Summary

التقنيات الجراحية لموضع القسطرة واستئصال 5/6 في نماذج مورين للغسيل الكلوي البريتوني

Published: July 19, 2018
doi:

Summary

يوضح هذا المقال طريقة للموضع الجراحية في الفئران القسطرة داخل تعلق على منفذ وصول التي يتم وضعها في الجزء الخلفي من الحيوان. وعلاوة على ذلك، وهذا ما يفسر الإجراء المتعلق استئصال 5/6 ليشابه الدولة يوريمي المرضى PD.

Abstract

الديلزه الصفاقيه (PD) هو علاج الاستبدال كلوي متسقة على الإدارة والانتعاش اللاحق للسائل الملين في التجويف الصفاقى لاستنزاف المياه والسامة من الأيض وظيفيا كفاية الكلي غير قادرة على القضاء عليها. ولسوء الحظ، أن هذا الإجراء تتدهور الصفاق. يؤدي تلف الأنسجة بداية التهاب للشفاء من الإصابة. إذا استمرت الإصابة ويصبح التهاب مزمن، فإنه قد يؤدي إلى التليف، وأمر شائع في العديد من الأمراض. PD والتهاب مزمن وتليف، جنبا إلى جنب مع عمليات محددة أخرى تتصل بهذه البلدان، تؤدي إلى تدهور القدرات ultrafiltration، مما يعني الفشل ووقف اللاحقة لهذا الأسلوب. العمل مع العينات البشرية يوفر معلومات حول هذا التدهور ولكنه يعرض القيود التقنية والأخلاقية للحصول على خزعات. نماذج حيوانية ضرورية لدراسة هذا التدهور نظراً إلى أنها في التغلب على أوجه القصور هذه.

وضع نموذج ضخ ماوس مزمنة في عام 2008، الذي يستفيد من مجموعة واسعة من الفئران المعدلة وراثيا، فتح إمكانية دراسة الآليات التي ينطوي عليها. ويستخدم هذا النموذج مخصص جهاز مصمم للفئران، تتألف من قسطرة المرفقة إلى منفذ وصول التي تم وضعها تحت الجلد في الجزء الخلفي من الحيوان. ويتجنب هذا الإجراء المستمر ثقب الصفاق خلال التجارب الطويلة الأجل والحد من العدوى والتهاب بسبب حقن. وبفضل هذا النموذج، وقد تتميز البريتوني الأضرار الناجمة عن التعرض المزمن للسوائل PD والتضمين. هذا الأسلوب يسمح ضخ كميات كبيرة من السوائل ويمكن استخدامها لدراسة الأمراض الأخرى ضروري فيها التطعيم من عقاقير أو مواد أخرى على مدى فترات طويلة من الزمن.

يوضح هذا المقال طريقة لوضع القسطرة الجراحية في الفئران. وعلاوة على ذلك، وهذا ما يفسر الإجراء المتعلق استئصال 5/6 لتقليد دولة موجودة في المرضى PD الكلوي.

Introduction

وظائف الكلي وأمراض الكلي

الكلي هي الأجهزة الأساسية المعنية بالتوازن وتنقية الدم وإنتاج الهرمونات. وهناك مختلف الظروف التي تؤدي إلى الفشل الكلوي وإلى بداية اللاحقة من أورميا، التي قد تم تعريفها بأنها مجموعة الأعراض الجهازية بسبب تراكم الفضلات في الدم الاحتفاظ بسبب اضطرابات وظيفة الكلي1. وعلاوة على ذلك، نظراً لإمكانية التماثل الساكن يتأثر أيضا عندما يكون هناك فشل كلوي، ارتفاع ضغط الدم بسبب الحمل الزائد لوحدة التخزين قد تحدث، هو أمر خطير كما أنه يمكن أن يؤدي إلى فشل القلب1. عندما تكون القدرة الوظيفية للكلى أقل من 10% إلى 15%، المريض يجب أن يخضع لأحد الخيارات العلاجية التالية: غسيل الكلي والغسيل الكلوي البريتوني (PD) أو زرع الكلي.

