Summary

Mus Microsurgery Infusion Teknikk for målrettet Stoff Levering inn i CNS<i> via</i> Arteria carotis interna

Published: January 31, 2017
doi:

Summary

The present protocol describes a mouse microsurgery infusion technique, which effectively delivers substances directly into the brain via the internal carotid artery.

Abstract

Animal models of central nervous system (CNS) diseases and, consequently, blood-brain barrier disruption diseases, require the delivery of exogenous substances into the brain. These exogenous substances may induce injurious impact or constitute therapeutic strategy. The most common delivery methods of exogenous substances into the brain are based on systemic deliveries, such as subcutaneous or intravenous routes. Although commonly used, these approaches have several limitations, including low delivery efficacy into the brain. In contrast, surgical methods that locally deliver substances into the CNS are more specific and prevent the uptake of the exogenous substances by other organs. Several surgical methods for CNS delivery are available; however, they tend to be very traumatic. Here, we describe a mouse infusion microsurgery technique, which effectively delivers substances into the brain via the internal carotid artery, with minimal trauma and no interference with normal CNS functionality.

Introduction

In vivo-modeller av sentralnervesystemet (CNS) sykdommer krever en effektiv levering av eksogene substanser, slik som medikamenter, patogener, eller exosomes, inn i hjernen. Derfor bør en ideell leveringsmåte forårsake minimal skade på dyret, bevare integriteten av den neuronale nett, og oppnå høye stoffkonsentrasjoner i hjernen 1.

Mange kirurgiske fremgangsmåter for lokal stoffavgivelsen er blitt beskrevet, inkludert intra kappe, intracerebral, og intraventrikulære injeksjoner eller implantater 2, 3, 4, 5. Disse tilnærmingene er imidlertid anses traumatisk på sentralnervesystemet, og tillate tilførsel av kun lave mengder av substansen av interesse. Videre har det blitt foreslått at eksogene substanser hurtig kan fjernes ved hjelp av cerebrospinalvæske 6 </sopp> og en lav inntrengningsområde til hjernen parenchyma er blitt observert 7 når de ovennevnte teknikker anvendes. Systemiske leveringsmetoder, for eksempel oral, pulmonal, subkutan og intravenøs vei, er mer vanlig i dyremodeller, selv om de oppviser lav effektivitet i å levere substanser til CNS, på grunn av opptak av andre organer 8, 9. Derfor er disse ruter av arrangementet krever forhøyede doser av administreres stoffer, som øker risikoen for bivirkninger og giftighet 10, 11.

Her beskriver vi en mus infusjon mikro teknikk, noe som effektivt gir stoffer direkte inn i hjernen via arteria carotis interna. I tillegg til å målrette levering til CNS, denne teknikken ikke omgå normale fysiologiske barrierer og er derfor svært relevant for biological prosessene som er involvert i de avsnitt av terapeutiske eller patogener inn i hjernen.

Protocol

De som er involvert i følgende protokoll prosedyrer har blitt godkjent av University of Miami Institutional Animal Care og bruk Committee (IACUC). I tillegg er alle prosedyrer blir utført i anlegg som er godkjent av Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care International (AAALAC). 1. Utarbeidelse av mus for kirurgi Bedøve mus med isofluran blandet med oksygen, ved bruk av en laboratorie-anestesi system. Bruk isofluran ved å sette mellom 4-5% og oks…

Representative Results

Musen infusjon mikro teknikk som er beskrevet her er meget allsidig og har vært brukt til å levere forskjellige stoffer direkte inn i hjernen, herunder levering av tumorceller i en representativ modell av hjernemetastaser formasjon 1, 12. Denne teknikken er også egnet til å vurdere de patologiske aspekter av forskjellige patogener i CNS. I en musemodell av HIV-infe…

Discussion

Infusjonsmikrobeskrives her har vist seg å være meget vellykket i å levere eksogene substanser av forskjellige biologiske funksjoner i CNS, noe som forhindrer uønsket spredning i hele kroppen 1, 12. Forstyrrelse av blod-hjerne-barrieren er et patologisk trekk ved en rekke CNS-relaterte sykdommer; derfor å vurdere relasjonen av eksogene substanser med blod-hjerne barrieren er av stor betydning og interesse.

