Summary

Vivo में माउस फीमर के लिए एक एमआरआई-संगत Osteosynthesis डिवाइस का उपयोग चूहों में अस्थि चिकित्सा के दौरान फ्रैक्चर घट्टा विकास का मूल्यांकन

Published: November 14, 2017
doi:

Summary

endochondral अस्थि चिकित्सा के दौरान फ्रैक्चर घट्टा में ऊतक विकास के मूल्यांकन के लिए चिकित्सा प्रक्रिया पर नजर रखने के लिए आवश्यक है । यहाँ, हम माउस फीमर के लिए एक चुंबकीय अनुनाद इमेजिंग (एमआरआई) के उपयोग की रिपोर्ट-चूहों में अस्थि पुनर्जनन के दौरान एमआरआई स्कैन की अनुमति देने के लिए संगत बाहरी निर्धारणकर्ता.

Abstract

Endochondral फ्रैक्चर चिकित्सा फ्रैक्चर घट्टा में रेशेदार, उपास्थि, और osseous ऊतक के विकास को शामिल एक जटिल प्रक्रिया है । घट्टा में विभिंन ऊतकों की राशि फ्रैक्चर चिकित्सा प्रगति पर महत्वपूर्ण जानकारी प्रदान करता है । vivo में उपलब्ध तकनीक longitudinally की निगरानी के लिए घट्टा ऊतक विकास में नैदानिक फ्रैक्चर-चिकित्सा छोटे जानवरों का उपयोग कर अध्ययन डिजिटल रेडियोग्राफी और µ सीटी इमेजिंग शामिल हैं । हालांकि, दोनों तकनीकों केवल खनिज और गैर खनिज ऊतक के बीच भेद करने में सक्षम हैं । फलस्वरूप, यह रेशेदार ऊतक से उपास्थि भेदभाव करने के लिए असंभव है । इसके विपरीत, चुंबकीय अनुनाद इमेजिंग (एमआरआई) शारीरिक संरचनाओं उनके पानी की सामग्री के आधार पर visualizes और इसलिए आक्रामक कोमल ऊतक और फ्रैक्चर घट्टा में उपास्थि की पहचान करने में सक्षम हो सकता है । यहाँ, हम चूहों में अस्थि पुनर्जनन के दौरान एमआरआई स्कैन की अनुमति देने के लिए माउस फीमर के लिए एक एमआरआई संगत बाहरी निर्धारणकर्ता के उपयोग की रिपोर्ट. प्रयोगों का प्रदर्शन किया है कि निर्धारण और एक कस्टम निर्मित बढ़ते उपकरण दोहराए एमआरआई स्कैन की अनुमति है, इस प्रकार फ्रैक्चर-घट्टा ऊतक विकास के अनुदैर्ध्य विश्लेषण को सक्षम करने से ।

