Summary

Kvantificering af abdominal pigmentering i<em> Drosophila melanogaster</em

Published: June 01, 2017
doi:

Summary

Dette arbejde præsenterer en metode til hurtigt og præcist at kvantificere abdominal pigmentering af Drosophila melanogaster ved hjælp af digital billedanalyse . Denne metode strømlinierer procedurerne mellem fænotypeindsamling og dataanalyse og omfatter prøvemontering, billedoptagelse, pixelværdisekstraktion og egenskabsmåling.

Abstract

Pigmentering er et morfologisk simpelt men meget variabelt træk, som ofte har adaptiv betydning. Det har tjent udbredt som en model til forståelse for udviklingen og udviklingen af ​​morfologiske fænotyper. Abdominal pigmentering i Drosophila melanogaster har været særlig nyttig, så forskere kan identificere de loci, der ligger til grund for inter- og intraspecifikke variationer i morfologi. Hidtil har D. melanogaster abdominale pigmentering i vid udstrækning blevet analyseret kvalitativt gennem scoring snarere end kvantitativt, hvilket begrænser formerne for statistisk analyse, som kan anvendes på pigmenteringsdata. Dette værk beskriver en ny metode, der muliggør kvantificering af forskellige aspekter af abdominal pigmenteringsmønster af voksen D. melanogaster . Protokollen omfatter prøvemontering, billedoptagelse, dataudvinding og analyse. Al den software, der bruges til makroer til billedoptagelse og analysefunktionerSkrevet til open source image analyse. Fordelen ved denne fremgangsmåde er evnen til præcist at måle pigmenteringskarakteristika ved anvendelse af en metode, der er stærkt reproducerbar på tværs af forskellige billeddannelsessystemer. Selv om teknikken er blevet brugt til at måle variation i tergalpigmenteringsmønstre af voksen D. melanogaster , er metoden fleksibel og bredt anvendelig på pigmenteringsmønstre i utallige forskellige organismer.

Introduction

Pigmentering viser enorm fænotypisk variation mellem arter, populationer og individer, og endog inden for enkeltpersoner under ontogeni 1 , 2 , 3 , 4 , 5 , 6 . Selv om der er utallige studier af pigmentering i en bred vifte af dyr, er pigmentering måske bedst studeret i Drosophila melanogaster , hvor den fulde kraft af molekylær genetik er blevet brugt til at belyse de udviklingsmæssige og fysiologiske mekanismer, som regulerer pigmentering og hvordan disse mekanismer udvikler sig 1 , 6 . Meget er kendt om generne der regulerer den biokemiske syntese af pigmenter i D. melanogaster 7 , 8 og generne der styrer den tidsmæssige og rumlige diFordeling af denne biosyntese 9 , 10 , 11 , 12 , 13 . Endvidere har genetisk kortlægning identificeret de genetiske lokaliteter, der ligger til grund for intra- og interspecifikke forskelle i pigmentering i D. melanogaster 14 , 15 , 16 , 17 . Sammenhængen mellem pigmentering og pleiotropiske træk, såsom adfærd 18 , 19 og immunitet 19 , 20 , er også blevet undersøgt, ligesom den adaptive betydning af pigmenteringsmønstre 15 , 21 , 22 . Som sådan er pigmentering i D. melanogaster fremkommet som en kraftfuld, men simpel mOdel for udvikling og udvikling af komplekse fænotyper.

Pigmentering i voksen D. melanogaster er karakteriseret ved forskellige melaniseringsmønstre over hele kroppen, især på vingerne og dorsale thorax og mave. Det er pigmenteringen af ​​hver kutikulær plade (tergit) på dorsalunderlivet, der dog har fået mest forskningsopmærksomhed. Der er betydelig variation i denne pigmentering ( figur 1A- F ) på grund af både genetiske 17 , 23 og miljø 24 , 25 faktorer. Kirtiklen af ​​en abdominal tergit består af forreste og bageste udviklingsrum ( figur 1G ), som hver især kan opdeles yderligere, afhængig af pigmentering og udsmykning 26 . Det forreste rum indeholder seks krydderierTyper (a1-a6), og det bageste rum indeholder tre (p1-p3) ( figur 1G ). Af disse foldes p1-, p2- og a1-kutiklen typisk under tergitten i ustrakte abdomener, så de er skjulte. Den pålideligt synlige kutikula er kendetegnet ved et band med tung pigmentering, heri omtalt som et "pigmentbånd", der består af kutikeltyper a4 (håret med moderat børstehår) og a5 (håret med store børster) med bandets bageste kant Mere intenst pigmenteret end den forreste kant ( figur 1G ). Foran for dette band er en region med let pigmenteret håret kutikula, som har børster bagtil (a3), men ikke anteriorly (a2). Variation i pigmentering mellem fluer observeres i både intensiteten af ​​pigmentering og i bredden af ​​pigmentbåndet. Generelt er variation størst i de mest bageste segmenter (mavesegmenterne 5, 6 og 7) og er lavere i de mere fremre segmenter (abdominal seGment 3 og 4) 24 . Derudover er der en seksuel dimorfisme i D. melanogaster pigmentering, hvor mænd generelt har fuldt pigmenteret femte og sjette buk tergitter ( figur 4C ).