Denne operasjonen mode…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank Dr. Lei Chen (Icahn School of Medicine at Mount Sinai, NY) who first established the use of this model in our laboratory, and to Dr. Gretchen Wolff (German Cancer Research Center, Heidelberg, Germany) for disseminating the technique in our laboratory. Supported in part by HL126559, DA039576, MH098891, MH63022, MH072567, DA027569, and NSC 2015/17/B/NZ7/02985.

Materials

Anesthesia instrument Vetequip 901806
Surgical scissors Fine Science Tool 14558-09
Surgical forceps straight tip Fine Science Tool 00108-11
Surgical forceps angled tip Fine Science Tool 00109-11
Spring scissors Fine Science Tool 15000-08
Nylon suture Braintree Scientific SUT-S 104
Capillary tubing (Micro-Renathane 0.010” x 0.005” per ft.)  Braintree Scientific MRE01050
Closing suture VWR 95057-036
Isoflurane Piramal
2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride FisherScientific 50-121-8005

References

  1. Chen, L., Swartz, K. R., Toborek, M. Vessel microport technique for applications in cerebrovascular research. J Neurosci Res. 87 (7), 1718-1727 (2009).
  2. Frisella, W. A., et al. Intracranial injection of recombinant adeno-associated virus improves cognitive function in a murine model of mucopolysaccharidosis type VII. Mol Ther. 3 (3), 351-358 (2001).
  3. Wei, L., Erinjeri, J. P., Rovainen, C. M., Woolsey, T. A. Collateral growth and angiogenesis around cortical stroke. Stroke. 32 (9), 2179-2184 (2001).
  4. Wu, G., et al. Targeted delivery of methotrexate to epidermal growth factor receptor-positive brain tumors by means of cetuximab (IMC-C225) dendrimer bioconjugates. Mol Cancer Ther. 5 (1), 52-59 (2006).
  5. Pignataro, G., Studer, F. E., Wilz, A., Simon, R. P., Boison, D. Neuroprotection in ischemic mouse brain induced by stem cell-derived brain implants. J Cereb Blood Flow Metab. 27 (5), 919-927 (2007).
  6. Sugiyama, Y., Kusuhara, H., Suzuki, H. Kinetic and biochemical analysis of carrier-mediated efflux of drugs through the blood-brain and blood-cerebrospinal fluid barriers: importance in the drug delivery to the brain. J Control Release. 62 (1-2), 179-186 (1999).
  7. Pardridge, W. M. Drug and gene delivery to the brain: the vascular route. Neuron. 36 (4), 555-558 (2002).
  8. Vantyghem, S. A., Postenka, C. O., Chambers, A. F. Estrous cycle influences organ-specific metastasis of B16F10 melanoma cells. Cancer Res. 63 (16), 4763-4765 (2003).
  9. Huang, R. Q., et al. Efficient gene delivery targeted to the brain using a transferrin-conjugated polyethyleneglycol-modified polyamidoamine dendrimer. FASEB J. 21 (4), 1117-1125 (2007).
  10. Liu, R., Martuza, R. L., Rabkin, S. D. Intracarotid delivery of oncolytic HSV vector G47Delta to metastatic breast cancer in the brain. Gene Ther. 12 (8), 647-654 (2005).
  11. Kumar, P., et al. Transvascular delivery of small interfering RNA to the central nervous system. Nature. 448 (7149), 39-43 (2007).
  12. Wrobel, J. K., Wolff, G., Xiao, R., Power, R. F., Toborek, M. Dietary Selenium Supplementation Modulates Growth of Brain Metastatic Tumors and Changes the Expression of Adhesion Molecules in Brain Microvessels. Biol Trace Elem Res. , (2015).
check_url/54804?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Leda, A. R., Dygert, L., Bertrand, L., Toborek, M. Mouse Microsurgery Infusion Technique for Targeted Substance Delivery into the CNS via the Internal Carotid Artery. J. Vis. Exp. (119), e54804, doi:10.3791/54804 (2017).

View Video