Summary

inoculating<em> Anopheles gambiae</em> Mygg med perler for å indusere og måle Melanization immunrespons

Published: January 12, 2017
doi:

Summary

Through inoculation with beads, the described technique enables the stimulation of the mosquito melanization response in the hemolymph circulating system. The amount of melanin covering the beads can be measured after dissection as a measure of the immune response.

Abstract

Stimulering av immunresponser er et vanlig verktøy i virvelløse studier for å undersøke effekt og mekanismer for immunitet. Denne stimuleringen er basert på injeksjon av ikke-patogene partikler i insekter, slik at partiklene vil bli detektert av immunsystemet og vil indusere produksjonen av immun effektorer. Vi fokuserer her på stimulering av melanization respons i myggen Anopheles gambiae. De melanization respons fører til innkapsling av fremmede partikler og parasitter med en mørk lag av melanin. For å stimulere til dette svaret, er mygg inokulert med perler i brysthulen ved hjelp microcapillary glassrør. Deretter, etter 24 timer, er myggen dissekert for å hente kulene. Graden av melanization av vulsten blir målt ved hjelp av bildeanalyse-programvare. Perler har ikke de patogene virkninger av parasitter, eller deres evne til å unngå eller undertrykke immunresponsen. Disse injeksjoner er en måte å målere immun effekt og virkningen av immunstimuleringer på andre livshistorietrekk, slik som fruktbarhet eller levetid. Det er ikke akkurat det samme som direkte studere vert-parasitt interaksjoner, men det er et interessant verktøy for å studere immunforsvar og dens evolusjonær økologi.

Introduction

Insekter er avhengige av immunresponser for å beskytte seg mot parasitter og patogener 1 3 som bryter gjennom sin skjellaget eller deres midgut epitel 4. I mygg, disse svarene er effektiv mot bakterier 5, virus 6, filarial nematoder 7, og malariaparasitter 1,8,9. I mygg, er en viktig immunrespons innkapsling av fremmede partikler med melanin 10-12. Denne innkapsling kan skje i midttarmen eller i den hemolymfe sirkulerende system 10 12. Dette melanization respons er et resultat av den pro-phenoloxidase cascade 10-12, og det kan føre til døden av parasitter eller til deres fagocytose. Hos voksne mygg, der antall hemocytes celler er begrenset, er melanization en humoral respons, som mot Plasmodium parasitter eller filarial nematoder 7.I enkelte andre insekter, er det direkte de hemocytes celler som samles rundt parasitten til melanize dem syv. Dessuten er melanin også viktig for flere andre fysiologisk prosess som eggproduksjon og skjel sår healing 7.

Stimulering av immunresponser blir brukt som et verktøy for å studere insekt immunitet i flere traktorer og offentlig helse modellsystemer for 13 18 år. Den brukes i Anopheles gambiae mygg, den viktigste vektoren av malaria i Afrika, for å studere verts parasitt interaksjoner 14 16,19. Disse teknikkene er basert på evnen av insekter for å detektere parasitter med sine mønstergjenkjennings reseptorer (PRR) 2. Mygg kan også oppdage andre molekyler som forstyrrer deres biologi som patogen-forbundet molekylære mønstre (PAMPs), eller oppdage sine egne skadede celler på grunn av utgivelsen av kollagen og nukleinsyrer. Myggen immuncellers slik som hemocytes blir brukt for deteksjon 20-23. De viktigste immunsignalveier er IMD, Toll, JAK / STAT 24, og ribonukleinsyre interferens (RNAi) 25,26. Både Toll og IMD trasé påvirke melanization respons og samhandle med pro-phenoloxidase cascade 10-12.

Standarden verktøy som brukes til å stimulere melanization responsen er inokulering av en mygg med en liten perle i hemolymph av brysthulen. Graden av melanin innkapsling kan deretter måles 19 etter henting vulsten ved disseksjon av mygg. I de fleste studiene ble bare en perle injisert per mygg 15,16,27, men injisere flere perler er mulig for å studere grensene for melanization respons 19. Disse perlene injiseres ved hjelp av en injeksjonsoppløsning (fysiologisk serum) for å begrense forstyrrelse av mygg og fysiologiuttørking av mygg 15,16,27. Et fargestoff ble tilsatt til denne løsningen for å lette perle valg. Det er det samme for disseksjon oppløsningen som benyttes til å hente vulsten 15,16,27.