I de fleste studier af abdominal pigmentering i D. melanogaster er pigmentering blevet behandlet som et kategorisk eller ordinært træk, idet mønsteret måles kvalitativt 27 , 28 , 29 eller semikvantitativt på en skala 14 , 15 , 16 , 17 , 24 , 30 31 , 32 , 33 , 34 , 3536 , 37 . Disse metoder har uundgåeligt en mangel på præcision, og fordi de er afhængige af den subjektive vurdering af pigmentering, er det svært at sammenligne dataene i tværs af undersøgelserne. Flere forfattere har kvantificeret de rumlige dimensioner af pigmentering 38 , 39 , intensiteten af ​​pigmentering af en bestemt kutikeltype 23 , 25 , 39 , 40 eller den gennemsnitlige intensitet af pigmentering over buk-tergitten som helhed 41 , 42 , 43 . Ikke desto mindre måler disse kvantificeringsmetoder ikke både intensiteten og den rumlige fordeling af abdominal pigmentering samtidigt og derfor ikke fanger nuancerne af, hvordan pigmentering varierer over abdOminal tergite. Desuden kræver adskillige af disse kvantificeringsmetoder 38 , 41 , 42 , 43 dissektionen og montering af abdominal cuticle. Dette er både tidskrævende og ødelægger prøven, hvilket gør den utilgængelig til yderligere morfologiske analyser. Da forståelsen af ​​udvikling og udvikling af abdominal pigmentering fordybes, vil mere sofistikerede værktøjer til hurtigt og præcist måle både rumlig fordeling og intensitet af pigmentering kræves.

Det overordnede mål med denne metode er at udnytte digital billedanalyse for at opnå en replikerbar og mere præcis måling af abdominal pigmentering i D. melanogaster . Metoden omfatter tre faser. For det første er den voksne flyve ikke destruktivt monteret, og et digitalt billede af dorsalunderlivet er taget. For det andet bruger brugeren en ImageJ-makroDefinerer en anterior-posterior stribe af pixels, der strækker sig fra forenden af ​​a2-cuticleen til den bageste af a5-kutikulaen (grøn boks, figur 1G ) på både det tredje og det fjerde abdominalsegment. Den gennemsnitlige pixelværdi på tværs af bredden af ​​denne strimmel ekstraheres derefter langs sin længdeakse, hvilket frembringer en profil, der fanger den rumlige fordeling og intensiteten af ​​pigmentering, når den ændrer sig fra den forreste til den bageste del af tergitten. For det tredje bruges et R-script til at beskrive pigmenteringsprofilen matematisk ved hjælp af en kubisk spline. R-scriptet anvender derefter spline og dets første og andet derivat til at ekstrahere bredden af ​​a2-a5-cuticleen, pigmentbåndets bredde og de maksimale og minimale pigmenteringsniveauer. Metoden kvantificerer derfor både de rumlige egenskaber og dybden af ​​abdominal pigmentering.

Denne metode kvantificerer pigmenteringen af ​​den tredje og fjerde abdominal tergit,Som har været i fokus for mange tidligere studier 1 , 15 , 23 , 24 , 25 , 28 , 33 , 39 , 42 , enten udelukkende eller i kombination med mere posterior tergitter. Selvom den er mindre variabel end den femte og den sekste abdominale tergitter, er den tredje og fjerde tergit ikke fuldstændigt pigmenteret hos mænd, så denne protokol kan anvendes til både mænd og kvinder. Ikke desto mindre, som vist her, kan protokollen anvendes til måling af pigmentering i femte og sjette buk tergitter hos kvinder. Endvidere bør mindre modifikationer af de skrifter, der anvendes til ekstraktion af pigmenteringsprofilens karakteristika, tillade, at metoden anvendes til at kvantificere variationen i pigmentering i en lang række andreorganismer.

