Summary

منهج تنوعا من الزخرفة البروتينات والخلايا

Published: February 26, 2017
doi:

Summary

This report describes a simple, easy to perform technique, using low pressure vacuum, to fill microfluidic channels with cells and substrates for biological research.

Abstract

Substrate and cell patterning techniques are widely used in cell biology to study cell-to-cell and cell-to-substrate interactions. Conventional patterning techniques work well only with simple shapes, small areas and selected bio-materials. This article describes a method to distribute cell suspensions as well as substrate solutions into complex, long, closed (dead-end) polydimethylsiloxane (PDMS) microchannels using negative pressure. This method enables researchers to pattern multiple substrates including fibronectin, collagen, antibodies (Sal-1), poly-D-lysine (PDL), and laminin. Patterning of substrates allows one to indirectly pattern a variety of cells. We have tested C2C12 myoblasts, the PC12 neuronal cell line, embryonic rat cortical neurons, and amphibian retinal neurons. In addition, we demonstrate that this technique can directly pattern fibroblasts in microfluidic channels via brief application of a low vacuum on cell suspensions. The low vacuum does not significantly decrease cell viability as shown by cell viability assays. Modifications are discussed for application of the method to different cell and substrate types. This technique allows researchers to pattern cells and proteins in specific patterns without the need for exotic materials or equipment and can be done in any laboratory with a vacuum.

Introduction

في هندسة الأنسجة وbiosensing، والقدرة على التحكم في التنظيم المكاني للبروتينات وخلايا على نطاق ميكرون، أصبحت ذات أهمية متزايدة على مدى العقود الأربعة الماضية 3. وقد سمح التنظيم المكاني دقيقة من البروتينات والخلايا الباحثين لدراسة التفاعل بين الخلايا وركائز التي تحتوي على أنواع مماثلة أو مختلفة من الخلايا، لتوجيه نمو الخلايا، ولشل حركة الجزيئات الحيوية لتصنيع أجهزة الاستشعار 9.

وتشمل الأساليب الحالية للبروتينات الزخرفة photopatterning وmicrocontact الطباعة. Photopatterning تستخدم المواد الحساسة للضوء التي crosslinked عند التعرض لغلاهالأشعة فوق البنفسجية (UV) الضوء. ضوء الأشعة فوق البنفسجية التي تستهدف الضوئية الرئيسية (التي تتكون من مناطق شفافة مع المناطق الداكنة لمنع الأشعة فوق البنفسجية نقل الضوء) يسبب يشابك في مناطق محددة والتي يمكن استخدامها بعد ذلك لمرفق لاحق من المواد الحيوية أو خلايا 10 و 11. في حين أن هذا المخطط هو دقيق جدا ويسمح لمراقبة دقيقة من تضاريس سطح الثقافة، فإنه يقتصر على الجزيئات الحيوية حساسة للأشعة فوق البنفسجية التي يمكن نمط من الأشعة فوق البنفسجية (12). microcontact الطباعة هي طريقة شعبية أخرى من الزخرفة بروتينات معينة 13 و 14. في هذه الطريقة، يتم التعامل على siloxane (PDMS) ختم بولي ميثيل مع مجموعة متنوعة من الكواشف تعديل السطح قبل نقعه في حل الركيزة الجزيئية البيولوجية الذي تم اختياره. ثم يتم الضغط برفق على ساترة الزجاج أو أي سطح آخر وهكذا "ختم" جزيء حيوي على سطح الثقافة. هوويفر، يقتصر ختم لنوع من المواد التي يمكن نقلها وكذلك بلل من الجزيئات الحيوية لسطح PDMS ختم 15.