Fordelen med å inokulere insekter med ikke-patogene stimuli er evnen til å fokusere på den direkte effekt på immunresponsen. Det er ingen kompliserende effekter som skyldes parasitten patogenitet 28, immunsuppresjon 29-31, eller immununndragelser 31-34. Dessuten konsekvensene av stimuleringer på andre livshistorietrekk, for eksempel lang levetid eller fruktbarhet, kan også bli studert. Dermed kan forskerne studere evolusjonær økologi krever slike verktøy 2,35,36. For eksempel, immuno-utfordret humler har en kortere levetid i henhold til sult. Lignende negative effekter av immunstimulering og distribusjoner har blitt observert i forskjellige virvelløse modeller, som ofte resulterer i en korter levetiden eller mindre reproduktiv suksess 13,27,37. Slike undersøkelser kan utføres i forskjellige miljøer 2,4,38. Stimulere immunitet er også av interesse for de som fokuserer direkte på immunpatologi 39,40.

Denne protokollen er basert på inokulering av perler med mygg å stimulere melanization respons og direkte måler mengden av melanin. Dette gjør det mulig kvantitativ og kvalitativ undersøkelse av melanization responsen i forskjellige eksperimentelle innstillinger. Et slikt verktøy kan utvides til stimulering av andre immunresponser, slik som antibakteriell respons på varme-drepte bakterier 41. Det kan også bli gjennomført i flere økologiske innstillinger.

Protocol

1. Saline injeksjonsvæske, oppløsning og Dissection Fremstille saltløsning ved tilsetning av NaCl, KCl, og CaCl2 til destillert vann for å oppnå 1,3 mM NaCl, 0,5 mM KCl og 0,2 mM CaCl2 ved pH = 6,8. Tilsett 1 ml 0,1% metyl-grønn oppløsning til 99 ml av saltoppløsning for å farge de transparente kuler. Dette er 0,001% metyl-grønn "injeksjonsoppløsning". Deretter tilsett 5 ml 0,1% metyl-grønn løsning til 45 ml saltoppløsning. Dette 0,01% metyl gr…

Representative Results

Mygg ikke alle melanize perlene på samme måte, som enkelte perler ble mindre dekket med melanin enn andre (figur 1). Faktisk noen perler forble blå på grunn av en mangel på melanization, mens andre var helt mørkt (figur 1). Den melanization verdien ble standardisert ved lineær interpolering til en verdi mellom 0 (som tilsvarte en blå og unmelanized vulst) og 100 (svarende til en mørk og tungt melanized vulst) (figur 2a og …

Discussion

Dette injeksjonsteknikk er nyttig for å stimulere og studere melanization respons hos myggen. For eksempel, her studerte vi effekten av immun stimuli belastning.

Den kritiske trinn i denne prosedyren er å riktig vaksinere mygg. Noen overdreven skade på fly muskler eller til mygg i seg selv kan hindre myggen fra fôring eller kanskje drepe den før disseksjon. Et annet viktig skritt er å holde myggen på is lenge nok til å slå dem ut uten å drepe dem. En liten beholder vil lette og fre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This research was possible through funding from the University of Neuchâtel. We would like to thank all the students that helped in improving this technique, namely our colleague Kevin Thievent. We would also like to thank the members of the Thomas Lab for making their laboratory available. We would like to thank Janet Teeple for her help with mosquito rearing. We would also like to thanks Loyal Hall in the laboratory of Pr. Tom Baker for his help in the preparation of the micro capillary glass tubes.

Materials

Microcapillary glass tubes GB120TF-10 science-products.com GB120TF-10 http://www.science-products.com/Products/CatalogG/Glass/Glass.html
Microcaps Capillary pipette bulb Drumond 1-000-9000
negatively charged Sephadex CM C-25 beads Sigma-Aldrich, Steinheim, Germany C25120 SIGMA need few to start
Methyl green Sigma-Aldrich 323829 ALDRICH need few to start
Software ImageJ opensource Version 1.47f7 or later

