Summary

Identifiering av kvarvarande givare erytroid stamceller efter hematopoetisk stamcellstransplantation för patienter med Hemoglobinopathies

Published: September 06, 2017
doi:

Summary

Kvantifiering av givare-derived celler krävs för att övervaka engraftment efter stamcellstransplantation hos patienter med hemoglobinopathies. En kombination av flow flödescytometri-baserade cell sortering, koloni bildandet assay och efterföljande analys av kort tandem repetitioner kan användas för att bedöma spridning och differentiering av stamfäder i erytroid facket.

Abstract

Förekomsten av ofullständig chimärism noteras i en stor andel av patienter efter benmärgstransplantation för thalassemi större eller sicklecellanemi. Denna observation har oerhörda konsekvenser, som efterföljande terapeutiska immunmodulering strategier kan förbättra kliniska resultat. Konventionellt, används polymerasen kedjar reaktion-baserad analys av short tandemupprepningar för att identifiera chimärism givare-derived blodkroppar. Men denna metod är begränsad till kärnförsedda celler och inte kan skilja mellan dissocierade encelliga härstamningar. Vi tillämpade analys av short tandemupprepningar flöda flödescytometrisk-sorterade hematopoetiska stamceller och jämfört detta med analysen av short tandemupprepningar som erhållits från utvalda burst-forming unit – erytroid kolonier, och båda samlas in från benet märg. Med denna metod kan vi demonstrera olika proliferation och differentiering av givare celler i erytroid facket. Denna teknik är berättigad att slutföra nuvarande övervakning av chimärism i den stamcellstransplantation inställning och kan således vara tillämpad i framtiden kliniska studier, stamcellsforskning och design av genterapeutiska prövningar.

Introduction

Allogen hematopoetisk stamcellstransplantation (HSCT) är endast tillgängliga läkande metod för en mängd olika medfödda genetiska störningar i det hematopoetiska systemet, att uppnå sjukdomsfri överlevnad på mer än 90% för annars mycket äventyras och begränsad livslängd patienter1. Effekten av detta viktiga terapeutiska verktyg har optimerats genom att begränsa toxiciteten av pre- och efter transplantation regimer2, men också genom insatser som syftar till att upprätthålla stabil transplantatfunktion, som kvantifieras genom noggrann övervakning av givare-derived celler3,4,5.

I allmänhet, innebär komplett chimärism (CC) total ersättning av lymphohematopoietic facket av givare-derived celler, medan begreppet mixed chimärism (MC) används när givare – och mottagare-härledda celler förekommer samtidigt i olika proportioner. Split chimärism (SC) betecknar samexistens av mixed chimärism hos encelliga härstamningar, såsom i erytroid facket. Snabb bestämning av chimärism status efter HSCT är kritisk, eftersom det kan bidra till att identifiera patienter som är mottagliga för återfall och inleda efterföljande immunmodulerande strategier, såsom donator lymfocyt infusioner eller minskning av immunsuppressiva terapier6.

Flera metoder har utvecklats för att övervaka engraftment efter HSCT. Isotyping av immunglobuliner och analys av cytogenetik har dålig känslighet och är begränsad i sin förmåga att upptäcka polymorfism7,8. Införandet av fluorescerande i situ hybridisering (FISH) kan förbättra känsligheten i chimärism övervakning efter HSCT, men är begränsad till sex-felaktigt organtransplantationer9. För närvarande, polymeras-kedjereaktion (PCR) är den mest utbredda metoden som används för att upptäcka chimärism och bygger på konventionell agaros-akrylamid gelelektrofores av variabeln antal tandemupprepningar (VNTRs) eller kort tandem upprepas (misstänkta). Rutinmässigt används är kvantitativa PCR kunna upptäcka en extremt liten andel av kvarvarande donatorcellerna efter HSCT. Den största begränsningen av studierna hittills är att MC upptäckt är nästan uteslutande begränsad till närvaro av kärnförsedda celler, i stället för mogna erytrocyter, nämligen celler att är funktionellt avgörande för patienter drabbade av hemoglobinopathies. Hos patienter med olika blodgrupper är det värt att komma ihåg att cytofluorometric analys är att identifiera chimärism röda blodkroppar genom att utnyttja monoklonala antikroppar riktade mot erytrocyt antigenerna ABO och C, c, D, E och e10 , 11. ett annorlunda, men mycket intressant sätt att bedöma chimärism i erytroid släktlinje är kombinationen av flöde flödescytometrisk sortering av erytroid stamfäder och val av olika erytroid stamceller typer av odling i clonogenic analyser, följt av analys av STR12. Detta tillvägagångssätt är kunna kvantifiera relativa andelar av givare-kontra-mottagare chimärism i erytroid facket och kan utnyttjas i strategin för att upprätthålla benmärgen graften.