Introduction

माध्यमिक फ्रैक्चर चिकित्सा अस्थि चिकित्सा का सबसे आम रूप है । यह ontogenic endochondral हड्डी1,2,3के विशिष्ट पहलुओं नकल उतार एक जटिल प्रक्रिया है । प्रारंभिक फ्रैक्चर रक्तगुल्म मुख्य रूप से प्रतिरक्षा कोशिकाओं के होते हैं, दानेदार और रेशेदार ऊतक । कम ऑक्सीजन तनाव और उच्च यांत्रिक उपभेदों फ्रैक्चर अंतराल पर osteoblast भेदभाव में बाधा है, लेकिन chondrocytes में जनक कोशिकाओं के भेदभाव को बढ़ावा देने के4,5,6। इन कोशिकाओं को चोट के स्थल पर पैदा के लिए एक उपास्थि खंडित हड्डी की प्रारंभिक स्थिरता प्रदान मैट्रिक्स फार्म शुरू करते हैं । घट्टा परिपक्वता के दौरान, chondrocytes hypertrophic हो, apoptosis, या ट्रांस-osteoblasts में अंतर से गुजरना । Neovascularization में उपास्थि करने वाली अस्थि संक्रमण क्षेत्र ऊंचा ऑक्सीजन का स्तर प्रदान करता है, बोनी ऊतक के गठन की अनुमति7. फ्रैक्चर के अंतर के बोनी पाटने के बाद, यांत्रिक स्थिरता बढ़ जाती है और बाहरी फ्रैक्चर घट्टा के osteoclastic remodeling शारीरिक अस्थि समोच्च और3संरचना हासिल करने के लिए होता है । इसलिए, फ्रैक्चर घट्टा में रेशेदार, उपास्थि, और बोनी ऊतक की मात्रा अस्थि चिकित्सा प्रक्रिया के बारे में महत्वपूर्ण जानकारी प्रदान करते हैं । परेशान या विलंबित चिकित्सा दोनों मनुष्यों और चूहों8,9,10,11में घट्टा ऊतक विकास के परिवर्तन से दिखाई देता है । vivo में उपलब्ध तकनीक longitudinally मॉनिटर घट्टा ऊतक विकास में नैदानिक फ्रैक्चर चिकित्सा अध्ययन छोटे जानवरों का उपयोग कर डिजिटल रेडियोग्राफी और µ सीटी इमेजिंग12,13शामिल हैं । हालांकि, दोनों तकनीकों केवल खनिज और गैर खनिज ऊतक के बीच भेदभाव करने में सक्षम हैं । इसके विपरीत, एमआरआई उत्कृष्ट कोमल ऊतक इसके विपरीत प्रदान करता है और इसलिए कोमल ऊतक और फ्रैक्चर घट्टा में उपास्थि की पहचान करने में सक्षम हो सकता है ।

पिछले काम जोड़दार फ्रैक्चर के साथ चूहों में पोस्ट मार्टम एमआरआई के लिए आशाजनक परिणाम दिखाई दिया14 और vivo में एमआरआई intramembranous अस्थि दोष हीलिंग15के दौरान चूहों में. हालांकि, दोनों अध्ययनों ने भी कहा सीमित स्थानिक संकल्प और ऊतक इसके विपरीत । हम पहले murine endochondral फ्रैक्चर हीलिंग16के दौरान नरम घट्टा गठन के अनुदैर्ध्य आकलन के लिए vivo एमआरआई में उच्च संकल्प की व्यवहार्यता का प्रदर्शन किया । यहाँ, हम endochondral फ्रैक्चर चिकित्सा प्रक्रिया के दौरान घट्टा ऊतक विकास longitudinally की निगरानी के लिए चूहों में फीमर शल्यचिकित्सा के लिए एक एमआरआई संगत बाहरी निर्धारणकर्ता का उपयोग करने के लिए प्रोटोकॉल की रिपोर्ट. बाह्य निर्धारणकर्ता की प्रविष्टि के लिए एक कस्टम-निर्मित बढ़ते उपकरण की डिजाइन दोहराया स्कैन के दौरान एक मानकीकृत स्थिति सुनिश्चित की ।

Protocol

सभी पशु प्रयोगों की देखरेख और प्रयोगशाला पशुओं के उपयोग के लिए अंतर्राष्ट्रीय विनियमों का अनुपालन किया गया और क्षेत्रीय विनियामक प्राधिकरणों (No. १२५०, Regierungspr & #228; sidium T & #252; बिंजेन, जर्मनी) द्वारा अनुमोदित ?…

Representative Results

सबसे पहले, शल्य प्रक्रिया की सफलता एमआरआई स्कैन के विश्लेषण के द्वारा पुष्टि की जा सकती है ( चित्रा 2में उदाहरण देखें) । सभी चार पिंस ऊरु शाफ्ट के बीच में स्थित होना चाहिए । शल्यचि?…

Discussion

संशोधन और समस्या निवारण:

