Summary

En Murine modell av gruppe B<em> Streptococcus</em> Vaginal Colonization

Published: November 16, 2016
doi:

Summary

Hensikten med denne protokollen er å etterligne humant gruppe B Streptococcus (GBS) vaginal kolonisering i en murin modell. Denne fremgangsmåten kan brukes til å undersøke vertsimmunresponser og bakterielle faktorer som bidrar til GBS vaginal utholdenhet, så vel som for å teste terapeutiske strategier.

Abstract

Streptococcus agalactiae (gruppe B Streptococcus, GBS), er en Gram-positiv, asymptomatisk colonizer av den humane mage-tarmkanalen og vaginal skrift av 10 – 30% av voksne. I svekket immunforsvar personer, inkludert nyfødte, gravide og eldre, kan GBS bytte til en invasiv patogen forårsaker sepsis, leddgikt, lungebetennelse og hjernehinnebetennelse. Fordi GBS er en ledende bakteriell patogen av nyfødte, er aktuell profylakse består av sent i svangerskapet screening for GBS vaginal kolonisering og påfølgende peripartum antibiotikabehandling av GBS-positive mødre. Heavy GBS vaginal byrde er en risikofaktor for både neonatal sykdom og kolonisering. Dessverre er lite kjent om verten og bakterielle faktorer som fremmer eller tillater GBS vaginal kolonisering. Denne protokollen beskriver en teknikk for å etablere vedvarende vaginal GBS kolonisering ved hjelp av et enkelt β-østradiol forbehandling og daglig sampling for å bestemme bakterie load. Det videre detaljer metoder for å administrere flere behandlinger eller reagenser av interesse og for å samle vaginal lavage væske og reproduktive veis vev. Denne musen modellen vil fremme forståelsen av GBS-host samhandling innen vaginal miljøet, noe som vil føre til potensielle terapeutiske mål å kontrollere mors vaginal kolonisering under graviditet og for å hindre overføring til den sårbare nyfødte. Det vil også være av interesse å øke vår forståelse av generelle bakterie-vert interaksjoner i den kvinnelige vaginal kanalen.

Introduction

Streptococcus agalactiae, gruppe B Streptococcus (GBS), er en innkapslet, grampositiv bakterie som ofte isoleres fra tarmen og urogenitalsystem hos friske voksne. På 1970-tallet GBS dukket opp som den ledende agent for smittsomme neonatal dødelighet, med over 7000 tilfeller av neonatal sykdom årlig 1. Tidlig innsettende GBS-sykdom (EOD) oppstår i de første timene eller dagene av livet, oppstår som lungebetennelse eller pustevansker, og ofte utvikler seg til sepsis, mens sent oppstått sykdom (LOD) følger etter flere måneder, og presenterer med bakteriemi, som ofte avanserer til meningitt to. Per 2002, Centers for Disease Control and Prevention anbefaler universell screening for GBS vaginal kolonisering i slutten av svangerskapet og intrapartum antibiotikaprofylakse (IAP) for å GBS-positive mødre 1. Til tross for reduksjon av tidlig debut av sykdommen til ca 1000 tilfeller i USA hvert år på grunn av IAP,GBS er fortsatt den ledende årsak til tidlig debut neonatal sepsis, og sent innsettende forekomst forblir upåvirket en. Enten i utero, under fødselen, eller til og med sen debut tilfeller neonatal eksponering for GBS krever overlevelse, tverrgående gjennom en rekke vertsmiljøer og barrierer, immune evasion, og i tilfelle av hjernehinnebetennelse, kryssing av sterkt regulert blod- hjerne barrieren to. Upstream av disse virulente interaksjoner i det nyfødte barnet er den første kolonisering av morens vaginal kanalen. Mors GBS vaginal koloniserings priser varierer 8-18% i utviklede og utviklingsland, med en anslått gjennomsnittlig rente på 12,7% 3,4. GBS kolonisering av vaginal skrift under svangerskapet kan være konstant, intermitterende, eller forbigående blant enkelte kvinner 5. Interessant er en mors alder> 36 år i forbindelse med vedvarende kolonisering 6. Mange biologiske og sosioøkonomiske risikofaktorer for GBS vaginal koloniseringDet er identifisert. Biologiske faktorer omfatter gastrointestinalt GBS kolonisering og fravær av Lactobacillus i tarmen. Imidlertid har etnisk, fedme, hygiene, og seksuell aktivitet har også blitt assosiert med GBS vaginal vogn 7.

