Summary

En musmodell av grupp B<em> Streptococcus</em> Vaginal Colonization

Published: November 16, 2016
doi:

Summary

Syftet med detta protokoll är att imitera mänskliga grupp B Streptococcus (GBS) vaginal kolonisation i en musmodell. Denna metod kan användas för att undersöka värdimmunsvar och bakteriella faktorer som bidrar till GBS vaginal uthållighet, såväl som för att testa terapeutiska strategier.

Abstract

Streptococcus agalactiae (grupp B-streptokock, GBS), är en grampositiv, asymtomatisk kolonisatör av den humana mag-tarmkanalen och vaginal-tarmkanalen av 10 – 30% av vuxna. I immun äventyras individer, inklusive nyfödda, gravida kvinnor och äldre, kan GBS byta till en invasiv patogen som orsakar sepsis, artrit, lunginflammation, och hjärnhinneinflammation. Eftersom GBS är en ledande bakteriell patogen av nyfödda, är nuvarande profylax består av sen dräktighet screening för GBS vaginal kolonisation och efterföljande peripartumperioden antibiotikabehandling av GBS-positiva mödrar. Tung GBS vaginalt börda är en riskfaktor för både neonatal sjukdom och kolonisering. Tyvärr lite är känt om värden och bakteriella faktorer som främjar eller tillåter GBS vaginal kolonisering. Detta protokoll beskriver en teknik för upprättande av långlivade GBS vaginal kolonisation användning av en enda β-östradiol förbehandling och daglig provtagning för att bestämma bakteriell load. Det ytterligare detaljer metoder för att administrera ytterligare behandlingar eller reagens av intresse och för att samla vaginal lavage och reproduktionsorganen vävnader. Denna musmodell kommer att främja förståelsen av GBS-värd interaktionen i vaginala miljön, vilket kommer att leda till potentiella terapeutiska mål för att kontrollera moderns vaginala kolonisering under graviditet och för att förhindra överföring till utsatta nyfödda. Det kommer också att vara av intresse att öka vår förståelse av allmänna bakterievärdinteraktioner i den kvinnliga vaginan.

Introduction

Streptococcus agalactiae, grupp B-streptokock (GBS), är en inkapslad, grampositiv bakterie som ofta isoleras från tarmen och urogenital-tarmkanalen hos friska vuxna. På 1970-talet, GBS dykt upp som den ledande agent infektiös neonatal dödlighet, med över 7000 fall av neonatal sjukdom årligen 1. Tidig debut GBS sjukdom (EOD) förekommer i de första timmarna eller dagarna i livet, uppstår som lunginflammation eller andnöd, och ofta utvecklas till sepsis, medan sen debut sjukdom (LOD) följer efter flera månader och presenterar med bakteriemi, som ofta avancerar till meningit 2. Från och med 2002, de Centers for Disease Control and Prevention rekommenderar universell rastrering för GBS vaginal kolonisation i sen dräktighet och intrapartal antibiotikaprofylax (IAP) för att GBS-positiva mödrar 1. Trots minskningen av tidig debut av sjukdomen till cirka 1000 fall i USA varje år på grund av IAPGBS förblir den vanligaste orsaken till tidig debut neonatal sepsis, och sen debut händelse förblir opåverkad 1. Vare sig i livmodern, under förlossningen, eller ens i sen debut fall neonatal exponering för GBS kräver överlevnad, tvärgående genom ett antal värdmiljöer och barriärer, immun skatteflykt, och, i fallet med meningit, passage av den starkt reglerade blod- hjärnbarriären 2. Uppströms dessa virulenta interaktioner inom det nyfödda barnet är den första koloniseringen av moderns vaginan. Moderns GBS vaginal kolonisering varierar mellan 8-18% i utvecklade länder och utvecklingsländer, med en beräknad genomsnittlig hastighet av 12,7% 3,4. GBS kolonisering av vaginan under graviditeten kan vara konstant, intermittent, eller övergående natur bland enskilda kvinnor 5. Intressant nog är en moderns ålder> 36 år i samband med ihållande kolonisering 6. Talrika biologiska och socioekonomiska riskfaktorer för GBS vaginal koloniseringhar identifierats. Biologiska faktorer inkluderar gastrointestinala GBS kolonisering och frånvaro av Lactobacillus i tarmen. Emellertid har etnicitet, fetma, hygien, och sexuell aktivitet också förknippats med GBS vaginal vagnen 7.