इस अध्ययन का मुख्य लक्ष्य endochondral फ्रैक्चर-हीलिंग प्रक्रिया के दौरान घट्टा ऊतक विकास longitudinally पर नजर रखने की क्षमता के साथ माउस में फीमर शल्यचिकित्सा के लिए एक एमआर?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम Sevil Essig, Stefanie Schroth, Verena फिशर, Katja Prystaz, Yvonne Hägele, और उत्कृष्ट तकनीकी सहायता के लिए ऐनी उपगिरोह धंयवाद । हम भी जर्मन अनुसंधान फाउंडेशन (CRC1149, INST40/499-1) और ए ओ ट्रामा फाउंडेशन जर्मनी इस अध्ययन के वित्तपोषण के लिए धंयवाद ।

Materials

Anaesthesia tube FMI, Seeheim, Germany ZUA-82-ANA-TUB-Mouse
Anaesthetic machine  FMI, Seeheim, Germany ZUA-82-GME-MA
Artery forceps  Aesculap, Tuttlingen, Germany BH104R
Autoclave Systec, Wettenberg, Germany DX-150
Autoclaving packaging Stericlin, Feuchtwangen, Germany 2301-04/06/10/12/16
Avizo software FEI, Burlington, USA Version 8.0.1
BioSpec 117/16 magnetic resonance imaging system Bruker Biospin, Ettlingen, Germany 117/16
Bulldog clamp  Aesculap, Tuttlingen, Germany BH 021R
Carbon steel scalpel no. 11/15 Aesculap, Tuttlingen, Germany BA211/215
Ceramic mounting pin 0.45 mm  RISystem, Davos, Switzerland HS691490
Clindamycin (300 mg / 2ml) Ratiopharm, Ulm, Germany
Dressing forceps 115 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany BD210R
Dressing forceps 130 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany BD025R
Drill bit coated 0.45 mm  RISystem, Davos, Switzerland HS820420
Durogrip needle holder 125 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany BM024R
Foliodrape  Hartmann, Heidenheim, Germany 2513026
Frekaderm Fresenius, Bad Homburg, Germany 4928211
Gigli saw 0.44 mm  RISystem, Davos, Switzerland RIS.590.110.25
Hand drill RISystem, Davos, Switzerland RIS.390.130-01
Heating plate  FMI, Seeheim, Germany IOW-3704
Hygonorm gloves  Hygi, Telgte, Germany 2706
Isoflurane Abbot, London, UK Forene
Micro forceps 155 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany BD343R
Micro scissors 120 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany FD013R
Mouse FixEx L 0.7 mm  RISystem, Davos, Switzerland RIS.611.300-10
Needle case for drills  Aesculap, Tuttlingen, Germany BL911R
Needle holder Aesculap, Tuttlingen, Germany BB078R
Octenisept Schülke, Norderstedt, Germany 121403
Osirix software Pixmeo SARL, Bernex, Switzerland Version 4.0
Oxygen, medical grade MTI, Ulm, Germany
Resolon 5/0 Resorba, Nürnberg, Germany 88143
Saline 0.9% Braun, Melsungen, Germany 3570350
Scalpel handle 125 mm Aesculap, Tuttlingen, Germany BB073R
Scissors 150 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany BC006R
Sealer for autoclave packaging  Hawo GmbH, Obrigheim, Germany HM500
Sterican 27 G  Braun, Melsungen, Germany 4657705
Sterile surgical blades no. 11/15  Aesculap, Tuttlingen, Germany BB511/515
Surgical gloves  Hartmann, Heidenheim, Germany Peha-micron 9425712
Surgical light  Maquet SA, Ardon, France Blue line 80
Syringes 5 ml  Braun, Melsungen, Germany Injekt 4606051V
Tissue forceps 80 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany OC091R
Tramadol 25 mg/l Grünenthal, Aachen, Germany 100mg/ml
Vasofix Safety  Braun, Melsungen, Germany 4268113S-01
Vicryl 5-0  Ethicon, Norderstedt, Germany V30371
Visdisic eye ointment  Bausch & Lomb, Berlin, Germany 3099559