Selv beryktet for å forårsake neonatal infeksjoner, GBS fører også en rekke mors infeksjoner både peripartum og postpartum. GBS vogn er økt hos kvinner som opplever vaginitt 8 og, i enkelte tilfeller kan til og med være sykdom enhet 9. I tillegg kan GBS himmelfart skjede under svangerskapet fører til intra-fostervann infeksjon eller korioamnionitt 10. Videre, i opp til 3,5% av alle svangerskap, GBS formidler til urinblæren til å forårsake en urinveisinfeksjon eller asymptomatisk bakteriuri 11. GBS bakteriuri under svangerskapet er forbundet med økt risiko for intrapartal feber, korioamnionitt, prematur fødsel, og premature vannavgang 12. Tatt sammen, er nærværet av GBS innenfor vaginal kanalen koblet til infeksjoner av flere verts vev, og evnen til å eliminere GBS fra denne nisjen er viktig for både mor og neonatal helse.

Inntil nylig var det meste av arbeidet undersøker GBS interaksjoner med cervicovaginal kanalen begrenset til in vitro cellemodeller 13-15. Disse in vitro forsøk har avdekket bakterielle faktorer som er viktige for etterlevelse, inkludert overflateproteiner slik en pili og serin-rich gjentar 17,18, samt to-komponent regelverk 15,19 og den globale transcriptional responsen av vaginal Epitel til GBS 19. Men for å fullt ut belyse host-mikrobe interaksjoner innenfor skjedekanalen, er en robust dyremodell nødvendig. Tidlig arbeid vist at GBS kan utvinnes fra vaginal skrift av inokulerte mus 20,21 og rotter <sup> 22 i både gravide og ikke-gravide betingelser. I 2005 ble kortvarig GBS vaginal kolonisering modellert på mus for å undersøke effekten av et fag lytisk enzym for å behandle vaginal GBS over en 24 timers periode 23. Flere år senere, ble en langsiktig GBS vaginal kolonisering musemodell utviklet for å studere verts og bakterielle faktorer som styrer GBS utholdenhet. Denne modellen har identifisert en rekke GBS faktorer som bidrar til kolonisering, inkludert overflate vedheng 17,18 og GBS to-komponent systemer 19,24. Denne modellen har bidratt til identifisering av vertsresponsmekanismer 19,25 og ble brukt til å teste flere terapeutiske strategier, inkludert immunmodulerende peptider 26 og probiotika 27. Denne protokollen gir nødvendig veiledning for å vaksinere GBS i musen vaginal kanalen og deretter å spore kolonisering og samle inn prøver for videre analyser.

Protocol

Alle dyr arbeidet ble godkjent av Office of Lab Animal Care i San Diego State University og gjennomført under aksepterte veterinær standarder. Hunnmus, alder 8 – 16 uker, ble anvendt for utvikling av denne fremgangsmåte. 1. Forberedelse og intraperitoneal injeksjon av β-østradiol Mål opp β-østradiol (0,5 mg / mus) på veier papir mens iført egnet personlig verneutstyr (PVU). FORSIKTIG: β-østradiol kan absorberes gjennom huden og slimhinneoverflater. Overfør β-ø…

Representative Results

Under utviklingen av denne modellen, ble flere observasjoner gjort om faktorer som påvirker varigheten av GBS vaginal kolonisering. For å finne ut hvordan estrous scenen på inokulasjon konsekvenser GBS bakteriell utholdenhet, ble musene iscenesatt på dagen for vaksinasjon via vaginal lavage væske. Figur 1 viser de fire faser av mus brunst, bestemt ved hjelp av våt-typen vaginal vaskevæske, en veletablert metode 29. Musene ble delt inn i grupper basert p…

Discussion

For å fremme utvikling av forståelsen av GBS-interaksjoner med både verts og andre mikrober innenfor rammen av verten, er en dyremodell nødvendig. Dette arbeidet beskriver de tekniske aspektene ved å etablere GBS vaginal kolonisering hos mus. Denne protokollen oppnår> 90% koloniseringen av musene uten bruk av bedøvelse for å inokulere bakterier eller for å samle inn penselprøver, immun-undertrykkende midler for å muliggjøre kolonisering, vaginal forvask eller additiver for å fortykke inokulum. Dessuten v…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank the vivarium manager and staff at San Diego State University for support with animal husbandry. During this work, K.A.P. was supported by an ARCS scholarship and a fellowship from the Inamori Foundation. K.S.D. is supported by an R01 grant, NS051247, from the National Institutes of Health.