الزخرفة مباشرة من الخلايا يمكن أن يكون أكثر صعوبة وتعتمد على أساليب معقدة مثل ركائز للتحويل، وأساليب الاستنسل مقرها، أو الزخرفة مع خلية التصاق جزيئات محددة 16 و 17. تقتصر هذه الأساليب في قدرتها على خلايا نمط نظرا لعدم وجود متوافقة ركائز التصاق الخلية، عدم توافق عملية للعمل مع الخلايا الحساسة البيولوجية والقيود، عدم الاتساق في استنساخ الزخرفة، وتعقيد الإجراءات. على سبيل المثال، مع ركائز للتحويل، تحتاج ركائز مخصصة لتكون مصممة لكل نوع من الخلايا، لتبديل تمسكهم أنواع معينة من الخلايا دون تدهور عند التعرض لضوء الأشعة فوق البنفسجية والحرارة المستخدمة في عملية 17 < الطبقة سوب = "XREF"> 18، 19، 20. أساليب الزخرفة على أساس الاستنسل وتنوعا في قدرتها على خلايا النمط. ومع ذلك، فإنه من الصعب لتصنيع الإستنسل PDMS في سمك مناسبة للاستخدام 16، 21. الحقن المباشر للخلايا في القنوات ميكروفلويديك PDMS لها بعض المزايا مثل: 1) سهولة في تلفيق من القنوات ميكروفلويديك و2) ملاءمة لكثير من الخلايا وركائز مختلفة. ومع ذلك، فإن القضية السائدة من القبض على فقاعة الهواء أثناء عملية الحقن بسبب للا مائية من PDMS دون استخدام تنظيف البلازما، أو وسائل أخرى لتقليل فقاعات الهواء، ويجعل من الصعب خلق باستمرار خلايا نقوش على الزجاج أو البلاستيك السطوح 21.

توسع هذا العمل على شعري micromolding 22، 23،معشوقة = "XREF"> 24 و 25 و 26 و تقارير طريقة لحقن البروتين والخلايا تعليق في microchannels. الطريقة المستخدمة هنا يدل على الزخرفة من ركائز وكلا الزخرفة المباشرة وغير المباشرة لأنواع معينة من الخلايا. هذه التقنية يتغلب للا مائية عالية من PDMS ويلغي وجود فقاعات أثناء الحقن إما ركائز أو الخلايا عن طريق الاستفادة من نفاذية الغاز من PDMS 27. توضح هذه الورقة استخدام هذه التقنية مع العديد من ركائز مختلفة وأنواع الخلايا. كما يسلط الضوء على المادة في تصنيع قوالب الطباعة الحجرية الناعمة باستخدام ضوئيه التقليدية فضلا عن بسيطة ولاصقة منخفضة التكلفة طريقة الشريط المفيد في الموارد إعدادات محدودة 28، 29.

Protocol

ملاحظة: يرجى الرجوع إلى جميع بيانات سلامة المواد ذات الصلة (MSDS) قبل الاستخدام. بعض المواد الكيميائية المستخدمة في هذا البروتوكول سامة ومسرطنة. الرجاء استخدام جميع ممارسات السلامة المناسبة (غطاء الدخان، صندوق قفازات) ومعدات الوقاية الشخصية (النظارات الواقية والقفازا…

Representative Results

وتسمح هذه الطريقة في الزخرفة من البروتينات والزخرفة غير المباشرة من الخلايا باستخدام مسدود قنوات ميكروفلويديك مع أبعاد صغيرة مثل 10 ميكرون والتجهيزات المتوفرة في معظم المختبرات البيولوجية بمجرد اعتماد القالب الرئيسي. ويمكن استخدام هذه التقنية مع …

Discussion

في حين ضوئيه التقليدية هي تقنية راسخة لإنشاء قوالب للالطباعة الحجرية الناعمة والمعدات والمواد والمهارات اللازمة لاستخدام ضوئيه التقليدية ليست متاحة بسهولة في معظم المختبرات. للمختبرات دون الوصول إلى هذه الموارد، قدمنا ​​لاصقة تلفيق الشريط كوسيلة لخلق قوالب مع م?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم تمويل هذا البحث من قبل لجنة ولاية نيو جيرسي في الحبل الشوكي البحوث (NJCSCR) (لFHK)، منح CSCR14IRG005 (لBLF)، المعاهد الوطنية للصحة منح R15NS087501 (لCHC)، ومؤسسة كيربي FM (لايتا).