Protocol

1. isolering av hematopoetiska benmärgsceller av multi-parameter fluorescens-aktiverad Cell sortering prov färgning innan processen startar, följande objekt måste samlas och förberedd: Gradient media för beredning av mononukleära celler (GM), 50 mL koniska rör 12 x 75 mm flöde rör för färgning celler färgningen buffert: fosfatbuffrad saltlösning (PBS) + 3% fetalt kalvserum (FCS) pipetter FC block och färgning antikroppar…

Representative Results

Separation av lymphohematopoietic stamfäder FACS cellen sortera Här visar vi resultat från sortering av nödvändiga cellpopulationer för nedströms STR analys. Benmärgsceller var fläckade V450-konjugerad anti-CD45, FITC-konjugerad anti-CD36 och APC-konjugerad anti-CD34. Befolkningen av intresse är de megakaryocyt erytroid stamfäder (MEP), nucleated cellerna som ansvarar för utvecklingen av erytrocyter….

Discussion

Syftet med den aktuella studien är att ge publiken en kombination av två metoder för analysera givare/mottagare chimärism i erytroid föräldraparets efter HSCT hos patienter som behandlas för hemoglobinopathies: 1.) fluorescens-aktiverad cell sortering av hematopoetiska stamceller i benmärgen prov följt av analys av short tandemupprepningar och 2.) kolonibildande enhet växer av benmärgsceller, klassificering av kolonier i olika stamceller följt av analys av short tandemupprepningar. Nyhet i denna strategi ligg…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöds av den Kinderkrebshilfe Regenbogen Südtirol.

Materials

Ficoll-Paque GE Healthcare GE17-1440-02  Remove RBC
50 mL conical tubes Falcon 14-432-22 Sample preparation
12 x 75 mm flow tubes Falcon 352002 FACS sorting
Phosphate buffered saline Gibco 10010023 PBS
Fetal calf serum Invitrogen Inc. 16000-044 FCS (heat-inactivated)
CD34 APC BD Bioscience 561209 FACS-Ab
CD36 FITC BD Bioscience 555454 FACS-Ab
CD45 V450 BD Bioscience 642275 FACS-Ab
Trypan blue Gibco 15250061
Hemocytometer Invitrogen Inc. C10227 Automatic cell counting
Hank’s Balanced Salt Solution Gibco 14025092 Suspension buffer in FACS analysis
HEPES Gibco 15630080 Component of suspension buffer
FcR BD Bioscience 564220 Block FCR
FACS Aria I BD Bioscience 23-11539-00 FACS Sorter
Recombinant  human erythropoietin Affimetrix eBioscience 14-8992-80 EPO
Isocove’s Modified Dulbecco’s Medium Gibco 12440053 IMDM
L-Glutamine Invitrogen 25030-081 Component of Culture Medium
CD34+ magnetic beads Milteny Biotech 130-046-702 CD34+ purification
Recombinant  human G-CSF Gibco PHC2031 CFU-Assay
Recombinant  human SCF Gibco CTP2113 CFU-Assay
Recombinant  human GM-CSF Gibco PHC2015 CFU-Assay
Recombinant  human IL-3 BD Bioscience 554604 CFU-Assay
Recombinant  human IL-6 BD Bioscience 550071 CFU-Assay
Methocult H4434 Medium Stemcell Technologies 4444 CFU-Assay
QiAmp DNA Blood extraction kit Qiagen 51306 DNA Isolation
Nanodrop ND-1000 spectra photometer Thermo Scientific ND 1000 DNA Quantification
DNAase free H2O Thermo Scientific FEREN0521 DNA Preparation
AmplTaq Gold DNA Polymerase Applied Bioscience N8080240 PCR
Eppendorf mastercycler gradient Eppendorf 6321000019 PCR 
Hi-Di Formamid Applied Bioscience 4311320 PCR
GeneScan 500 ROX Size Standard Applied Bioscience 4310361 PCR
3130 Genetic Analyzer Applied Bioscience 313001R PCR

