Summary

Måling av Forskjellig metylert<em> INS</em> DNA Arter i humant serum som en biomarkør for Islet β celledød

Published: December 21, 2016
doi:

Summary

Islet β cell death precedes development of type 1 diabetes, and detecting this process may allow for early therapeutic intervention. Here, we provide a detailed description of how to measure differentially methylated INS DNA species in human serum as a biomarker of β cell death.

Abstract

The death of islet β cells is thought to underlie the pathogenesis of virtually all forms of diabetes and to precede the development of frank hyperglycemia, especially in type 1 diabetes. The development of sensitive and reliable biomarkers of β cell death may allow for early therapeutic intervention to prevent or delay the development of diabetes. Recently, several groups including our own have reported that cell-free, differentially methylated DNA encoding preproinsulin (INS) in the circulation is correlated to β cell death in pre-type 1 diabetes and new-onset type 1 diabetes. Here, we present a step-by-step protocol using digital PCR for the measurement of cell-free INS DNA that is differentially methylated at cytosine at position -69 bp (relative to the transcriptional start site). We demonstrate that the assay can distinguish between methylated and unmethylated cytosine at position -69 bp, is linear across several orders of magnitude, provides absolute quantitation of DNA copy numbers, and can be applied to samples of human serum from individuals with new-onset type 1 diabetes and disease-free controls. The protocol described here can be adapted to any DNA species for which detection of differentially methylated cytosines is desired, whether from circulation or from isolated cells and tissues, and can provide absolute quantitation of DNA fragments.

Introduction

Type 1 diabetes (T1D) er en autoimmun sykdom som kjennetegnes av ødeleggelsen av insulin-produserende holmen β celler av autoreaktive T-celler 1. Diagnosen T1D er vanligvis laget ved måling av hyperglykemi (blodsukker> 200 mg / dl) i en tynn, ung person, som kan presentere seg med ketoacidose som bevis på insulinmangel. På tidspunktet for diagnose av T1D, er det bevis for betydelig tap av β cellefunksjon og masse (50-90%) 2. I kliniske studier, flere immunmodulerende legemidler som ble innstiftet ved diagnosetidspunktet resulterte i stabiliseringen av β-celle funksjon (og antagelig masse), men ingen har resultert i klinisk remisjon av sykdommen, et funn som har hevet call for utvikling av biomarkører for tidligere påvisning av sykdommen og for langsgående sporing av effektiviteten av kombinasjonsterapier 3,4. Arbeidet med internasjonale konsortier, sliks Human Islet Research Network Consortium ved National Institutes of Heath 5, har understreket behovet for å utvikle biomarkører som fokuserer på β-celle stress og død i T1D.

I tråd med dette arbeidet, har vår gruppe og andre nylig utviklet biomarkør analyser som måler sirkulerende, epigenetiske modifiserte DNA-fragmenter som oppstår i hovedsak fra å dø betacellene 6-9. I alle de publiserte analyser til dags dato, har fokuset vært på kvantifisering av det menneskelige genet som koder preproinsulin (INS), som viser større grad av unmethylated CpG steder i kodingen og promoter regioner sammenlignet med andre celletyper. Frigjøringen av unmethylated INS DNA-fragmenter ble antatt som oppstår i hovedsak fra å dø (nekrotiske, apoptotiske) betaceller. Våre nyere studier viser at i ungdommen, økninger i både unmethylated og denaturert INS DNA ved posisjon -69 bp (i forhold til than Transkripsjonell starte stedet) ble observert i nyoppstått T1D, og sammen tjente som spesifikke biomarkører for denne populasjonen 6. Disse biomarkør analyser involverer isolering av celle-fri DNA fra serum eller plasma ved hjelp av kommersielle kits ring, etterfulgt av en bisulfitt omdannelse av det isolerte DNA (for å omdanne ikke-denaturert cytosines til uraciler, forlater denaturert cytosines intakt).