Materials

CorelDRAW X4 CAD Drawing Tools Corel Corporation, Canada X4 Version 14.0.0.701 CAD tool used to draw the layout of the microfluidic device
Laser Printer HP Hewlett Packard, CA 1739629 Used to print the layout of microfluidic device for adhesive tape technique
Bel-Art Dessicator Fisher Scientific, MA 08-594-16B Used to degass the PDMS mixture
Adhesive Scotch Tape 3M Product, MN Tape 600 Used to fabricate adhesive tape Master
PDMS Sylgard 184 Dow Corning, MI 1064291 Casting polymer
Petri Dish Fisher Scientific, MA 08-772-23 Used to keep the mold to cast with PDMS
Stainless steel Scalpel (#3) with blade (# 11) Feather Safety Razor Co. Ltd. Japan 2976#11 Used to cut the PDMS
Tweezers Ted Pella, CA 5627-07 Used to handle the PDMS cast during peeling
Glass slides Fisher Scientific, MA 12-546-2 Used as surface to pattern the Substrate
Glass slides Fisher Scientific, MA 12-544-4 Used as surface to pattern the Substrate
Rubber Roller Dick Blick Art Materials, IL 40104-1004 Used to attach adhesive tape on glass without trapping air bubbles
Laser Mask Writer Heidelberg Instruments, Germany DWL66fs Used to fabricate quartz mask used in photolithography fabrication process
EVG Mask Aligner (Photolithography UV exposure tool) EV Group, Germany EVG 620T(B) Used to expose the photoresist to UV light
Spin Coater Headway Headway Research Inc, TX PWM32-PS-CB15PL Used to spin coat the photoresist on silicon wafer
Photoresists SU-8 50 MicroChem, MA Y131269 Negative photoresist used for mold fabrication
SU-8 Devloper MicroChem, MA Y020100 Photoresist developer
Tridecafluoro-1,1,2,2-Tetrahydrooctyl-1-Trichlorosilane UCT Specialties, PA T2492-KG Coat mold to avoid PDMS adhesion
Isopropanol Sigma-Aldrich, MO 190764 Cleaning Solvent
Ethanol Sigma-Aldrich, MO 24102 Sterilization Solvent
Poly-D-Lysine hydrobromide (PDL) Sigma-Aldrich, MO P0899-10MG PDL solution is made at 0.1 mg/mL in Sodium Tetraborate Buffer
Laminin Sigma-Aldrich, MO L2020 Laminin aliquoted into 10 µL aliquots and diluted to 20 µg/µL in PBS prior to use
BSA Fisher Scientific, MA BP1605100 Cell culture
C2C12 Myoblast cell lline ATCC, VA CRL-1722 Used to demonstrate C2C12 patterning
PC12 Cell Line ATCC, VA CRL-1721 Used to demonstrate PC12 patterning
Collagen type 1, rat tail BD Biosciences 40236 Cell culture
DMEM GIBCO, MA 11965-084 Cell culture
Horse Serum, heat inactivated Fisher Scientific, MA 26050-070 Cell culture
Phalloidin-tetramethylrhodamine B isothiocyanate (TRITC) Sigma-Aldrich, MO P1951 To label cells
Calcein-AM live dead cell Assay kit Invitrogen, MA L-3224 Cell viability Assay
Biopsy Hole Punch Ted Pella, CA 15110-10 Punched hole in PDMS