References

  1. Angelucci, E., et al. Hematopoietic stem cell transplantation in thalassemia major and sickle cell disease: indications and management recommendations from an international expert panel. Haematologica. 99, 811-820 (2014).
  2. Lucarelli, G., Isgro, A., Sodani, P., Gaziev, J. Hematopoietic stem cell transplantation in thalassemia and sickle cell anemia. Cold Spring Harb Perspect Med. 2, a011825 (2012).
  3. Andreani, M., Testi, M., Lucarelli, G. Mixed chimerism in haemoglobinopathies: from risk of graft rejection to immune tolerance. Tissue Antigens. 83, 137-146 (2014).
  4. Andreani, M., et al. Persistence of mixed chimerism in patients transplanted for the treatment of thalassemia. Blood. 87, 3494-3499 (1996).
  5. Andreani, M., et al. Long-term survival of ex-thalassemic patients with persistent mixed chimerism after bone marrow transplantation. Bone Marrow Transplant. 25, 401-404 (2000).
  6. Kumar, A. J., et al. Pilot study of prophylactic ex vivo costimulated donor leukocyte infusion after reduced-intensity conditioned allogeneic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 19, 1094-1101 (2013).
  7. Lawler, S. D., Harris, H., Millar, J., Barrett, A., Powles, R. L. Cytogenetic follow-up studies of recipients of T-cell depleted allogeneic bone marrow. Br J Haematol. 65, 143-150 (1987).
  8. McCann, S. R., Crampe, M., Molloy, K., Lawler, M. Hemopoietic chimerism following stem cell transplantation. Transfus Apher Sci. 32, 55-61 (2005).
  9. Dewald, G., et al. A multicenter investigation with interphase fluorescence in situ hybridization using X- and Y-chromosome probes. Am J Med Genet. 76, 318-326 (1998).
  10. Andreani, M., et al. Quantitatively different red cell/nucleated cell chimerism in patients with long-term, persistent hematopoietic mixed chimerism after bone marrow transplantation for thalassemia major or sickle cell disease. Haematologica. 96, 128-133 (2011).
  11. Andreani, M., Testi, M., Battarra, M., Lucarelli, G. Split chimerism between nucleated and red blood cells after bone marrow transplantation for haemoglobinopathies. Chimerism. 2, 21-22 (2011).
  12. Kropshofer, G., Sopper, S., Steurer, M., Schwinger, W., Crazzolara, R. Successful management of mixed chimerism after bone marrow transplant in beta-thalassemia major. Am J Hematol. 91, E357-E358 (2016).
  13. Kimpton, C. P., et al. Automated DNA profiling employing multiplex amplification of short tandem repeat loci. PCR Methods Appl. 3, 13-22 (1993).
  14. Centis, F., et al. The importance of erythroid expansion in determining the extent of apoptosis in erythroid precursors in patients with beta-thalassemia major. Blood. 96, 3624-3629 (2000).
  15. Miccio, A., et al. In vivo selection of genetically modified erythroblastic progenitors leads to long-term correction of beta-thalassemia. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 105, 10547-10552 (2008).
check_url/56002?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Crazzolara, R., Kropshofer, G., Steurer, M., Sopper, S., Schwinger, W. Detection of Residual Donor Erythroid Progenitor Cells after Hematopoietic Stem Cell Transplantation for Patients with Hemoglobinopathies. J. Vis. Exp. (127), e56002, doi:10.3791/56002 (2017).

View Video