Summary

Bedömning av Endothelial celler med hjälp av 3D cellkultur och icke-Antikoagulerat helblod blodförtunnande och antiinflammatoriska egenskaper

Published: September 05, 2017
doi:

Summary

Vi presenterar en in vitro- modell som tillåter studiet och analysen av koagulation i hela, icke-Antikoagulerat blod. Antikoagulation i systemet beror på naturliga antikoagulationseffekt av friska endotelceller och endotelceller aktivering kommer att resultera i koagulation.

Abstract

In vivo, endotelceller är avgörande för den naturliga antikoagulation cirkulerande blod. Endotelcell aktivering leder följaktligen till koagulation. Detta fenomen observeras i många kliniska situationer såsom organtransplantationer i närvaro av förformad anti givare antikroppar, inklusive xenotransplantation, liksom i ischemi/reperfusionsskada. För att minska djurförsök enligt 3R-standarder (minskning, ersättning och förfining), in vitro- modeller att studera effekten av endotelceller vore aktiveringen på koagulation önskvärt. Vanliga flatbädd system av endotelceller kultur ger dock förhållandet yta till volym 1-5 cm2 av endotel per mL blod, vilket inte räcker för naturliga, endotel-medierad antikoagulation. Odling av endothelial celler på microcarrier pärlor kan öka ytan till volym förhållandet till 40-160cm/2ml. Detta ökade förhållande är tillräcklig för att säkerställa den ”naturliga” antikoagulation helblod, så att användning av antikoagulantia kan undvikas. Här är ett in vitro- microcarrier-baserat system beskrivs att studera effekterna av genetisk modifiering av svin endotelceller på koagulering av hela, icke-Antikoagulerat blod. I den beskrivs assay, primära svin aorta endotelceller, antingen vildtyp (WT) eller transgena för mänskliga CD46 och thrombomodulin, var odlas på microcarrier pärlor och sedan utsätts för färska ritade icke-Antikoagulerat blod. Denna modell tillåter mätning och kvantifiering av cytokinfrisättning samt aktivering markörer av komplement och koagulation i blodplasman. Dessutom utfördes imaging av aktiverade endotelceller och deposition av immunglobuliner, komplement- och koagulering proteiner på endothelialized pärlor av konfokalmikroskopi. Denna analys kan också användas för att testa läkemedel som är tänkt för att förhindra endotelceller aktivering och därmed koagulation. Ovanpå dess potential att minska antalet djur som används för sådana utredningar, är beskrivna analysen enkel att utföra och konsekvent reproducerbara.

Introduction

Den vaskulära endotelet består av en enskiktslager av endotelceller (EG) som linje lumen av blodkärl. I en fysiologiska tillstånd, quiescent EG ansvarar för underhållet av en antikoagulans och antiinflammatoriska miljö. 1 detta medieras av uttrycket av antikoagulans och anti-inflammatoriska proteiner på EG yta. Exempelvis EG aktivering orsakas av ischemi/reperfusion skada eller vaskulär avstötning av (xeno-) transplanterade organ medför en förändring av endothelial ytan från en antikoagulans och anti-inflammatoriska tillstånd till en Pro koaguleringsmedlet och pro-inflammatoriska tillstånd. 1

För att studera fascinerande och komplexa samspelet mellan de endotel och koagulation faktorerna, in vitro- modeller som efterliknar som nära som möjligt i vivo situationen är mycket önskvärda. En vanlig begränsning som kännetecknar konventionella in vitro- koagulering analyser är användningen av Antikoagulerat blod vilket gör analysen av koagulation-medierade effekter mödosam och även recalcification citrerade helblod kan inte återge resultat kan erhållas med färska icke-Antikoagulerat blod. 2 dessutom i traditionella platt-säng cell kultur system är det omöjligt att utnyttja endotelet antikoagulerande egenskaper som en tillräcklig endotelceller yta per blodvolym inte kan nås. Den modell som presenteras här övervinner dessa begränsningar av odlingsskålar EG på ytan av sfäriska microcarrier pärlor, så att en EG yta-till-blod förhållandet > 16 cm2/ml kan nås, som är liknande till situationen i små arterioler eller vener, och som beskrevs vara tillräcklig för att ”naturliga” antikoagulation av blod av EG ytan. 3 , 4 helblod kan användas utan tillsatt antikoagulantia i denna miljö. Blodprov kan tas under experimentet och cytokiner, koagulationsfaktorer och lösliga komplement aktiveringen markörer kan identifieras och kvantifieras. Dessutom kan EG-belagd microcarrier pärlor analyseras för komplement och immunglobulin nedfall samt uttrycket av EG aktiveringen markörer med konfokalmikroskopi. Ett annat intressant program inkluderar testning av narkotika som är tänkta för att förhindra endotelceller aktivering och därmed koagulation. 5 även om denna modell inte kan helt ersätta djurförsök, det erbjuder en metod för att testa specifika funktionella hypoteser ex vivo som använder celler och därmed minska antalet djur som används i grundforskning om ischemi/reperfusion skada eller (xeno) transplantation.