Materials

Sesame oil  Sigma Aldrich S3547-250ML
β-Estradiol  Sigma Aldrich E8875-1G CAUTION: Wear appropriate PPE. β-estradiol can be absorbed through the skin and mucosal surfaces. 
200 μL gel loading pipette tips  USA Scientific 1252-0610
Urethro-genital, sterile, calcium alginate swabs Puritan 25-801 A 50
CHROMagar StrepB DRG International SB282
Todd Hewitt Broth Hardy Diagnostics 7161C
18 G, 1.5 inch needles BD 305199
26 G, 0.5 inch needles BD 305111
10 mL syringes BD 309604
1 mL syringes BD 309659
0.45 μm PVDF syringe filters Whatman 6900-2504
Dulbecco's Phosphate-Buffered Salt Solution 1X Corning 21-031-CV

References

  1. Verani, J. R., McGee, L., Schrag, S. J. Prevention of perinatal group B streptococcal disease–revised guidelines from CDC. MMWR. Recomm. Rep. 59 (RR-10), 1-36 (2010).
  2. Maisey, H. C., Doran, K. S., Nizet, V. Recent advances in understanding the molecular basis of group B Streptococcus virulence. Expert Rev. Mol. Med. 10, e27 (2008).
  3. Regan, J. A., Klebanoff, M. A., Nugent, R. P. The epidemiology of group B streptococcal colonization in pregnancy. Vaginal Infections and Prematurity Study Group. Obstet. Gynecol. 77 (4), 604-610 (1991).
  4. Stoll, B. J., Schuchat, A. Maternal carriage of group B streptococci in developing countries. Pediatr. Infect. Dis. J. 17 (6), 499-503 (1998).
  5. Brzychczy-Wloch, M., et al. Dynamics of colonization with group B streptococci in relation to normal flora in women during subsequent trimesters of pregnancy. New Microbiol. 37 (3), 307-319 (2014).
  6. Manning, S. D., Lewis, M. A., Springman, A. C., Lehotzky, E., Whittam, T. S., Davies, H. D. Genotypic diversity and serotype distribution of group B streptococcus isolated from women before and after delivery. Clin. Infect. Dis. 46 (12), 1829-1837 (2008).
  7. Le Doare, K., Heath, P. T. An overview of global GBS epidemiology. Vaccine. 31 (Suppl 4), D7-D12 (2013).
  8. Jensen, N. E., Andersen, B. L. The prevalence of group B streptococci in human urogenital secretions. Scand. J. Infect. Dis. 11 (3), 199-202 (1979).
  9. Honig, E., Mouton, J. W., van der Meijden, W. I. Can group B streptococci cause symptomatic vaginitis?. Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 7 (4), 206-209 (1999).
  10. Muller, A. E., Oostvogel, P. M., Steegers, E. A., Dorr, P. J. Morbidity related to maternal group B streptococcal infections. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 85 (9), 1027-1037 (2006).
  11. Ulett, K. B., et al. Diversity of group B streptococcus serotypes causing urinary tract infection in adults. J. Clin. Microbiol. 47 (7), 2055-2060 (2009).
  12. Kessous, R., et al. Bacteruria with group-B streptococcus: is it a risk factor for adverse pregnancy outcomes?. J. Matern. Fetal. Neonatal. Med. 25 (10), 1983-1986 (2012).
  13. Jelìnková, J., Grabovskaya, K. B., Rýc, M., Bulgakova, T. N., Totolian, A. A. Adherence of vaginal and pharyngeal strains of group B streptococci to human vaginal and pharyngeal epithelial cells. Zentralbl. Bakteriol. Mikrobiol. Hyg. A. 262 (4), 492-499 (1986).
  14. Zarate, G., Nader-Macias, M. E. Influence of probiotic vaginal lactobacilli on in vitro adhesion of urogenital pathogens to vaginal epithelial cells. Lett. Appl. Microbiol. 43 (2), 174-180 (2006).
