Summary

זמן לשגות Confocal הדמיה של נוירונים נודדים תרבות פרוסה Organotypic של המוח עכבר עובריים באמצעות<em> באוטרו</em> Electroporation

Published: July 25, 2017
doi:

Summary

פרוטוקול זה מספק הוראות תצפית ישירה של נוירונים קליפת המוח נודדת. ב electroporation ברחם , תרבות פרוסות organotypic, הדמיה confocal זמן לשגות משולבים ישירות באופן דינמי ללמוד את ההשפעות של overexpression או downregulation של גנים של עניין נודדים נודדות ולנתח את ההבחנה שלהם במהלך הפיתוח.

Abstract

ב electroporation ברחם היא גישה מהירה ורבת עוצמה ללמוד את תהליך ההגירה רדיאלי בקליפת המוח של פיתוח עוברי העכבר. זה עזר לתאר את השלבים השונים של הגירה רדיאלי ולאפיין את המנגנונים המולקולריים השולטים בתהליך זה. כדי לנתח באופן דינמי באופן דינמי נוירונים נודדים הם צריכים להיות עקבות לאורך זמן. פרוטוקול זה מתאר זרימת עבודה המשלבת electroporation ברחם עם תרבות פרוסות organotypic זמן הדמיה confocal confocal, המאפשר בדיקה ישירה וניתוח דינמי של נוירונים קליפתיים נודדים. יתר על כן, אפיון מפורט של נוירונים נודדים, כגון מהירות הגירה, פרופילים מהירות, כמו גם שינויים אוריינטציה רדיאלי, אפשרי. השיטה יכולה בקלות להיות מותאמת לבצע ניתוחים פונקציונליים של גנים של עניין נוירונים קליפת המוח נודדים רדיאלי ידי הפסד ורווח של פונקציה, כמו גם ניסויים הצלה. זמן לשגותהדמיה של נוירונים נודדים היא טכניקה המדינה- of-the-art שפעם הוקמה הוא כלי רב עוצמה כדי לחקור את הפיתוח של קליפת המוח במודלים העכבר של הפרעות הגירה עצביים.

Introduction

הניאוקורטקס הוא האתר המרכזי של תפקודים קוגניטיביים, רגשיים וסנסוריים-מוטוריים. הוא מורכב משש שכבות אופקיות המכוונות במקביל אל פני השטח של המוח. במהלך התפתחות תאים אב בקיר לרוחב של telencephalon הגבי לעורר נוירונים הקרנה כי נודדים באופן רדיאלי לעבר פני השטח pial ולרכוש שכבת סוג ספציפי נוירונים זהות. לאחר שנוצר באזורים חד חדרית / subventricular (VZ / SVZ) נוירונים אלה הופכים רב קוטביים transiently ו להאט את ההגירה שלהם. לאחר שהייה קצרה באזור הביניים (IZ) הם עוברים למורפולוגיה דו קוטבית, נצמדים לגרדום הגליה הרדיאלי, וממשיכים בהגירה מכוונת רדיאלית לצלחת הקליפתית (CP). כאשר מגיעים היעד הסופי שלהם נוירונים הקרנה לנתק מן התהליכים גליה רדיאלי לרכוש זהות ספציפית שכבת. מוטציות בגנים המשפיעות על שלבים שונים של הגירה נוירונים יכולים לגרום למום קליפת המוח חמורה, כגון lissencEphaly או חומר לבן heterotopia 1 , 2 .

ב electroporation ברחם היא טכניקה מהירה וחזקה transfect תאים עצביים עצביים במוח המתפתח של עוברי מכרסם 3 , 4 . בעזרת טכניקה זו ניתן מציאה ו / או overexpress גנים של עניין על מנת ללמוד את הפונקציות שלהם בפיתוח נוירונים. שיטה זו סייעה במיוחד לתאר את הפרטים המורפולוגיים ולאפיין את המנגנונים המולקולריים של תהליך ההגירה הרדיאלית 5 , 6 , 7 , 8 , 9 . נוירונים נודדים באופן קיצוני עוברים שינויים דינאמיים בצורת התא, מהירות ההגירה, וכן כיוון הנדידה, הדורשים תצפית ישירה ורציפה לאורך זמן. אורגנוטיפ פרוסה cultuמחדש זמן לשגות confocal הדמיה של המוח electroporated לאפשר לצפות ישירות נוירונים נודדים לאורך זמן. באמצעות גישה זו בשילוב, ניתן לנתח תכונות שונות של נוירונים נודדים כי לא ניתן לחקור בקטעי רקמה קבועה של המוח electroporated.