Den beskrivna modellen användes för att efterlikna en xenotransplantation inställning i vilka svin aorta endotelceller (Endometrial) odlas på microcarrier pärlor och inkuberas med hela, icke-Antikoagulerat blod. Olika transgena PAEC, bär flera mänskliga gener såsom CD46 för reglering av Komplementsystemet och/eller thrombomodulin (hTBM) för reglering av koagulationssystemet, analyserades för deras antikoagulerande egenskaper. Endotelcell aktivering, komplement och koagulation system kontrolleras tätt och sammankopplade. 6 det är därför viktigt att förstå hur de olika transgena cellerna beter sig efter exponering för humant blod när det gäller vidhäftning molekyl uttryck och cytokinfrisättning, avgivande av glykokalyx och förlust av antikoagulerande proteiner. 7

Protocol

Tysk lantras svin (vildtyp uppvuxna i en lokal bondgård och transgena uppfödda vid Institutet för molekylär djur avel och bioteknik, Ludwig-Maximilian-universitet, München, Tyskland), som väger mellan 30 kg till 40 kg, användes i denna studie. Alla djur har varit inhysta under standart villkorar med vatten och mat ad lib. Alla djurförsök har utförts enligt lagen om U.K. djur (vetenskapliga förfaranden) och guiden NIH för vård och användning av försöksdjur, samt den schweiziska djurskyddslag. All…

Representative Results

Efter 7-10 dagar av kultur i spinner kolven (figur 1) var cellerna konfluenta, som täcker hela ytan av microcarrier pärlor (figur 2). Verifiering av confluency staten är ett viktigt steg eftersom en icke-konfluenta enskiktslager av EG på mikrokulor kommer att leda till en markant minskning av koagulationstiden, med tanke på microcarrier pärlor yta är starkt Pro koaguleringsmedlet (koagulering tid: 4 ± 1 min) (<strong clas…

Discussion

Den modell som presenteras här är lämplig för koagulering relaterade studier möjliggör analys av olika aspekter av koagulation och dess interaktion med EG. 8 i xenotransplantation forskning, det är ett användbart system att testa olika genetiskt modifierade svin ECs antikoagulerande egenskaper efter inkubation med humanblod 9.

De viktigaste stegen i protokollet finns de att säkerställa komplett cell täckning (konfluens) av mikrokulor i…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie stöddes av schweiziska National Science Foundation (SNSF, Grant No. 320030_156193). Författarna vill tacka Dr Benoît Werlen för att ge Biosilon microcarrier pärlor. Vi tackar också Prof. Hans Peter Kohler och Prof. André Haeberli för hjälp med att sätta upp microcarrier pärla modellen.