  15. Johri, A. K., et al. Transcriptional and proteomic profiles of group B Streptococcus type V reveal potential adherence proteins associated with high-level invasion. Infect. Immun. 75 (3), 1473-1483 (2007).
  16. Park, S. E., Jiang, S., Wessels, M. R. CsrRS and environmental pH regulate group B streptococcus adherence to human epithelial cells and extracellular matrix. Infect. Immun. 80 (11), 3975-3984 (2012).
  17. Sheen, T. R., Jimenez, A., Wang, N. Y., Banerjee, A., van Sorge, N. M., Doran, K. S. Serine-rich repeat proteins and pili promote Streptococcus agalactiae colonization of the vaginal tract. J. Bacteriol. 193 (24), 6834-6842 (2011).
  18. Wang, N. Y., et al. Group B streptococcal serine-rich repeat proteins promote interaction with fibrinogen and vaginal colonization. J. Infect. Dis. 210 (6), 982-991 (2014).
  19. Patras, K. A., et al. Group B Streptococcus CovR regulation modulates host immune signalling pathways to promote vaginal colonization. Cell. Microbiol. 15 (7), 1154-1167 (2013).
  20. Furtado, D. Experimental group B streptococcal infections in mice: hematogenous virulence and mucosal colonization. Infect. Immun. 13 (5), 1315-1320 (1976).
  21. Cox, F. Prevention of group B streptococcal colonization with topically applied lipoteichoic acid in a maternal-newborn mouse model. Pediatr. Res. 16 (10), 816-819 (1982).
  22. Ancona, R. J., Ferrieri, P. Experimental vaginal colonization and mother-infant transmission of group B streptococci in rats. Infect. Immun. 26 (2), 599-603 (1979).
  23. Cheng, Q., Nelson, D., Zhu, S., Fischetti, V. A. Removal of group B streptococci colonizing the vagina and oropharynx of mice with a bacteriophage lytic enzyme. Antimicrob. Agents Chemother. 49 (1), 111-117 (2005).
  24. Faralla, C., et al. Analysis of two-component systems in group B Streptococcus shows that RgfAC and the novel FspSR modulate virulence and bacterial fitness. mBio. 5 (3), e00870-e00814 (2014).
  25. Patras, K. A., Rösler, B., Thoman, M. L., Doran, K. S. Characterization of host immunity during persistent vaginal colonization by. Group B Streptococcus. Mucosal Immunol. 8 (6), 1339-1348 (2015).
  26. Cavaco, C. K., et al. A novel C5a-derived immunobiotic peptide reduces Streptococcus agalactiae colonization through targeted bacterial killing. Antimicrob. Agents Chemother. 57 (11), 5492-5499 (2013).
  27. Patras, K. A., Wescombe, P. A., Rösler, B., Hale, J. D., Tagg, J. R., Doran, K. S. Streptococcus salivarius K12 limits group B Streptococcus vaginal colonization. Infect. Immun. 83 (9), 3438-3444 (2015).
  28. Shimizu, S. Routes of administration. The Laboratory Mouse. Chapter. 32, 534-535 (2004).
  29. Caligioni, C. S. Assessing reproductive status/stages in mice. Curr. Protoc. Neurosci. 48, A.4I.1-A.4I.8 (2009).
  30. Furr, P. M., Hetherington, C. M., Taylor-Robinson, D. The susceptibility of germ-free, oestradiol-treated, mice to Mycoplasma hominis. J. Med. Microbiol. 30 (3), 233-236 (1989).
  31. Mosci, P., et al. Mouse strain-dependent differences in estrogen sensitivity during vaginal candidiasis. Mycopathologia. 175 (1-2), 1-11 (2013).
  32. Poisson, D. M., Chandemerle, M., Guinard, J., Evrard, M. L., Naydenova, D., Mesnard, L. Evaluation of CHROMagar StrepB: a new chromogenic agar medium for aerobic detection of Group B Streptococci in perinatal samples. J. Microbiol. Methods. 82 (3), 238-242 (2010).