Protocol

1. Prøvemontering BEMÆRK: Opbevar døde fluer i 70% ethanol i vand før billeddannelse. Hæld 10 ml 1,25% agar opløst i kogende vand i en 60 mm x 15 mm petriskål, og lad den indstille. Under et dissekeringsmikroskop skal du bruge et par fint punktpinde til at lave en ~ 20 mm ong, 2 mm bred, 1 mm dyb rille i gelens overflade. Ved hjælp af fine tang, indlejrer du den ventrale side af en voksenflyv i rillen med den dorsale side af fluen, der rager over gelen. BE…

Representative Results

Protokollen blev brugt til at undersøge virkningen af ​​opdrætstemperatur på abdominal pigmentering. Tidligere undersøgelser har vist, at en stigning i udviklingstemperaturen resulterer i et fald i spredningen af ​​abdominal pigmentering hos flere arter af Drosophila , herunder D. melanogaster 30 , 32 . Specifikt falder pigmentens omfang (bredden af ​​pigmentbåndet) i mave-tergitter 3 og 4 fra 1…

Discussion

Denne metode muliggør den præcise, hurtige og gentagelige opsamling af pigmenteringsdata i en kvantitativ form, som er egnet til flere downstream-analyser. Metoden er blevet brugt til at indhente data om effekten af ​​temperatur på abdominal pigmentering i en isogen fluevogn. Metoden kan dog anvendes i fremad genetik undersøgelser for at identificere gener, der ligger til grund for pigmenteringsforskelle mellem individer, populationer eller arter eller omvendte genetiske undersøgelser for at undersøge virkning…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev finansieret af National Science Foundation tildeler IOS-1256565 og IOS-1557638 til AWS. Vi takker Patricia Wittkopp og tre anonyme korrekturlæsere for deres nyttige kommentarer til en tidligere version af dette papir.

Materials

Dumont #5 Biology Forceps FST 11252-30
Agar Sigma-Aldrich 5040
Dissecting Scope Leica MZ16FA
Base Leica MDG41
Camera Leica DFC280
Gooseneck Cold Light Source Schott ACE 1
Image Acquisition Control Software Micro-Manager v1.3.20 https://micro-manager.org/
Image Analysis Software ImageJ https://imagej.nih.gov/ij/
Data Analysis Software R 3.3.2 https://www.r-project.org/
LED Thor Labs LEDWE-15
Multimeter Fluke Fluke 75 Series II
60 x 15 mm Petri dish Celltreat Scientific Products 229663
Stage micrometer Klarman Rulings, Inc. KR-867