Materials

PAEC Isolated from pig aorta in our Lab
Microcarrier beads (Biosilon) Thermo Fisher Scientific 160-250
Collagen I, Bovine Gibco A10644-01
DMEM Gibco 21885-025
Medium 199 Sigma M7528
RPMI Gibco 32404-014
Neutral tubes Sarstedt 02.1726.001
Polypropylene tubes Simport T406-2A
Stirrer flasks Tecnomara
Biological stirrer Brouwer MCS-104S
Rat anti CD31 R&D Systems MAB33871 Dilution 1:100
Goat anti-rat IgG-Cy3 Jackson Immuno Research 112-166-003 Dilution 1:500
Goat anti VE-cadherin Santa Cruz sc-6458 Dilution 1:100
Rabbit anti vWF DAKO A0082 Dilution 1:100
Dk anti Gt IgG – Alexa 488 Molecular Probes A11055 Dilution 1:500
Goat anti Rabbit – FITC Southern Biotech 4050-02 Dilution 1:500
DAPI Sigma 32670-25MG-F Dilution 1 µg/mL
0.05% Trypsin-EDTA Gibco 25300-054
FBS Gibco 10270-106 Concentration: 10% in cell culture medium
Needle Becton Dickinson 367286 Size: 0.8×19 mm (21ɢ 3/4")
Adapter Sarstedt 14.1205
Confocal microscope Carl Zeiss LSM 710
Image analysis software Image J Available for free at: https://imagej.net
Endothelial Cell Growth Medium SupplementMix PromoCell C-39216 2mL in 500mL of DMEM
Penicillin Streptomycin Gibco 15140-122 Concentration: 1% in cell culture medium
L-Glutamine Gibco 25030-024 Concentration: 1% in cell culture medium
Heparinun natricum Drossa Pharm AG Stock concentration: 5000 U.I./ mL
Chamberslides Bioswisstec AG 30108
CaCl2 x 2H2O Merck 2382.0500
MgCl2 x6 H2O Merck 1.5833.1000
Tween 20 Axon Lab AG 9005-64-5
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma A7030
Glycergel mounting medium Dako C0563

References

  1. Rajendran, P., et al. The vascular endothelium and human diseases. Int. J. Biol. Sci. 9, 1057-1069 (2013).
  2. Rajwal, S., Richards, M., O’Meara, M. The use of recalcified citrated whole blood – a pragmatic approach for thromboelastography in children. Pediatric Anesthesia. 14, 656-660 (2004).
  3. Kohler, H. P., Muller, M., Mombeli, M., Mtraub, M. M., Maeberli, M. The Suppression of the Coagulation of Nonanticoagulated Whole-Blood in-Vitro by Human Umbilical Endothelial-Cells Cultivated on Microcarriers Is Not Dependent on Protein-C Activation. Thromb. Haemost. 73, 719-724 (1995).
  4. Biedermann, B., Rosenmund, A., Muller, M., Kohler, H. P., Haeberli, A., Straub, P. W. Human endothelial cells suppress prothrombin activation in nonanticoagulated whole blood in vitro. J. Lab. Clin. Med. 124, 339-347 (1994).
  5. Banz, Y., Cung, T., Korchagina, E. Y., Bovin, N. V., Haeberli, A., Rieben, R. Endothelial cell protection and complement inhibition in xenotransplantation: a novel in vitro model using whole blood. Xenotransplantation. 12, 434-443 (2005).
  6. Cowan, P. J., d’Apice, A. J. Complement activation and coagulation in xenotransplantation. Immunology and Cell Biology. 87, 203-208 (2009).
  7. Reitsma, S., Slaaf, D. W., Vink, H., van Zandvoort, M. A. M. J., oude Egbrink, M. G. A. The endothelial glycocalyx: composition, functions, and visualization. Pflugers Arch. 454, 345-359 (2007).
  8. Wiegner, R., Chakraborty, S., Huber-Lang, M. Complement-coagulation crosstalk on cellular and artificial surfaces. Immunobiology. 221, 1073-1079 (2016).
  9. Bongoni, A. K., et al. Transgenic Expression of Human CD46 on Porcine Endothelium: Effect on Coagulation and Fibrinolytic Cascades During Ex Vivo Human-to-Pig Limb Xenoperfusions. Transplantation. 99, 2061-2069 (2015).
  10. Miyazaki, Y., et al. High shear stress can initiate both platelet aggregation and shedding of procoagulant containing microparticles. Blood. 88, 3456-3464 (1996).
  11. Wuensch, A., et al. Regulatory Sequences of the Porcine THBD Gene Facilitate Endothelial-Specific Expression of Bioactive Human Thrombomodulin in Single-and Multitransgenic Pigs. Transplantation. 97, 138-147 (2014).
check_url/56227?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sfriso, R., Bongoni, A., Banz, Y., Klymiuk, N., Wolf, E., Rieben, R. Assessment of the Anticoagulant and Anti-inflammatory Properties of Endothelial Cells Using 3D Cell Culture and Non-anticoagulated Whole Blood. J. Vis. Exp. (127), e56227, doi:10.3791/56227 (2017).

View Video