References

  1. Kane, R. S., Takayama, S., Ostuni, E., Ingber, D. E., Whitesides, G. M. Patterning proteins and cells using soft lithography. Biomaterials. 20 (23-24), 2363-2376 (1999).
  2. Lin, R. Z., Ho, C. T., Liu, C. H., Chang, H. Y. Dielectrophoresis based-cell patterning for tissue engineering. Biotechnol J. 1 (9), 949-957 (2006).
  3. Veiseh, M., Zareie, M. H., Zhang, M. Highly Selective Protein Patterning on Gold-Silicon Substrates for Biosensor Applications. Langmuir. 18 (17), 6671-6678 (2002).
  4. Kung, F., Wang, J., Perez-Castillejos, R., Townes-Anderson, E. Position along the nasal/temporal plane affects synaptic development by adult photoreceptors, revealed by micropatterning. Integr Biol. 7 (3), 313-323 (2015).
  5. Dickinson, L. E., Lutgebaucks, C., Lewis, D. M., Gerecht, S. Patterning microscale extracellular matrices to study endothelial and cancer cell interactions in vitro. Lab Chip. 12 (21), 4244-4248 (2012).
  6. Khademhosseini, A., et al. Co-culture of human embryonic stem cells with murine embryonic fibroblasts on microwell-patterned substrates. Biomaterials. 27 (36), 5968-5977 (2006).
  7. Bogdanowicz, D. R., Lu, H. H. Studying cell-cell communication in co-culture. Biotechnol J. 8 (4), 395-396 (2013).
  8. Choi, Y., Lee, S. Guided cell growth through surface treatments. J of Mech Sci Technol. 19 (11), 2133-2137 (2005).
  9. Hwang, I. -. T., et al. Efficient Immobilization and Patterning of Biomolecules on Poly(ethylene terephthalate) Films Functionalized by Ion Irradiation for Biosensor Applications. ACS Appl Mater Interf. 3 (7), 2235-2239 (2011).
  10. Clark, P., Britland, S., Connolly, P. Growth cone guidance and neuron morphology on micropatterned laminin surfaces. J Cell Sci. 105 (1), 203-212 (1993).
  11. Théry, M. Micropatterning as a tool to decipher cell morphogenesis and functions. J Cell Sci. 123 (24), 4201-4213 (2010).
  12. Douvas, A., et al. Biocompatible photolithographic process for the patterning of biomolecules. Biosens Bioelectron. 17 (4), 269-278 (2002).
  13. Alom, R. S., Chen, C. S. Microcontact printing: A tool to pattern. Soft Matter. 3 (2), 168-177 (2007).
  14. Essö, C. Modifying Polydimethylsiloxane (PDMS) surfaces. Institutionen för biologi och kemiteknik. , (2007).
  15. Zhou, J., Ellis, A. V., Voelcker, N. H. Recent developments in PDMS surface modification for microfluidic devices. Electrophoresis. 31 (1), 2-16 (2010).
  16. Folch, A., Jo, B. H., Hurtado, O., Beebe, D. J., Toner, M. Microfabricated elastomeric stencils for micropatterning cell cultures. J Biomed Mater Res. 52 (2), 346-353 (2000).
  17. Yeo, W. S., Yousaf, M. N., Mrksich, M. Dynamic interfaces between cells and surfaces: electroactive substrates that sequentially release and attach cells. J Am Chem Soc. 125 (49), 14994-14995 (2003).
  18. Bhatia, S. N., Toner, M., Tompkins, R. G., Yarmush, M. L. Selective adhesion of hepatocytes on patterned surfaces. Ann N Y Acad Sci. 745, 187-209 (1994).
  19. Song, E., Kim, S. Y., Chun, T., Byun, H. -. J., Lee, Y. M. Collagen scaffolds derived from a marine source and their biocompatibility. Biomaterials. 27 (15), 2951-2961 (2006).
  20. Yamato, M., Konno, C., Utsumi, M., Kikuchi, A., Okano, T. Thermally responsive polymer-grafted surfaces facilitate patterned cell seeding and co-culture. Biomaterials. 23 (2), 561-567 (2002).