Även ökända för att orsaka neonatala infektioner GBS orsakar också en mängd av moderns infektioner både peripartumperioden och postpartum. GBS vagnen ökar hos kvinnor som framlägger med vaginit 8 och, i vissa fall kan till och med vara sjukdomen enheten 9. Dessutom kan GBS uppstigning av fortplantningsorganen under graviditeten leda till inom fostervatten infektion eller korioamnionit 10. Dessutom i upp till 3,5% av graviditeter, sprider GBS till urinblåsan för att orsaka en urinvägsinfektion eller asymtomatisk bakteriuri 11. GBS bakteriuri under graviditeten är associerat med en ökad risk för intrapartal feber, korioamnionit, för tidig födsel, och Premature hinnbristning 12. Sammantaget är närvaron av GBS i vaginan kopplat till infektioner i flera värdvävnader, och förmåga att eliminera GBS från denna nisch är viktigt för både mödrar och nyfödda hälsa.

Tills nyligen var de flesta av arbete undersöker GBS interaktioner med cervicovaginal vägarna begränsas till cell in vitro modeller 13-15. Dessa in vitro experiment har visat bakteriella faktorer som är viktiga för efterlevnad, inklusive ytproteiner såsom en pili och serin rika upprepningarna 17,18, samt två-komponent regelsystem 15,19 och den globala transkriptionssvaret hos vaginala epitel till GBS 19. Men för att fullt belysa värd-mikrobinteraktioner inom vaginalkanalen, är det nödvändigt med en robust djurmodell. Tidigt arbete visade att GBS kan utvinnas ur vaginan av ympade möss 20,21 och råttor <sup> 22 i både gravida och icke-gravida förhållanden. År 2005 var kortsiktiga GBS vaginal kolonisation modelleras i möss för att undersöka effekten av en fag lytiskt enzym för att behandla vaginal GBS under en 24 timmarsperiod 23. Flera år senare, var en långsiktig GBS vaginal kolonisering musmodell utvecklats för att studera värd och bakteriella faktorer som styr GBS uthållighet. Denna modell har identifierat ett antal GBS faktorer som bidrar till kolonisering, inklusive ytan bihang 17,18 och GBS tvåkomponentsystem 19,24. Denna modell har bidragit till identifiering av värdsvarsmekanismer 19,25 och användes för att testa flera terapeutiska strategier, bland annat immunmodulerande peptider 26 och probiotika 27. Detta protokoll ger nödvändig vägledning för att ympa GBS i musen vaginan och därefter spåra kolonisering och samla in prover för ytterligare analyser.

Protocol

Alla djur arbete godkändes av Office of Lab Animal Care på San Diego State University och genomförs under vedertagna veterinära normer. Honmöss, ålder 8 – 16 veckor, användes för att utveckla denna metod. 1. Upprättande och intraperitoneal injektion av β-östradiol Mät upp β-östradiol (0,5 mg / mus) på väga papper iklädd lämplig personlig skyddsutrustning (PPE). VARNING: β-estradiol kan absorberas genom huden och slemhinnor. Överföra β-östradiol till en…

Representative Results

Under utvecklingen av denna modell, har flera observationer gjorts avseende faktorer som påverkar varaktigheten av GBS vaginalt kolonisering. För att avgöra hur brunst scenen på ympning effekter GBS bakteriella uthållighet, möss iscensatt på dagen för ympning via vaginalsköljvätska. Figur 1 visar de fyra stegen i musen Östrogencykeln, som bestäms av wet-mount vaginal lavage, en väletablerad metod 29. Mössen delades in i grupper baserat på detta …

Discussion

Att främja utvecklingen av förståelsen av GBS interaktioner med både värden och andra mikrober i samband med värden, är en djurmodell krävs. Detta arbete beskriver de tekniska aspekterna av upprättandet GBS vaginal kolonisering hos möss. Detta protokoll åstadkommer> 90% kolonisering av möss utan användning av bedövningsmedel för att inokulera bakterier eller för att samla pinnprover, immun-suppressants att möjliggöra kolonisering, vaginal förtvätt, eller tillsatser för att förtjocka inokulat. De…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank the vivarium manager and staff at San Diego State University for support with animal husbandry. During this work, K.A.P. was supported by an ARCS scholarship and a fellowship from the Inamori Foundation. K.S.D. is supported by an R01 grant, NS051247, from the National Institutes of Health.