לאחרונה החלת הדמיה confocal זמן לשגות של נוירונים נודדים בתרבויות פרוסה של המוח electroporated ללמוד את התפקיד של גורם שעתוק B תא CLL / לימפומה 11a (Bcl11a) במהלך פיתוח קליפת המוח 10 . Bcl11a מתבטאת נוירונים בקליפת המוח נודדים צעירים והשתמשנו אלל Bcl11a מוטציה מותנה ( Bcl11a flox ) 11 ללמוד את תפקידיו. Electroporation של recombinase Cre יחד עם חלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP) לתוך אבות קליפת המוח של המוח Bcl11a flox / flox מותר לנו ליצור מצב מוטציה פסיפס, שבו רק תאים מעטים הם מוטציה באחרת wild-type רקע. בדרך זו, ניתן היה ללמוד תאים אוטונומיים פונקציות של Bcl11a ברמת התא בודד. מצאנו כי Bcl11a נוירונים מוטציה להציג מהירות מופחתת, שינויים פרופילים מהירות שלהם, כמו גם שינויים בכיוון אקראי במהלך המעבר שלהם 10 . בפרוטוקול המתואר אנו מתארים זרימת עבודה עבור electroporation מוצלח פרוסה הכנה תרבות 12 של המוח עכבר, כמו גם זמן לשגות הדמיה confocal של תרבויות פרוסה קליפת המוח.

Protocol

כל הניסויים הניסויים אושרו על ידי ועדת רווחת בעלי חיים (Regierungspräsidium Tübingen) ו בוצעו על פי חוק בעלי חיים הגרמני הרווחה ואת הדירקטיבה של האיחוד האירופי 2010/63 / האיחוד האירופי. 1. ב Electrooration Utero <li style=";text-al…

Representative Results

בעבר, הראינו כי מחיקת גנטית של Bcl11a על ידי electroporation ברחם פוגעת הגירה רדיאלי של נוירונים הקרנה העליונה שכבת הישרדות 10 . Electroporation של דנ"א פלסמיד וקטור המכיל Cre-IRES-GFP נמחק ביעילות Bcl11a מותנה Bcl11a פלוקס / המוח פל…

Discussion

הגירה רדיאלית היא תהליך מפתח בפיתוח הניאוקורטקס. מוטציות בגנים המשפיעים על שלבים שונים של תהליך זה יכולים לגרום מומים קשים בקליפת המוח, כולל lissencephaly ו heterotopia חומר לבן 1 , 2 . לאחרונה הראינו כי Bcl11a, אשר באה לידי ביטוי צעירים נודד נוירונים ק…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים לז 'אקלין Andratschke, אלנה Werle, Sachi Takenaka, ו Matthias Tober עבור סיוע טכני מעולה, כמו גם ויקטור Tarabykin לדיונים מועילים. עבודה זו נתמכה על ידי מענק של דויטשה Forschungsgemeinschaft כדי SB (BR-2215).

Materials

isoflurane Abbott Laboratories  506949 Forene
6-well plate Corning 351146
12-well plate Corning 351143
non-absorbable surgical suture Ethicon K890H 3/8 circle, 13 mm, taper point
Micro Adson Forceps Fine Science Tools 11018-12 serrated, length: 12 cm
fine scissors Fine Science Tools 14063-09 angled to side, length: 9 cm
Mathieu Needle Holder Fine Science Tools 12510-14 tungsten carbide, length: 14 cm
fine tipped forceps Fine Science Tools 11370-40 straight, 11 cm
Vannas Tübingen Spring Scissors Fine Science Tools 15005-08 angled up, 9.5 cm
ring forceps Fine Science Tools 11103-09 OD: 3mm, ID, 2.2 mm, length: 9 cm
HBSS (10X) Gibco 14180046
L-Glutamine Gibco 25030081
Penicillin/Streptomycin Gibco 15140122
horse serum Gibco 26050088
BME Gibco 41010026
borosilicate glass capillaries Harvard Apparatus 30-0016 1.0 OD x 0.58 ID x 100 L mm
anesthsesia system Harvard Apparaus 72-6471
anesthetizing chamber Harvard Apparaus 34-0460
fluosorber filter canister Harvard Apparaus 34-0415
low melting point agarose Invitrogen 16520100
vibrating blade microtome Leica VT1200 S
fluorescence stereo microscope Leica M205 FA
stereo microscope Leica M125
inverted fluorescence tissue culture microscope Leica DM IL LED
confocal laser scanning microscope Leica TCS SP5II
hybrid detector Leica HyD
objective, 40x/0.60 NA Leica 11506201
microscope temperature control system Life Imaging Services Cube, Brick & Box
cell culture insert Millipore PICM0RG50
microgrinder Narishige EG-45 use 38° angle for beveling
microinjector Parker Hannifin  052-0500-900 Picospritzer III
carprofen Pfizer Animal Health NDC 61106-8507 Rimadyl
emdedding mold Polysciences 18986-1
endotoxin-free plasmid maxi kit Qiagen 12362
fast green Sigma F7252
laminin Sigma L2020
poly-L-lysine Sigma P5899
HEPES Sigma H4034
D-glucose Sigma G6152
calcium chloride Sigma C7902
magensium sulfate Sigma M2643
sodium bicarbonate Sigma S6297
square wave electroporator Sonidel CUY21EDIT
tweezers with 5 mm platinum disk electrodes Sonidel CUY650P5
micropipette puller Sutter Instrument P-97
box filament Sutter Instrument FB255B 2.5 mm x 2.5 mm
micro-spoon spatula VWR 231-0191 185 mm x 5 mm
glass bottom dish, 50 mm World Precision Instruments FD5040-100

