Summary

Påvisning av rester Donor Erythroid Progenitor celler etter blodkreft stamcelletransplantasjon for pasienter med Hemoglobinopathies

Published: September 06, 2017
doi:

Summary

Kvantifisering av donor-avledet celler er nødvendig for å overvåke engraftment etter stamcelletransplantasjon hos pasienter med hemoglobinopathies. En kombinasjon av flyt cytometri-baserte celle sortering, koloni formasjon analysen og påfølgende analyse av kort tandem gjentar kan brukes til å vurdere spredning og differensiering av progenitors i erythroid rommet.

Abstract

Tilstedeværelsen av ufullstendig chimerism er nevnt i en stor andel av pasienter etter benmarg transplantasjon for talassemi store eller sigdcelleanemi. Denne observasjonen har enorme implikasjoner, som etterfølgende terapeutiske immunomodulation strategier kan forbedre kliniske utfallet. Konvensjonelt, brukes polymerase kjedereaksjon-basert analyse av kort tandem gjentar til å identifisere chimerism i donor-avledet blodlegemer. Men denne metoden er begrenset til kjerne celler og ikke kan skille mellom dissosiert encellede overleveringslinjer. Vi søkt analyse av kort tandem gjentar å strømme cytometric-sortert blodkreft stamfar celler og sammenlignet dette med analyse av kort tandem gjentar fra valgt burst-forming enhet – erythroid kolonier, begge fra benet benmarg. Med denne metoden er vi i stand til å demonstrere ulike spredning og differensiering av donor cellene i erythroid rommet. Denne teknikken er kvalifisert til å fullføre gjeldende overvåking av chimerism i det stilk celle transplantasjonen innstilling, og dermed kan være brukt i fremtiden kliniske studier, stamcelleforskning og design av gene terapi studier.

Introduction

Allogene blodkreft stilk cellen transplantasjon (HSCT) er bare tilgjengelig helbredende tilnærming for en rekke medfødt genetiske lidelser av blodkreft systemet, oppnå sykdomsfri overlevelse av mer enn 90% for ellers svært svekket og livet-begrenset pasienter1. Effekten av dette viktige terapeutiske verktøyet er optimalisert ved å begrense toksisitet av pre- og etter transplantasjon regimer2, men også av intervensjoner rettet opprettholde stabil pode-funksjonen, som er kvantifisert ved tett oppfølging av donor-avledet celler3,4,5.

Generelt, innebærer komplett chimerism (CC) total utskifting av lymphohematopoietic kupé av donor-avledet celler, mens begrepet blandet chimerism (MC) brukes når donor – og mottaker-avledet celler finnes samtidig i forskjellige proporsjoner. Delt chimerism (SC) betegner en sameksistens av blandet chimerism observert i én celle linjene, som i erythroid rommet. Spør fastsettelse av chimerism status etter HSCT er kritisk, som det kan bidra til å identifisere pasienter utsatt for sykdommen tilbakefall og starte etterfølgende immunmodulerende strategier, som giver lymfocytt infusjoner eller reduksjon av suppressive terapi6.

Flere metoder har blitt utviklet for å overvåke engraftment etter HSCT. Isotyping av immunglobuliner og analyse av cytogenetics har dårlig følsomhet og begrenset i sin evne til å oppdage polymorfisme7,8. Innføring av fluorescerende i situ hybridisering (fisk) kan forbedre følsomhet chimerism overvåke etter HSCT, men er begrenset til sex-feil allografts9. Foreløpig polymerasekjedereaksjons (PCR) er den vanligste metoden brukes til å oppdage chimerism og er basert på konvensjonelle agarose-akrylamid gel geleelektroforese av variabelt antall tandem gjentar (VNTRs) eller kort tandem gjentar (STRs). Rutinemessig brukes er kvantitative PCR kjøpedyktig merker en svært liten andel av rester donor cellene etter HSCT. Stor begrensning av studiene så langt er at MC gjenkjenning er nesten utelukkende begrenset til tilstedeværelsen av kjerne celler, i stedet for eldre erytrocytter, nemlig celler at funksjonelt viktig for pasienter påvirkes av hemoglobinopathies. Pasienter med ulike blodtypene er det verdt å huske at cytofluorometric analyse er identifisere chimerism i røde blod celler ved å benytte monoklonale antistoffer rettet mot de røde blodlegemer antigener ABO og C, c, D, E og e10 , 11. en annen, men veldig interessant måte å vurdere chimerism i erythroid avstamning er kombinasjonen av flyt cytometric sortering av erythroid progenitors og utvalg av ulike erythroid stamfar typer av dyrking i clonogenic analyser, etterfulgt av analyse STR12. Denne tilnærmingen er kunne kvantifisere relative proporsjonene i donor-versus-mottaker chimerism i erythroid skuffen og kan benyttes i strategien for å opprettholde bein margtransplantasjon graftet.