Materials

Sesame oil  Sigma Aldrich S3547-250ML
β-Estradiol  Sigma Aldrich E8875-1G CAUTION: Wear appropriate PPE. β-estradiol can be absorbed through the skin and mucosal surfaces. 
200 μL gel loading pipette tips  USA Scientific 1252-0610
Urethro-genital, sterile, calcium alginate swabs Puritan 25-801 A 50
CHROMagar StrepB DRG International SB282
Todd Hewitt Broth Hardy Diagnostics 7161C
18 G, 1.5 inch needles BD 305199
26 G, 0.5 inch needles BD 305111
10 mL syringes BD 309604
1 mL syringes BD 309659
0.45 μm PVDF syringe filters Whatman 6900-2504
Dulbecco's Phosphate-Buffered Salt Solution 1X Corning 21-031-CV

References

  1. Verani, J. R., McGee, L., Schrag, S. J. Prevention of perinatal group B streptococcal disease–revised guidelines from CDC. MMWR. Recomm. Rep. 59 (RR-10), 1-36 (2010).
  2. Maisey, H. C., Doran, K. S., Nizet, V. Recent advances in understanding the molecular basis of group B Streptococcus virulence. Expert Rev. Mol. Med. 10, e27 (2008).
  3. Regan, J. A., Klebanoff, M. A., Nugent, R. P. The epidemiology of group B streptococcal colonization in pregnancy. Vaginal Infections and Prematurity Study Group. Obstet. Gynecol. 77 (4), 604-610 (1991).
  4. Stoll, B. J., Schuchat, A. Maternal carriage of group B streptococci in developing countries. Pediatr. Infect. Dis. J. 17 (6), 499-503 (1998).
  5. Brzychczy-Wloch, M., et al. Dynamics of colonization with group B streptococci in relation to normal flora in women during subsequent trimesters of pregnancy. New Microbiol. 37 (3), 307-319 (2014).
  6. Manning, S. D., Lewis, M. A., Springman, A. C., Lehotzky, E., Whittam, T. S., Davies, H. D. Genotypic diversity and serotype distribution of group B streptococcus isolated from women before and after delivery. Clin. Infect. Dis. 46 (12), 1829-1837 (2008).
  7. Le Doare, K., Heath, P. T. An overview of global GBS epidemiology. Vaccine. 31 (Suppl 4), D7-D12 (2013).
  8. Jensen, N. E., Andersen, B. L. The prevalence of group B streptococci in human urogenital secretions. Scand. J. Infect. Dis. 11 (3), 199-202 (1979).
  9. Honig, E., Mouton, J. W., van der Meijden, W. I. Can group B streptococci cause symptomatic vaginitis?. Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 7 (4), 206-209 (1999).
  10. Muller, A. E., Oostvogel, P. M., Steegers, E. A., Dorr, P. J. Morbidity related to maternal group B streptococcal infections. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 85 (9), 1027-1037 (2006).
  11. Ulett, K. B., et al. Diversity of group B streptococcus serotypes causing urinary tract infection in adults. J. Clin. Microbiol. 47 (7), 2055-2060 (2009).
  12. Kessous, R., et al. Bacteruria with group-B streptococcus: is it a risk factor for adverse pregnancy outcomes?. J. Matern. Fetal. Neonatal. Med. 25 (10), 1983-1986 (2012).
  13. Jelìnková, J., Grabovskaya, K. B., Rýc, M., Bulgakova, T. N., Totolian, A. A. Adherence of vaginal and pharyngeal strains of group B streptococci to human vaginal and pharyngeal epithelial cells. Zentralbl. Bakteriol. Mikrobiol. Hyg. A. 262 (4), 492-499 (1986).
  14. Zarate, G., Nader-Macias, M. E. Influence of probiotic vaginal lactobacilli on in vitro adhesion of urogenital pathogens to vaginal epithelial cells. Lett. Appl. Microbiol. 43 (2), 174-180 (2006).