I denne rapporten beskriver vi de tekniske aspektene av serumprøve samling, isolering av celle-fri DNA fra serum, bisulfitt konvertering, og resultatene av dråpe digital PCR (heretter, digital PCR) for forskjellig metylert INS DNA.

Protocol

Ethics Statement: Protocols were approved by the Indiana University Institutional Review Board. Parents of subjects provided written informed consent, and children older than 7 years provided assent for their participation. 1. Serum Processing NOTE: The assay as described has been rigorously tested using human serum isolated as follows. Collect blood in one red top (no-additive; uncoated) blood collection tube. Let sit at room temperature for 30 min to allow the clot to form. <li…

Representative Results

For å tolke data på riktig måte, bruker vi plasmid kontroller for både unmethylated og denaturert mål INS DNA i hver digital PCR-kjøring. Disse kontrollene sikre at signaler som tilsvarer metylert og unmethylated DNA skiller seg klart. Figur 1 viser 2-D-spredningsdiagrammer svarende til dråper for plasmid kontroller inneholdende bisulfitt-omdannet unmethylated INS-DNA (figur 1A), metanoldenaturert INS-DNA (figur …

Discussion

Metylering av cytosines av DNA metyltransferaser tillater epigenetisk kontroll av transkripsjon på mange gener. INS-genet hos mennesker er nesten utelukkende uttrykt i holmen β-celler, og det synes å være en sammenheng mellom frekvensen av metylering av cytosines i INS-genet til lyddemping av dens transkripsjon 11. Som sådan er de fleste celletyper viser vesentlig høyere frekvenser av metylering av INS-genet ved forskjellige cytosines i forhold til p-celler 11

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by National Institutes of Health grant UC4 DK104166 (to RGM). We wish to acknowledge the assistance of the Indiana Diabetes Research Center Translation Core supported by National Institutes of Health grant P30 DK097512.

Materials

Red Top Vacutainer  Beckon Dickinson 366441 no additive, uncoated interior, 10 ml
Cryovial Tube Simport T310-3A polypropylene, screw cap tube, any size
QIAamp DNA Blood Mini Kit Qiagen 51106
Poly(A) Sigma P9403 disloved in TE buffer (10 mM Tris-Cl pH 8.0 + 1 mM EDTA) to 5 µg/µl 
Absolute Ethanol (200 Proof) Fisher Scientific BP2818-500
DPBS (with CaCl and MgCl) Sigma D8662
0.2 mL PCR 8-strip Tubes MidSci AVST
8-strip Caps, Dome MidSci AVSTC-N
EZ DNA Methylation-Lightning Kit Zymo D5031
ddPCR Supermix for Probes (No dUTP) Biorad 1863024
Buffer Control for Probes Biorad 1863052
Human Unmethylated/Methylated Primer/Probe mix Life Technologies AH21BH1
EcoR1 New England Biolabs R0101L
twin.tec PCR Plate 96, semi-skirted Eppendorf 951020346
Pierceable Foil Heat Seal Biorad 1814040
PX1 PCR Plate Sealer Biorad 1814000
QX200 AutoDG Droplet Digital PCR System Biorad 1864101
Automated Droplet Generation Oil for Probes Biorad 186-4110
DG32 Cartridge for Automated Droplet Generator Biorad 186-4108
Pipet Tips for Automated Droplet Generator Biorad 186-4120
Pipet Tip Bins for Automated Droplet Generator Biorad 186-4125
C1000 Touch Thermal Cycler Biorad 1851197
QX200 Droplet Reader Biorad 186-4003
ddPCR Droplet Reader Oil Biorad 186-3004

