q2ChIP, a quick and quantitative chromatin immunoprecipitation assay, unravels epigenetic dynamics of developmentally regulated genes in human carcinoma cells. Stem Cells. 25, 1037-1046 (2007).
  12. Bernstein, B. E., Mikkelsen, T. S., Xie, X., Kamal, M., Huebert, D. J., Cuff, J., Fry, B., Meissner, A., Wernig, M., Plath, K., et al. A bivalent chromatin structure marks key developmental genes in embryonic stem cells. Cell. 125, 315-326 (2006).
  13. Wamstad, J. A., Alexander, J. M., Truty, R. M., Shrikumar, A., Li, F., Eilertson, K. E., Ding, H., Wylie, J. N., Pico, A. R., Capra, J. A., et al. Dynamic and coordinated epigenetic regulation of developmental transitions in the cardiac lineage. Cell. 151, 206-220 (2012).
  14. Stergachis, A. B., Neph, S., Reynolds, A., Humbert, R., Miller, B., Paige, S. L., Vernot, B., Cheng, J. B., Thurman, R. E., Sandstrom, R., et al. Developmental fate and cellular maturity encoded in human regulatory DNA landscapes. Cell. 154, 888-903 (2013).
  15. Brind’Amour, J., Liu, S., Hudson, M., Chen, C., Karimi, M. M., Lorincz, M. C. An ultra-low-input native ChIP-seq protocol for genome-wide profiling of rare cell populations. Nat Commun. 6, 6033 (2015).
check_url/53874?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jebeniani, I., Leschik, J., Puceat, M. Epigenetic Regulation of Cardiac Differentiation of Embryonic Stem Cells and Tissues. J. Vis. Exp. (112), e53874, doi:10.3791/53874 (2016).

View Video