References

  1. Dong, Y., Aguilar, R., Xi, Z., Warr, E., Mongin, E., Dimopoulos, G. Anopheles gambiae immune responses to human and rodent Plasmodium parasite species. PLoS pathog. 2 (6), e52 (2006).
  2. Sadd, B. M., Schmid-Hempel, P. PERSPECTIVE: Principles of ecological immunology. Evolutionary Appl. 2 (1), 113-121 (2008).
  3. Crompton, P. D., Moebius, J., et al. Malaria Immunity in Man and Mosquito: Insights into Unsolved Mysteries of a Deadly Infectious Disease*. Annu Rev Immuno. 32 (1), 157-187 (2014).
  4. Schmid-Hempel, P. EVOLUTIONARY ECOLOGY OF INSECT IMMUNE DEFENSES. Annu Rev Entomol. 50 (1), 529-551 (2005).
  5. Hillyer, J. F., Schmidt, S. L., Christensen, B. M. Rapid phagocytosis and melanization of bacteria and Plasmodium sporozoites by hemocytes of the mosquito Aedes aegypti. J parasito. 89 (1), 62-69 (2003).
  6. Carissimo, G., Pondeville, E., et al. Antiviral immunity of Anopheles gambiae is highly compartmentalized, with distinct roles for RNA interference and gut microbiota. PNAS. 112 (2), E176-E185 (2015).
  7. Christensen, B. M., Li, J., Chen, C. -. C., Nappi, A. J. Melanization immune responses in mosquito vectors. Trends parasito. 21 (4), 192-199 (2005).
  8. Collins, F., Sakai, R., et al. Genetic selection of a Plasmodium-refractory strain of the malaria vector Anopheles gambiae. Science. 234 (4776), 607-610 (1986).
  9. Warr, E., Lambrechts, L., Koella, J. C., Bourgouin, C., Dimopoulos, G. Anopheles gambiae immune responses to Sephadex beads: Involvement of anti-Plasmodium factors in regulating melanization. Insect Biochem Molec. 36 (10), 769-778 (2006).
  10. Fuchs, S., Behrends, V., Bundy, J. G., Crisanti, A., Nolan, T. Phenylalanine metabolism regulates reproduction and parasite melanization in the malaria mosquito. PloS one. 9 (1), e84865 (2014).
  11. Cerenius, L., Söderhäll, K. The prophenoloxidase-activating system in invertebrates. Immuno Rev. 198, 116-126 (2004).
  12. Cerenius, L., Lee, B. L., Söderhäll, K. The proPO-system: pros and cons for its role in invertebrate immunity. Trend Immuno. 29 (6), 263-271 (2008).
  13. Moret, Y., Schmid-Hempel, P. . Survival for immunity: the price of immune system activation for bumblebee workers. , 1166-1168 (2000).
  14. Suwanchaichinda, C., Paskewitz, S. M. Effects of Larval Nutrition, Adult Body Size, and Adult Temperature on the Ability of Anopheles gambiae(Diptera: Culicidae) to Melanize Sephadex Beads. J Med Entomol. 35 (2), 157-161 (1998).
  15. Chun, J., Riehle, M., Paskewitz, S. M. Effect of Mosquito Age and Reproductive Status on Melanization of Sephadex Beads in Plasmodium-Refractory and -Susceptible Strains of Anopheles gambiae. J Invertebr Pathol. 66 (1), 11-17 (1995).
  16. Schwartz, A., Koella, J. C. Melanization of Plasmodium falciparum and C-25 Sephadex Beads by Field-Caught Anopheles gambiae (Diptera: Culicidae) from Southern Tanzania. J Med Entomol. 39 (1), 84-88 (2002).
  17. Zahedi, M., Denham, D. A., Ham, P. J. Encapsulation and melanization responses of Armigeres subalbatus against inoculated Sephadex beads. J Invertebr Pathol. 59 (3), 258-263 (1992).
  18. Laughton, A. M., Garcia, J. R., Altincicek, B., Strand, M. R., Gerardo, N. M. Characterisation of immune responses in the pea aphid, Acyrthosiphon pisum. J insect physiol. 57 (6), 830-839 (2011).
  19. Barreaux, A. M. G., Barreaux, P., Koella, J. C. Overloading the immunity of the mosquito Anopheles gambiae with multiple immune challenges. Parasite Vector. 9 (1), 210 (2016).
  20. Lazzaro, B. P., Rolff, J. Danger, Microbes, and Homeostasis. Science. 332 (6025), 43-44 (2011).
  21. Arrighi, R. B. G., Faye, I. Plasmodium falciparum GPI toxin: a common foe for man and mosquito. Acta trop. 114 (3), 162-165 (2010).
  22. Michel, K., Kafatos, F. C. Mosquito immunity against Plasmodium. Insect Biochem Molec. 35 (7), 677-689 (2005).