References

  1. Lehuen, A., Diana, J., Zaccone, P., Cooke, A. Immune cell crosstalk in type 1 diabetes. Nat. Rev. Immunol. 10 (7), 501-513 (2010).
  2. Sherry, N. A., Tsai, E. B., Herold, K. C. Natural history of beta-cell function in type 1 diabetes. Diabetes. 54, 32-39 (2005).
  3. Maganti, A., Evans-Molina, C., Mirmira, R. From immunobiology to β-cell biology: the changing perspective on type 1 diabetes. Islets. 6 (2), 28778 (2014).
  4. Matthews, J. B., Staeva, T. P., Bernstein, P. L., Peakman, M., von Herrath, M. ITN-JDRF Type 1 Diabetes Combination Therapy Assessment Group Developing combination immunotherapies for type 1 diabetes: recommendations from the ITN-JDRF Type 1 Diabetes Combination Therapy Assessment Group. Clin. Exp. Immunol. 160 (2), 176-184 (2010).
  5. . Human Islet Research Network | HIRN Available from: https://hirnetwork.org/ (2016)
  6. Fisher, M. M., Watkins, R. A., et al. Elevations in Circulating Methylated and Unmethylated Preproinsulin DNA in New-Onset Type 1 Diabetes. Diabetes. 64 (11), 3867-3872 (2015).
  7. Husseiny, M. I., Kaye, A., Zebadua, E., Kandeel, F., Ferreri, K. Tissue-Specific Methylation of Human Insulin Gene and PCR Assay for Monitoring Beta Cell Death. PLoS ONE. 9 (4), 94591 (2014).
  8. Herold, K. C., Usmani-Brown, S., et al. β cell death and dysfunction during type 1 diabetes development in at-risk individuals. J. Clin. Invest. 125 (3), 1163-1173 (2015).
  9. Lehmann-Werman, R., Neiman, D., et al. Identification of tissue-specific cell death using methylation patterns of circulating DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 113 (13), 1826-1834 (2016).
  10. Saiki, R. K., Gelfand, D. H., et al. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase. Science. 239 (4839), 487-491 (1988).
  11. Kuroda, A., Rauch, T. A., et al. Insulin gene expression is regulated by DNA methylation. PloS One. 4 (9), 6953 (2009).
  12. Akirav, E. M., Lebastchi, J., et al. Detection of β cell death in diabetes using differentially methylated circulating DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108 (47), 19018-19023 (2011).
  13. Fisher, M. M., Perez Chumbiauca, C. N., Mather, K. J., Mirmira, R. G., Tersey, S. A. Detection of islet β-cell death in vivo by multiplex PCR analysis of differentially methylated DNA. Endocrinology. 154 (9), 3476-3481 (2013).
  14. Patterson, K., Molloy, L., Qu, W., Clark, S. DNA methylation: bisulphite modification and analysis. J. Vis. Exp. (56), (2011).
  15. Derks, S., Lentjes, M. H. F. M., Hellebrekers, D. M. E. I., de Bruïne, A. P., Herman, J. G., van Engeland, M. Methylation-specific PCR unraveled. Cell. Oncol. 26 (5-6), 291-299 (2004).
  16. Husseiny, M. I., Kuroda, A., Kaye, A. N., Nair, I., Kandeel, F., Ferreri, K. Development of a quantitative methylation-specific polymerase chain reaction method for monitoring beta cell death in type 1 diabetes. PloS One. 7 (10), 47942 (2012).
  17. Hindson, B. J., Ness, K. D., et al. High-Throughput Droplet Digital PCR System for Absolute Quantitation of DNA Copy Number. Anal. Chem. 83 (22), 8604-8610 (2011).
  18. Sozzi, G., Roz, L., et al. Effects of prolonged storage of whole plasma or isolated plasma DNA on the results of circulating DNA quantification assays. J. Natl. Cancer Inst. 97 (24), 1848-1850 (2005).
check_url/54838?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tersey, S. A., Nelson, J. B., Fisher, M. M., Mirmira, R. G. Measurement of Differentially Methylated INS DNA Species in Human Serum Samples as a Biomarker of Islet β Cell Death. J. Vis. Exp. (118), e54838, doi:10.3791/54838 (2016).

View Video