Protocol

1. isolasjon av blodkreft bein margtransplantasjon celler av flere parameter fluorescens-aktivert celle sortering eksempel flekker før du starter prosessen, følgende elementer må hentes og forberedt: Gradient media for utarbeidelse av mononukleære celler (GM), 50 mL konisk rør 12 x 75 mm flyt rør til farging celler Beising buffer: fosfat bufret saltvann (PBS) + 3% fosterets kalv serum (FCS) Pipetter FC blokk og flekker antistoffer…

Representative Results

Separasjon av lymphohematopoietic progenitors av FACS celle sortering Her viser vi resultatene fra sortering nødvendig celle populasjoner for nedstrøms STR analyse. Bone margtransplantasjon celler var farget med V450-konjugerte anti-CD45, FITC-konjugerte anti-CD36 og APC-konjugerte anti-CD34. Befolkningen av interesse er megakaryocyte erythroid progenitors (MEP), nucleated celler ansvarlig for utviklingen av e…

Discussion

Målet med denne studien er å gi publikum en kombinasjon av disse metodene for analysere donor/mottaker chimerism i erythroid progenitors etter HSCT i pasienter behandlet for hemoglobinopathies: 1.) fluorescens-aktivert celle sortering blodkreft stamfar celler i benmargen prøver etterfulgt av analyse av kort tandem gjentar og 2.) Colony-forming enheten vokser beinmargen celleområde, klassifisering av koloniene i ulike stamfar etterfulgt av analyse av kort tandem gjentakelser. Nyheten av denne tilnærmingen ligger i å…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av Kinderkrebshilfe Regenbogen Südtirol.

Materials

Ficoll-Paque GE Healthcare GE17-1440-02  Remove RBC
50 mL conical tubes Falcon 14-432-22 Sample preparation
12 x 75 mm flow tubes Falcon 352002 FACS sorting
Phosphate buffered saline Gibco 10010023 PBS
Fetal calf serum Invitrogen Inc. 16000-044 FCS (heat-inactivated)
CD34 APC BD Bioscience 561209 FACS-Ab
CD36 FITC BD Bioscience 555454 FACS-Ab
CD45 V450 BD Bioscience 642275 FACS-Ab
Trypan blue Gibco 15250061
Hemocytometer Invitrogen Inc. C10227 Automatic cell counting
Hank’s Balanced Salt Solution Gibco 14025092 Suspension buffer in FACS analysis
HEPES Gibco 15630080 Component of suspension buffer
FcR BD Bioscience 564220 Block FCR
FACS Aria I BD Bioscience 23-11539-00 FACS Sorter
Recombinant  human erythropoietin Affimetrix eBioscience 14-8992-80 EPO
Isocove’s Modified Dulbecco’s Medium Gibco 12440053 IMDM
L-Glutamine Invitrogen 25030-081 Component of Culture Medium
CD34+ magnetic beads Milteny Biotech 130-046-702 CD34+ purification
Recombinant  human G-CSF Gibco PHC2031 CFU-Assay
Recombinant  human SCF Gibco CTP2113 CFU-Assay
Recombinant  human GM-CSF Gibco PHC2015 CFU-Assay
Recombinant  human IL-3 BD Bioscience 554604 CFU-Assay
Recombinant  human IL-6 BD Bioscience 550071 CFU-Assay
Methocult H4434 Medium Stemcell Technologies 4444 CFU-Assay
QiAmp DNA Blood extraction kit Qiagen 51306 DNA Isolation
Nanodrop ND-1000 spectra photometer Thermo Scientific ND 1000 DNA Quantification
DNAase free H2O Thermo Scientific FEREN0521 DNA Preparation
AmplTaq Gold DNA Polymerase Applied Bioscience N8080240 PCR
Eppendorf mastercycler gradient Eppendorf 6321000019 PCR 
Hi-Di Formamid Applied Bioscience 4311320 PCR
GeneScan 500 ROX Size Standard Applied Bioscience 4310361 PCR
3130 Genetic Analyzer Applied Bioscience 313001R PCR