References

  1. Claes, L., Recknagel, S., Ignatius, A. Fracture healing under healthy and inflammatory conditions. Nat Rev Rheumatol. 8 (3), 133-143 (2012).
  2. Einhorn, T. A. The cell and molecular biology of fracture healing. Clin Orthop Relat Res. (355), S7-S21 (1998).
  3. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: mechanisms and interventions. Nat Rev Rheumatol. 11 (1), 45-54 (2015).
  4. Augat, P., et al. Local tissue properties in bone healing: influence of size and stability of the osteotomy gap. J Orthop Res. 16 (4), 475-481 (1998).
  5. Claes, L. E., Heigele, C. A. Magnitudes of local stress and strain along bony surfaces predict the course and type of fracture healing. J Biomech. 32 (3), 255-266 (1999).
  6. Claes, L. E., et al. Effects of mechanical factors on the fracture healing process. Clin Orthop Relat Res. (355), 132-147 (1998).
  7. Hu, D. P., et al. Cartilage to bone transformation during fracture healing is coordinated by the invading vasculature and induction of the core pluripotency genes. Development. 144 (2), 221-234 (2017).
  8. Hankenson, K. D., Zimmerman, G., Marcucio, R. Biological perspectives of delayed fracture healing. Injury. 45, 8-15 (2014).
  9. Meyer, R. A., et al. Age and ovariectomy impair both the normalization of mechanical properties and the accretion of mineral by the fracture callus in rats. J Orthop Res. 19 (3), 428-435 (2001).
  10. Nikolaou, V. S., Efstathopoulos, N., Kontakis, G., Kanakaris, N. K., Giannoudis, P. V. The influence of osteoporosis in femoral fracture healing time. Injury. 40 (6), 663-668 (2009).
  11. Haffner-Luntzer, M., Kovtun, A., Rapp, A. E., Ignatius, A. Mouse Models in Bone Fracture Healing Research. Current Molecular Biology Reports. 2 (2), 101-111 (2016).
  12. Garcia, P., et al. Rodent animal models of delayed bone healing and non-union formation: a comprehensive review. Eur Cell Mater. 26, 1-14 (2013).
  13. Histing, T., et al. Small animal bone healing models: standards, tips, and pitfalls results of a consensus meeting. Bone. 49 (4), 591-599 (2011).
  14. Zachos, T. A., Bertone, A. L., Wassenaar, P. A., Weisbrode, S. E. Rodent models for the study of articular fracture healing. J Invest Surg. 20 (2), 87-95 (2007).
  15. Taha, M. A., et al. Assessment of the efficacy of MRI for detection of changes in bone morphology in a mouse model of bone injury. J Magn Reson Imaging. 38 (1), 231-237 (2013).
  16. Haffner-Luntzer, M., et al. Evaluation of high-resolution In Vivo MRI for longitudinal analysis of endochondral fracture healing in mice. PLoS One. 12 (3), 0174283 (2017).
  17. Beckmann, N., Falk, R., Zurbrugg, S., Dawson, J., Engelhardt, P. Macrophage infiltration into the rat knee detected by MRI in a model of antigen-induced arthritis. Magn Reson Med. 49 (6), 1047-1055 (2003).
  18. Al Faraj, ., Shaik A, S. u. l. t. a. n. a., Pureza, A., A, M., Alnafea, M., Halwani, R. Preferential macrophage recruitment and polarization in LPS-induced animal model for COPD: noninvasive tracking using MRI. PLoS One. 9 (3), 90829 (2014).
  19. Rolle, A. M., et al. ImmunoPET/MR imaging allows specific detection of Aspergillus fumigatus lung infection in vivo. Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (8), 1026-1033 (2016).
  20. Niemeyer, M., et al. Non-invasive tracking of human haemopoietic CD34(+) stem cells in vivo in immunodeficient mice by using magnetic resonance imaging. Eur Radiol. 20 (9), 2184-2193 (2010).
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Haffner-Luntzer, M., Müller-Graf, F., Matthys, R., Abaei, A., Jonas, R., Gebhard, F., Rasche, V., Ignatius, A. In Vivo Evaluation of Fracture Callus Development During Bone Healing in Mice Using an MRI-compatible Osteosynthesis Device for the Mouse Femur. J. Vis. Exp. (129), e56679, doi:10.3791/56679 (2017).

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