  33. Carey, A. J., et al. Infection and cellular defense dynamics in a novel 17beta-estradiol murine model of chronic human group B streptococcus genital tract colonization reveal a role for hemolysin in persistence and neutrophil accumulation. J. Immunol. 192 (4), 1718-1731 (2014).
  34. Randis, T. M., et al. Group B Streptococcus beta-hemolysin/cytolysin breaches maternal-fetal barriers to cause preterm birth and intrauterine fetal demise in vivo. J. Infect. Dis. 210 (2), 265-273 (2014).
  35. Gendrin, C., et al. Mast cell degranulation by a hemolytic lipid toxin decreases GBS colonization and infection. Sci Adv. 1 (6), e1400225 (2015).
  36. Santillan, D. A., Rai, K. K., Santillan, M. K., Krishnamachari, Y., Salem, A. K., Hunter, S. K. Efficacy of polymeric encapsulated C5a peptidase-based group B streptococcus vaccines in a murine model. Am. J. Obstet. Gynecol. 205 (3), e1-e8 (2011).
  37. De Gregorio, P. R., Juárez Tomás, M. S., Nader-Macìas, M. E. Immunomodulation of Lactobacillus reuteri CRL1324 on Group B Streptococcus Vaginal Colonization in a Murine Experimental Model. Am. J. Reprod. Immunol. 75 (1), 23-35 (2016).
  38. Whidbey, C., et al. A streptococcal lipid toxin induces membrane permeabilization and pyroptosis leading to fetal injury. EMBO Mol. Med. 7 (4), 488-505 (2015).
  39. Santillan, D. A., Andracki, M. E., Hunter, S. K. Protective immunization in mice against group B streptococci using encapsulated C5a peptidase. Am. J. Obstet. Gynecol. 198 (1), e1-e6 (2008).
  40. Cheng, Q., Fischetti, V. A. Mutagenesis of a bacteriophage lytic enzyme PlyGBS significantly increases its antibacterial activity against group B streptococci. Appl. Microbiol. Biotechnol. 74 (6), 1284-1291 (2007).
  41. De Gregorio, P. R., Juárez Tomás, M. S., Leccese Terraf, M. C., Nader-Macìas, M. E. In vitro and in vivo effects of beneficial vaginal lactobacilli on pathogens responsible for urogenital tract infections. J. Med. Microbiol. 63 (Pt 5), 685-696 (2014).
  42. De Gregorio, P. R., Juárez Tomás, M. S., Leccese Terraf, M. C., Nader-Macìas, M. E. Preventive effect of Lactobacillus reuteri CRL1324 on Group B Streptococcus vaginal colonization in an experimental mouse model. J. Appl. Microbiol. 118 (4), 1034-1047 (2015).
  43. Carey, A. J., et al. Interleukin-17A Contributes to the Control of Streptococcus pyogenes Colonization and Inflammation of the Female Genital Tract. Sci. Rep. 31 (6), 26836 (2016).
  44. Hickey, D. K., Patel, M. V., Fahey, J. V., Wira, C. R. Innate and adaptive immunity at mucosal surfaces of the female reproductive tract: stratification and integration of immune protection against the transmission of sexually transmitted infections. J. Reprod. Immunol. 88 (2), 185-194 (2011).
  45. Boskey, E. R., Telsch, K. M., Whaley, K. J., Moench, T. R., Cone, R. A. Acid production by vaginal flora in vitro is consistent with the rate and extent of vaginal acidification. Infect. Immun. 67 (10), 5170-5175 (1999).
  46. Meysick, K. C., Garber, G. E. Interactions between Trichomonas vaginalis and vaginal flora in a mouse model. J. Parasitol. 78 (1), 157-160 (1992).
check_url/54708?article_type=t&slug=a-murine-model-of-group-b-streptococcus-vaginal-colonization

Play Video

Cite This Article
Patras, K. A., Doran, K. S. A Murine Model of Group B Streptococcus Vaginal Colonization. J. Vis. Exp. (117), e54708, doi:10.3791/54708 (2016).

View Video