  15. Johri, A. K., et al. Transcriptional and proteomic profiles of group B Streptococcus type V reveal potential adherence proteins associated with high-level invasion. Infect. Immun. 75 (3), 1473-1483 (2007).
  16. Park, S. E., Jiang, S., Wessels, M. R. CsrRS and environmental pH regulate group B streptococcus adherence to human epithelial cells and extracellular matrix. Infect. Immun. 80 (11), 3975-3984 (2012).
  17. Sheen, T. R., Jimenez, A., Wang, N. Y., Banerjee, A., van Sorge, N. M., Doran, K. S. Serine-rich repeat proteins and pili promote Streptococcus agalactiae colonization of the vaginal tract. J. Bacteriol. 193 (24), 6834-6842 (2011).
  18. Wang, N. Y., et al. Group B streptococcal serine-rich repeat proteins promote interaction with fibrinogen and vaginal colonization. J. Infect. Dis. 210 (6), 982-991 (2014).
  19. Patras, K. A., et al. Group B Streptococcus CovR regulation modulates host immune signalling pathways to promote vaginal colonization. Cell. Microbiol. 15 (7), 1154-1167 (2013).
  20. Furtado, D. Experimental group B streptococcal infections in mice: hematogenous virulence and mucosal colonization. Infect. Immun. 13 (5), 1315-1320 (1976).
  21. Cox, F. Prevention of group B streptococcal colonization with topically applied lipoteichoic acid in a maternal-newborn mouse model. Pediatr. Res. 16 (10), 816-819 (1982).
  22. Ancona, R. J., Ferrieri, P. Experimental vaginal colonization and mother-infant transmission of group B streptococci in rats. Infect. Immun. 26 (2), 599-603 (1979).
  23. Cheng, Q., Nelson, D., Zhu, S., Fischetti, V. A. Removal of group B streptococci colonizing the vagina and oropharynx of mice with a bacteriophage lytic enzyme. Antimicrob. Agents Chemother. 49 (1), 111-117 (2005).
  24. Faralla, C., et al. Analysis of two-component systems in group B Streptococcus shows that RgfAC and the novel FspSR modulate virulence and bacterial fitness. mBio. 5 (3), e00870-e00814 (2014).
  25. Patras, K. A., Rösler, B., Thoman, M. L., Doran, K. S. Characterization of host immunity during persistent vaginal colonization by. Group B Streptococcus. Mucosal Immunol. 8 (6), 1339-1348 (2015).
  26. Cavaco, C. K., et al. A novel C5a-derived immunobiotic peptide reduces Streptococcus agalactiae colonization through targeted bacterial killing. Antimicrob. Agents Chemother. 57 (11), 5492-5499 (2013).
  27. Patras, K. A., Wescombe, P. A., Rösler, B., Hale, J. D., Tagg, J. R., Doran, K. S. Streptococcus salivarius K12 limits group B Streptococcus vaginal colonization. Infect. Immun. 83 (9), 3438-3444 (2015).
  28. Shimizu, S. Routes of administration. The Laboratory Mouse. Chapter. 32, 534-535 (2004).
  29. Caligioni, C. S. Assessing reproductive status/stages in mice. Curr. Protoc. Neurosci. 48, A.4I.1-A.4I.8 (2009).
  30. Furr, P. M., Hetherington, C. M., Taylor-Robinson, D. The susceptibility of germ-free, oestradiol-treated, mice to Mycoplasma hominis. J. Med. Microbiol. 30 (3), 233-236 (1989).
  31. Mosci, P., et al. Mouse strain-dependent differences in estrogen sensitivity during vaginal candidiasis. Mycopathologia. 175 (1-2), 1-11 (2013).
  32. Poisson, D. M., Chandemerle, M., Guinard, J., Evrard, M. L., Naydenova, D., Mesnard, L. Evaluation of CHROMagar StrepB: a new chromogenic agar medium for aerobic detection of Group B Streptococci in perinatal samples. J. Microbiol. Methods. 82 (3), 238-242 (2010).