References

  1. Angelucci, E., et al. Hematopoietic stem cell transplantation in thalassemia major and sickle cell disease: indications and management recommendations from an international expert panel. Haematologica. 99, 811-820 (2014).
  2. Lucarelli, G., Isgro, A., Sodani, P., Gaziev, J. Hematopoietic stem cell transplantation in thalassemia and sickle cell anemia. Cold Spring Harb Perspect Med. 2, a011825 (2012).
  3. Andreani, M., Testi, M., Lucarelli, G. Mixed chimerism in haemoglobinopathies: from risk of graft rejection to immune tolerance. Tissue Antigens. 83, 137-146 (2014).
  4. Andreani, M., et al. Persistence of mixed chimerism in patients transplanted for the treatment of thalassemia. Blood. 87, 3494-3499 (1996).
  5. Andreani, M., et al. Long-term survival of ex-thalassemic patients with persistent mixed chimerism after bone marrow transplantation. Bone Marrow Transplant. 25, 401-404 (2000).
  6. Kumar, A. J., et al. Pilot study of prophylactic ex vivo costimulated donor leukocyte infusion after reduced-intensity conditioned allogeneic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 19, 1094-1101 (2013).
  7. Lawler, S. D., Harris, H., Millar, J., Barrett, A., Powles, R. L. Cytogenetic follow-up studies of recipients of T-cell depleted allogeneic bone marrow. Br J Haematol. 65, 143-150 (1987).
  8. McCann, S. R., Crampe, M., Molloy, K., Lawler, M. Hemopoietic chimerism following stem cell transplantation. Transfus Apher Sci. 32, 55-61 (2005).
  9. Dewald, G., et al. A multicenter investigation with interphase fluorescence in situ hybridization using X- and Y-chromosome probes. Am J Med Genet. 76, 318-326 (1998).
  10. Andreani, M., et al. Quantitatively different red cell/nucleated cell chimerism in patients with long-term, persistent hematopoietic mixed chimerism after bone marrow transplantation for thalassemia major or sickle cell disease. Haematologica. 96, 128-133 (2011).
  11. Andreani, M., Testi, M., Battarra, M., Lucarelli, G. Split chimerism between nucleated and red blood cells after bone marrow transplantation for haemoglobinopathies. Chimerism. 2, 21-22 (2011).
  12. Kropshofer, G., Sopper, S., Steurer, M., Schwinger, W., Crazzolara, R. Successful management of mixed chimerism after bone marrow transplant in beta-thalassemia major. Am J Hematol. 91, E357-E358 (2016).
  13. Kimpton, C. P., et al. Automated DNA profiling employing multiplex amplification of short tandem repeat loci. PCR Methods Appl. 3, 13-22 (1993).
  14. Centis, F., et al. The importance of erythroid expansion in determining the extent of apoptosis in erythroid precursors in patients with beta-thalassemia major. Blood. 96, 3624-3629 (2000).
  15. Miccio, A., et al. In vivo selection of genetically modified erythroblastic progenitors leads to long-term correction of beta-thalassemia. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 105, 10547-10552 (2008).
check_url/56002?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Crazzolara, R., Kropshofer, G., Steurer, M., Sopper, S., Schwinger, W. Detection of Residual Donor Erythroid Progenitor Cells after Hematopoietic Stem Cell Transplantation for Patients with Hemoglobinopathies. J. Vis. Exp. (127), e56002, doi:10.3791/56002 (2017).

View Video