References

  1. Wittkopp, P. J., Beldade, P. Development and evolution of insect pigmentation: Genetic mechanisms and the potential consequences of pleiotropy. Semin. Cell Dev. Biol. 20 (1), 65-71 (2009).
  2. Lindgren, J. Interpreting melanin-based coloration through deep time: a critical review. Proc Roy Soc B-Biol Sci. 282 (1813), (2015).
  3. Kronforst, M. R., Papa, R. The Functional Basis of Wing Patterning in Heliconius Butterflies: The Molecules Behind Mimicry. Genetics. 200 (1), 1-19 (2015).
  4. Albert, N. W., Davies, K. M., Schwinn, K. E. Gene regulation networks generate diverse pigmentation patterns in plants. Plant Signal Behav. 9, e29526 (2014).
  5. Monteiro, A. Origin, development, and evolution of butterfly eyespots. Annu Rev Entomol. 60, 253-271 (2015).
  6. Kronforst, M. R. Unraveling the thread of nature’s tapestry: the genetics of diversity and convergence in animal pigmentation. Pigm Cell Melanoma Res. 25 (4), 411-433 (2012).
  7. Wright, T. R. The genetics of biogenic amine metabolism, sclerotization, and melanization in Drosophila melanogaster. Adv Genet. 24, 127-222 (1987).
  8. True, J. R. Insect melanism: the molecules matter. TREE. 18 (12), 640-647 (2003).
  9. Kopp, A., Duncan, I. Control of cell fate and polarity in the adult abdominal segments of Drosophila by optomotor-blind. Development. 124 (19), 3715-3726 (1997).
  10. Kopp, A., Muskavitch, M. A., Duncan, I. The roles of hedgehog and engrailed in patterning adult abdominal segments of Drosophila. Development. 124 (19), 3703-3714 (1997).
  11. Kopp, A., Blackman, R. K., Duncan, I. Wingless, decapentaplegic and EGF receptor signaling pathways interact to specify dorso-ventral pattern in the adult abdomen of Drosophila. Development. 126 (16), 3495-3507 (1999).
  12. Kopp, A., Duncan, I., Godt, D., Carroll, S. B. Genetic control and evolution of sexually dimorphic characters in Drosophila. Nature. 408 (6812), 553-559 (2000).
  13. Williams, T. M. The regulation and evolution of a genetic switch controlling sexually dimorphic traits in Drosophila. Cell. 134 (4), 610-623 (2008).
  14. Wittkopp, P. J., Williams, B. L., Selegue, J. E., Carroll, S. B. Drosophila pigmentation evolution: divergent genotypes underlying convergent phenotypes. Proc Natl Acad Sci Usa. 100 (4), 1808-1813 (2003).
  15. Brisson, J. A., De Toni, D. C., Duncan, I., Templeton, A. R. Abdominal pigmentation variation in drosophila polymorpha: geographic variation in the trait, and underlying phylogeography. Evolution. 59 (5), 1046-1059 (2005).
  16. Brisson, J. A., Templeton, A. R., Duncan, I. Population genetics of the developmental gene optomotor-blind (omb) in Drosophila polymorpha: evidence for a role in abdominal pigmentation variation. Genetics. 168 (4), 1999-2010 (2004).
  17. Dembeck, L. M. Genetic Architecture of Abdominal Pigmentation in Drosophila melanogaster. PLoS Genet. 11 (5), e1005163 (2015).
  18. Drapeau, M. D., Radovic, A., Wittkopp, P. J., Long, A. D. A gene necessary for normal male courtship, yellow, acts downstream of fruitless in the Drosophila melanogaster larval brain. J Neurobiol. 55 (1), 53-72 (2003).
  19. Hodgetts, R. B., O’Keefe, S. L. Dopa decarboxylase: a model gene-enzyme system for studying development, behavior, and systematics. Annu Rev Entomol. 51, 259-284 (2006).
  20. Marmaras, V. J., Charalambidis, N. D., Zervas, C. G. Immune response in insects: the role of phenoloxidase in defense reactions in relation to melanization and sclerotization. Arch Insect Biochem Physiol. 31 (2), 119-133 (1996).
  21. Kalmus, H. The Resistance to Desiccation of Drosophila Mutants Affecting Body Colour. Proc Roy Soc London B. 130 (859), 185-201 (1941).
  22. Rajpurohit, S., Gibbs, A. G. Selection for abdominal tergite pigmentation and correlated responses in the trident: a case study in Drosophila melanogaster. Biol J Linn Soc. 106 (2), 287-294 (2012).
  23. Pool, J. E., Aquadro, C. F. The genetic basis of adaptive pigmentation variation in Drosophila melanogaster. Mol Ecol. 16 (14), 2844-2851 (2007).
  24. Gibert, P., Moreteau, B., David, J. R. Developmental constraints on an adaptive plasticity: reaction norms of pigmentation in adult segments of Drosophila melanogaster. Evol Dev. 2 (5), 249-260 (2000).
  25. Shakhmantsir, I., Massad, N. L., Kennell, J. A. Regulation of cuticle pigmentation in drosophila by the nutrient sensing insulin and TOR signaling pathways. Dev Dyn. 243 (3), 393-401 (2014).
  26. Struhl, G., Barbash, D. A., Lawrence, P. A. Hedgehog organises the pattern and polarity of epidermal cells in the Drosophila abdomen. Development. 124 (11), 2143-2154 (1997).