  23. Osta, M. A., Christophides, G. K., Vlachou, D., Kafatos, F. C. Innate immunity in the malaria vector Anopheles gambiae: comparative and functional genomics. J Exp Biol. 207 (15), 2551-2563 (2004).
  24. Christophides, G. K., Vlachou, D., Kafatos, F. C. Comparative and functional genomics of the innate immune system in the malaria vector Anopheles gambiae. Immunol Rev. 198 (1), 127-148 (2004).
  25. Blair, C. D. Mosquito RNAi is the major innate immune pathway controlling arbovirus infection and transmission. Future microbiol. 6 (3), 265-277 (2011).
  26. Fragkoudis, R., Attarzadeh-Yazdi, G., Nash, A. A., Fazakerley, J. K., Kohl, A. Advances in dissecting mosquito innate immune responses to arbovirus infection. J Gen Virol. , (2009).
  27. Schwartz, A., Koella, J. C. The cost of immunity in the yellow fever mosquito, Aedes aegypti depends on immune activation. J evol biol. 17 (4), 834-840 (2004).
  28. Lambrechts, L., Vulule, J. M., Koella, J. C. Genetic correlation between melanization and antibaterial immune responses in a natural population of the malaria vector Anopheles gambiae. Evolution. 58 (10), 2377 (2004).
  29. Boete, C., Paul, R. E. L., Koella, J. C. Direct and indirect immunosuppression by a malaria parasite in its mosquito vector. P Roy Soc B-Biol Sci. 271 (1548), 1611-1615 (2004).
  30. Sacks, D., Sher, A. Evasion of innate immunity by parasitic protozoa. Nat immunol. 3 (11), 1041-1047 (2002).
  31. Zambrano-Villa, S., Rosales-Borjas, D., Carrero, J. C., Ortiz-Ortiz, L. How protozoan parasites evade the immune response. Trend Parasito. 18 (6), 272-278 (2002).
  32. Damian, R. T. Parasite immune evasion and exploitation: reflections and projections. Parasitology. 115, S169-S175 (1997).
  33. Schmid-Hempel, P. Parasite immune evasion: a momentous molecular war. Trend ecol evol. 23 (6), 318-326 (2008).
  34. Schmid-Hempel, P. Immune defence, parasite evasion strategies and their relevance for "macroscopic phenomena" such as virulence. P Roy Soc B-Biol Sci. 364 (1513), 85-98 (2009).
  35. Stearns, S. C., Koella, J. C. The evolution of phenotypic plasticity in life history traits- predictions of reaction norms for age and size at maturity. Evolution. 40 (5), 893-913 (1986).
  36. Stearns, S. C. Life-history tactics: a review of the ideas. Q rev biol. 51 (1), 3-47 (1976).
  37. Valtonen, T. M., Kleino, A., Ramet, M., Rantala, M. J. Starvation Reveals Maintenance Cost of Humoral Immunity. Evol Biol. 37 (1), 49-57 (2010).
  38. Sheldon, B. C., Verhulst, S. Ecological immunology: costly parasite defences and trade-offs in evolutionary ecology. Trend Ecol Evo. 11 (8), 317-321 (1996).
  39. Graham, A. L., Allen, J. E., Read, A. F. Evolutionary causes and consequences of immunopathology. Annu Rev Ecol Evol S. 36, 373-397 (2005).
  40. Best, A., Long, G., White, A., Boots, M. The implications of immunopathology for parasite evolution. P Roy Soc B-Biol Sci. 279 (1741), 3234-3240 (2012).
  41. Cator, L. J., George, J., et al. 34;Manipulation" without the parasite: altered feeding behaviour of mosquitoes is not dependent on infection with malaria parasites. P Roy Soc B-Biol Sci. 280 (1763), 20130711 (2013).
  42. Voordouw, M. J., Lambrechts, L., Koella, J. No maternal effects after stimulation of the melanization response in the yellow fever mosquito Aedes aegypti. Oikos. 117 (8), 1269-1279 (2008).
  43. Paskewitz, S., Riehle, M. A. Response of Plasmodium refractory and susceptible strains of Anopheles gambiae to inoculated Sephadex beads. Dev comp immunol. 18 (5), 369-375 (1994).
check_url/55013?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Barreaux, A. M. G., Barreaux, P., Thomas, M. B., Koella, J. C. Inoculating Anopheles gambiae Mosquitoes with Beads to Induce and Measure the Melanization Immune Response. J. Vis. Exp. (119), e55013, doi:10.3791/55013 (2017).

View Video