References

  1. Evsyukova, I., Plestant, C., Anton, E. S. Integrative mechanisms of oriented neuronal migration in the developing brain. Annu Rev Cell Dev Biol. 29, 299-353 (2013).
  2. Kwan, K. Y., Sestan, N., Anton, E. S. Transcriptional co-regulation of neuronal migration and laminar identity in the neocortex. Development. 139 (9), 1535-1546 (2012).
  3. Saito, T., Nakatsuji, N. Efficient gene transfer into the embryonic mouse brain using in vivo electroporation. Dev Biol. 240 (1), 237-246 (2001).
  4. Tabata, H., Nakajima, K. Efficient in utero gene transfer system to the developing mouse brain using electroporation: visualization of neuronal migration in the developing cortex. Neuroscience. 103 (4), 865-872 (2001).
  5. LoTurco, J. J., Bai, J. The multipolar stage and disruptions in neuronal migration. Trends Neurosci. 29 (7), 407-413 (2006).
  6. Noctor, S. C., Martinez-Cerdeno, V., Ivic, L., Kriegstein, A. R. Cortical neurons arise in symmetric and asymmetric division zones and migrate through specific phases. Nat Neurosci. 7 (2), 136-144 (2004).
  7. Tabata, H., Nakajima, K. Multipolar migration: the third mode of radial neuronal migration in the developing cerebral cortex. J Neurosci. 23 (31), 9996-10001 (2003).
  8. Pacary, E., et al. Proneural transcription factors regulate different steps of cortical neuron migration through Rnd-mediated inhibition of RhoA signaling. Neuron. 69 (6), 1069-1084 (2011).
  9. Tabata, H., Nagata, K. Decoding the molecular mechanisms of neuronal migration using in utero electroporation. Medical Molecular Morphology. 49 (2), 63-75 (2016).
  10. Wiegreffe, C., et al. Bcl11a (Ctip1) Controls Migration of Cortical Projection Neurons through Regulation of Sema3c. Neuron. 87 (2), 311-325 (2015).
  11. John, A., et al. Bcl11a is required for neuronal morphogenesis and sensory circuit formation in dorsal spinal cord development. Development. 139 (10), 1831-1841 (2012).
  12. Polleux, F., Ghosh, A. The slice overlay assay: a versatile tool to study the influence of extracellular signals on neuronal development. Sci STKE. (136), pl9 (2002).
  13. Greig, L. C., Woodworth, M. B., Galazo, M. J., Padmanabhan, H., Macklis, J. D. Molecular logic of neocortical projection neuron specification, development and diversity. Nat Rev Neurosci. 14 (11), 755-769 (2013).
  14. De Marco Garcia, N. V., Fishell, G. Subtype-selective electroporation of cortical interneurons. J Vis Exp. (90), e51518 (2014).
  15. Holubowska, A., Mukherjee, C., Vadhvani, M., Stegmuller, J. Genetic manipulation of cerebellar granule neurons in vitro and in vivo to study neuronal morphology and migration. J Vis Exp. (85), (2014).
  16. Venkataramanappa, S., Simon, R., Britsch, S. Ex utero electroporation and organotypic slice culture of mouse hippocampal tissue. J Vis Exp. (97), (2015).
  17. Simon, R., et al. A dual function of Bcl11b/Ctip2 in hippocampal neurogenesis. EMBO J. 31 (13), 2922-2936 (2012).
  18. Youn, Y. H., Pramparo, T., Hirotsune, S., Wynshaw-Boris, A. Distinct dose-dependent cortical neuronal migration and neurite extension defects in Lis1 and Ndel1 mutant mice. J Neurosci. 29 (49), 15520-15530 (2009).
  19. Nadarajah, B., Brunstrom, J. E., Grutzendler, J., Wong, R. O., Pearlman, A. L. Two modes of radial migration in early development of the cerebral cortex. Nat Neurosci. 4 (2), 143-150 (2001).
  20. Higginbotham, H., Yokota, Y., Anton, E. S. Strategies for analyzing neuronal progenitor development and neuronal migration in the developing cerebral cortex. Cereb Cortex. 21 (7), 1465-1474 (2011).
  21. Stubbs, D., et al. Neurovascular congruence during cerebral cortical development. Cereb Cortex. 19, i32-i41 (2009).
  22. Ayala, R., Shu, T., Tsai, L. H. Trekking across the brain: the journey of neuronal migration. Cell. 128 (1), 29-43 (2007).
  23. Humpel, C. Organotypic brain slice cultures: A review. Neuroscience. 305, 86-98 (2015).
check_url/55886?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wiegreffe, C., Feldmann, S., Gaessler, S., Britsch, S. Time-lapse Confocal Imaging of Migrating Neurons in Organotypic Slice Culture of Embryonic Mouse Brain Using In Utero Electroporation. J. Vis. Exp. (125), e55886, doi:10.3791/55886 (2017).

View Video