  27. Jeong, S., Rokas, A., Carroll, S. B. Regulation of body pigmentation by the Abdominal-B Hox protein and its gain and loss in Drosophila evolution. Cell. 125 (7), 1387-1399 (2006).
  28. Wittkopp, P. J., True, J. R., Carroll, S. B. Reciprocal functions of the Drosophila yellow and ebony proteins in the development and evolution of pigment patterns. Development. 129 (8), 1849-1858 (2002).
  29. True, J. R. Drosophila tan encodes a novel hydrolase required in pigmentation and vision. PLoS Genet. 1 (5), e63 (2005).
  30. David, J. R., Capy, P., Gauthier, J. P. Abdominal pigmentation and growth temperature in Drosophila melanogaster: Similarities and differences in the norms of reaction of successive segments. J Evol Biol. 3 (5-6), (1990).
  31. Gibert, J. M., Peronnet, F., Schlotterer, C. Phenotypic plasticity in Drosophila pigmentation caused by temperature sensitivity of a chromatin regulator network . PLoS Genet. 3 (2), e30 (2007).
  32. Gibert, P., Moreteau, B., Scheiner, S. M. Phenotypic plasticity of body pigmentation in Drosophila: correlated variations between segments. Genet Sel Evol. 30 (2), 181 (1998).
  33. Matute, D. R., Harris, A. The influence of abdominal pigmentation on desiccation and ultraviolet resistance in two species of Drosophila. Evolution. 67 (8), 2451-2460 (2013).
  34. Das, A., Mohanty, S., Parida, B. Abdominal pigmentation and growth temperature in Indian Drosophila melanogaster: Evidence for genotype-environment interaction. J Biosci. 19 (2), 267-275 (1994).
  35. Hollocher, H., Hatcher, J. L., Dyreson, E. G. Evolution of abdominal pigmentation differences across species in the Drosophila dunni subgroup. Evolution. 54 (6), 2046-2056 (2000).
  36. Gibert, P., Moreteau, B., David, J. R. Phenotypic plasticity of body pigmentation in Drosophila melanogaster: genetic repeatability of quantitative parameters in two successive generations. Heredity. 92 (6), 499-507 (2004).
  37. Carbone, M. A., Llopart, A., deAngelis, M., Coyne, J. A., Mackay, T. F. Quantitative trait loci affecting the difference in pigmentation between Drosophila yakuba and D. santomea. Genetics. 171, 211-225 (2005).
  38. Kopp, A., Graze, R. M., Xu, S., Carroll, S. B., Nuzhdin, S. V. Quantitative trait loci responsible for variation in sexually dimorphic traits in Drosophila melanogaster. Genetics. 163 (2), 771-787 (2003).
  39. Bastide, H., Yassin, A., Johanning, E. J., Pool, J. E. Pigmentation in Drosophila melanogaster reaches its maximum in Ethiopia and correlates most strongly with ultra-violet radiation in sub-Saharan Africa. BMC Evol Biol. 14, 179 (2014).
  40. Rebeiz, M., Pool, J. E., Kassner, V. A., Aquadro, C. F., Carroll, S. B. Stepwise modification of a modular enhancer underlies adaptation in a Drosophila population. Science. 326 (5960), 1663-1667 (2009).
  41. John, A. V., Sramkoski, L. L., Walker, E. A., Cooley, A. M., Wittkopp, P. J. Sensitivity of Allelic Divergence to Genomic Position: Lessons from the Drosophila tan Gene. G3. 6 (9), 2955-2962 (2016).
  42. Wittkopp, P. J. Local adaptation for body color in Drosophila americana. Heredity. 106 (4), 592-602 (2011).
  43. Wittkopp, P. J. Intraspecific polymorphism to interspecific divergence: genetics of pigmentation in Drosophila. Science. 326 (5952), 540-544 (2009).
  44. Edelstein, A. D. Advanced methods of microscope control using µManager software. Journal of Biological Methods. 1 (2), e10 (2014).
  45. . ImageJ v.1.50i Available from: https://imagej.nih.gov/ij/ (2016)
  46. Mims, F. M. How to Use LEDs to Detect Light. Make:. 36, 136-138 (2013).
  47. R: Language and Environment for Statistical Computing v.3.3.2. R Foundation for Statistical Computing Available from: https://www.r-project.org/ (2016)
  48. Bates, D., Machler, M., Bolker, B. M., Walker, S. C. Fitting Linear Mixed-Effects Models Using lme4. Journal of Statistical Software. 67 (1), 1-48 (2015).
  49. Shingleton, A. W., Estep, C. M., Driscoll, M. V., Dworkin, I. Many ways to be small: different environmental regulators of size generate distinct scaling relationships in Drosophila melanogaster. Proc Roy Soc Lond B Biol Sci. 276 (1667), 2625-2633 (2009).
  50. French, V., Feast, M., Partridge, L. Body size and cell size in Drosophila: the developmental response to temperature. J Insect Physiol. 44 (11), 1081-1089 (1998).
  51. Houle, D., Govindaraju, D. R., Omholt, S. Phenomics: the next challenge. Nat Rev Genet. 11 (12), 855-866 (2010).
  52. Kültz, D. New frontiers for organismal biology. BioSci. 63 (6), 464-471 (2013).
check_url/55732?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Saleh Ziabari, O., Shingleton, A. W. Quantifying Abdominal Pigmentation in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (124), e55732, doi:10.3791/55732 (2017).

View Video