  21. Takayama, S., et al. Patterning cells and their environments using multiple laminar fluid flows in capillary networks. Proc Natl Acad Sci U S A. 96 (10), 5545-5548 (1999).
  22. Kim, D. S., Lee, K. -. C., Kwon, T. H., Lee, S. S. Micro-channel filling flow considering surface tension effect. J of Micromech Microeng. 12 (3), 236 (2002).
  23. Kim, E., Xia, Y., Whitesides, G. M. Micromolding in Capillaries: Applications in Materials Science. J Am Chem Soc. 118 (24), 5722-5731 (1996).
  24. Kim, E., Xia, Y. N., Whitesides, G. M. Polymer Microstructures Formed by Molding in Capillaries. Nature. 376 (6541), 581-584 (1995).
  25. Jeon, N. L., Choi, I. S., Xu, B., Whitesides, G. M. Large-area patterning by vacuum-assisted micromolding. Adv Mater. 11 (11), 946 (1999).
  26. Shrirao, A. B., et al. System and method for novel microfluidic device. US patent. , (2010).
  27. Merkel, T. C., Bondar, V. I., Nagai, K., Freeman, B. D., Pinnau, I. Gas sorption, diffusion, and permeation in poly(dimethylsiloxane). J Polym Sci Part B Polym Phys. 38 (3), 415-434 (2000).
  28. Shrirao, A. B., Hussain, A., Cho, C. H., Perez-Castillejos, R. Adhesive-tape soft lithography for patterning mammalian cells: application to wound-healing assays. Biotechniques. 53 (5), 315-318 (2012).
  29. Shrirao, A. B., Perez-Castillejos, R. Chips & tips: simple fabrication of microfluidic devices by replicating scotch-tape masters. Lab Chip. , (2010).
  30. Anil, B. S., Frank, H. K., Derek, Y., Cheul, H. C., Ellen, T. -. A. Vacuum-assisted fluid flow in microchannels to pattern substrates and cells. Biofabrication. 6 (3), 035016 (2014).
  31. Yuen, P. K., Goral, V. N. Low-cost rapid prototyping of flexible microfluidic devices using a desktop digital craft cutter. Lab on a Chip. 10 (3), 384-387 (2010).
  32. Wang, L., et al. Self-loading and cell culture in one layer microfluidic devices. Biomed Microdevices. 11 (3), 679-684 (2009).
  33. Feng, H., et al. Survival of mammalian cells under high vacuum condition for ion bombardment. Cryobiology. 49 (3), 241-249 (2004).
  34. Haubert, K., Drier, T., Beebe, D. PDMS bonding by means of a portable, low-cost corona system. Lab on a Chip. 6 (12), 1548-1549 (2006).
  35. Fan, D. -. H., Yuan, S. -. W., Shen, Y. -. M. Surface modification with BSA blocking based on in situ synthesized gold nanoparticles in poly (dimethylsiloxane) microchip. Colloids Surf, B. 75 (2), 608-611 (2010).
  36. Hideshima, S., Sato, R., Inoue, S., Kuroiwa, S., Osaka, T. Detection of tumor marker in blood serum using antibody-modified field effect transistor with optimized BSA blocking. Sens Actuator B-Chem. 161 (1), 146-150 (2012).
  37. Zheng, C., et al. High-throughput immunoassay through in-channel microfluidic patterning. Lab on a Chip. 12 (14), 2487-2490 (2012).
  38. MacLeish, P., Barnstable, C., Townes-Anderson, E. Use of a monoclonal antibody as a substrate for mature neurons in vitro. Procs Nat Acad of Sci. 80 (22), 7014-7018 (1983).
  39. Suchodolskis, A., et al. Elastic properties of chemically modified baker’s yeast cells studied by AFM. Surf Interface Anal. 43 (13), 1636-1640 (2011).
check_url/55513?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Shrirao, A. B., Kung, F. H., Yip, D., Firestein, B. L., Cho, C. H., Townes-Anderson, E. A Versatile Method of Patterning Proteins and Cells. J. Vis. Exp. (120), e55513, doi:10.3791/55513 (2017).

View Video