  33. Carey, A. J., et al. Infection and cellular defense dynamics in a novel 17beta-estradiol murine model of chronic human group B streptococcus genital tract colonization reveal a role for hemolysin in persistence and neutrophil accumulation. J. Immunol. 192 (4), 1718-1731 (2014).
  34. Randis, T. M., et al. Group B Streptococcus beta-hemolysin/cytolysin breaches maternal-fetal barriers to cause preterm birth and intrauterine fetal demise in vivo. J. Infect. Dis. 210 (2), 265-273 (2014).
  35. Gendrin, C., et al. Mast cell degranulation by a hemolytic lipid toxin decreases GBS colonization and infection. Sci Adv. 1 (6), e1400225 (2015).
  36. Santillan, D. A., Rai, K. K., Santillan, M. K., Krishnamachari, Y., Salem, A. K., Hunter, S. K. Efficacy of polymeric encapsulated C5a peptidase-based group B streptococcus vaccines in a murine model. Am. J. Obstet. Gynecol. 205 (3), e1-e8 (2011).
  37. De Gregorio, P. R., Juárez Tomás, M. S., Nader-Macìas, M. E. Immunomodulation of Lactobacillus reuteri CRL1324 on Group B Streptococcus Vaginal Colonization in a Murine Experimental Model. Am. J. Reprod. Immunol. 75 (1), 23-35 (2016).
  38. Whidbey, C., et al. A streptococcal lipid toxin induces membrane permeabilization and pyroptosis leading to fetal injury. EMBO Mol. Med. 7 (4), 488-505 (2015).
  39. Santillan, D. A., Andracki, M. E., Hunter, S. K. Protective immunization in mice against group B streptococci using encapsulated C5a peptidase. Am. J. Obstet. Gynecol. 198 (1), e1-e6 (2008).
  40. Cheng, Q., Fischetti, V. A. Mutagenesis of a bacteriophage lytic enzyme PlyGBS significantly increases its antibacterial activity against group B streptococci. Appl. Microbiol. Biotechnol. 74 (6), 1284-1291 (2007).
  41. De Gregorio, P. R., Juárez Tomás, M. S., Leccese Terraf, M. C., Nader-Macìas, M. E. In vitro and in vivo effects of beneficial vaginal lactobacilli on pathogens responsible for urogenital tract infections. J. Med. Microbiol. 63 (Pt 5), 685-696 (2014).
  42. De Gregorio, P. R., Juárez Tomás, M. S., Leccese Terraf, M. C., Nader-Macìas, M. E. Preventive effect of Lactobacillus reuteri CRL1324 on Group B Streptococcus vaginal colonization in an experimental mouse model. J. Appl. Microbiol. 118 (4), 1034-1047 (2015).
  43. Carey, A. J., et al. Interleukin-17A Contributes to the Control of Streptococcus pyogenes Colonization and Inflammation of the Female Genital Tract. Sci. Rep. 31 (6), 26836 (2016).
  44. Hickey, D. K., Patel, M. V., Fahey, J. V., Wira, C. R. Innate and adaptive immunity at mucosal surfaces of the female reproductive tract: stratification and integration of immune protection against the transmission of sexually transmitted infections. J. Reprod. Immunol. 88 (2), 185-194 (2011).
  45. Boskey, E. R., Telsch, K. M., Whaley, K. J., Moench, T. R., Cone, R. A. Acid production by vaginal flora in vitro is consistent with the rate and extent of vaginal acidification. Infect. Immun. 67 (10), 5170-5175 (1999).
  46. Meysick, K. C., Garber, G. E. Interactions between Trichomonas vaginalis and vaginal flora in a mouse model. J. Parasitol. 78 (1), 157-160 (1992).
check_url/54708?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Patras, K. A., Doran, K. S. A Murine Model of Group B Streptococcus Vaginal Colonization. J. Vis. Exp. (117), e54708, doi:10.3791/54708 (2016).

View Video