PD هو خيار مثيرة لاهتمام الذي يسمح للمرضى مواصلة العلاج من الراحة من منازلهم أو عمليا في أي مكان، وبالتالي تجنب الحاجة إلى مستشفى كثرة الزيارات والإقامة. تقنية PD يزيل جزيئات سامة صغيرة والمياه الزائدة الناتجة عن الجسم2 عن طريق تقطير السوائل ناضح (الغسيل الكلوي البريتوني السوائل، قوات الدفاع الشعبي) في التجويف الصفاقى. ينشئ هذا تقطير ناضح التدرج اللازمة لتبادل الذوائب والمياه بين الشعرية البريتوني وقوات الدفاع الشعبي، عملية تعرف باسم أولترافيلتريشن (الجبهة المتحدة).

البريتوني الضرر الناجم عن الغسيل الكلوي البريتوني

التجويف الصفاقى مغطى بغشاء (م) تتألف من أحادي الطبقة الخلايا mesothelial يستريح في مصفوفة، الذي يضم أيضا بعض الأوعية الدموية والليفية والضامة والسكان خلية أخرى. ولسوء الحظ، الغشاء البريتوني دائماً يعاني بعض التعديلات أثناء العلاج PD، مثل المبرمج وفقدان الخلايا mesothelial، وانتقال mesenchymal mesothelial (MMT) والخلايا البطانية (نهاية-MT)، تجنيد الخلايا التحريضية و فيبروسيتيس، التعديلات والأوعية الدموية، والأوعية، ليمفانجيوجينيسيس و/أو التليف3،4،5،،من67،،من89. هذه التعديلات المسؤولة عن تطوير الجبهة المتحدة القدرة فشل10، الذي يحول دون استمرار العلاج، التي تتطلب أن المريض يجب أن يحصل علاج بديل البقاء على قيد الحياة (غسيل الكلي أو زرع الكلي) . ولذلك، من الضروري لهؤلاء المرضى، إلى تأخير أو التحكم في تنمية هذه التعديلات البريتوني.

كان قد تردد أن أورميا وحدها قد يسبب التهاب11، ولكن أهم العوامل المحلية بيوينكومباتيبيليتي PDF. معظم ملفات Pdf استخدام الجلوكوز كعامل ناضح، مما يسبب التهاباً. سبب PDF مرات التخزين والتعقيم، يعاني الجلوكوز عملية تدهور، وظهور منتجات جديدة من رد الفعل هذا، توليد المزيد من التهاب،12،MMT والمبرمج13. وعلاوة على ذلك، هناك أيضا إمكانية للأضرار الميكانيكية بسبب طريقة تقطير. كل هذه العوامل، يتصرفون بشكل مستمر، يمكن أن تولد دولة تحريضية المستمرة والمتكررة، مما يؤدي إلى التهاب مزمن، مما يقود إلى تدهور الأغشية، وقاطع، فشل الجبهة المتحدة. كيف يمكن تخفيض أو تجنب هذا الضرر لا يزال مدعاة للدراسة.

تحليل وضع الآفات: من العينات البشرية لنماذج حيوانية

العمل مع خزعات البشرية عاملاً مقيداً بسبب صعوبة الحصول على عينات الأنسجة. يمكن الحصول على هذه العينات فقط من الجراحات إجراؤها بسبب عطل القسطرة أو الزرع، عادة بعد سنوات من العلاج PD. هذا النهج مفيداً لتحليل التغيرات المرضية التي عانت من غشاء البريتوني مكشوف لقوات الدفاع الشعبي، ولكن لا يكفي لدراسة تطور العملية. إمكانية أخرى لتحليل الخلايا التي استنزفت من مياه الغسيل الكلوي، ولكن هذا لا يزال فشل في تقديم سيناريو كاملة. دمج كلا التقنيات الممكن فقط مع نماذج حيوانية. هيكل البريتوني مماثلة بين الثدييات، وذلك هناك نماذج مع مختلف أنواع الحيوانات. وهناك عدد قليل من الدراسات التي تقوم على الأغنام (روديلا et al. 14 وباريل et al. 15) وارنب نماذج17 16،؛ ومع ذلك، أصغر الحيوانات الأفضل كما أنها أسهل للبيت والحفاظ على، وأيضا أكثر اقتصادا. ويتيح استخدام الفئران18،19،،من2021،22،،من2324 أقصر وقت معاملة اللازمة لمراقبة التعديلات morpho الوظيفية. قد مثلت نموذجا مفيداً للغاية لاستكشاف قضايا مختلفة مثل تأثير الأدوية المضادة تليفية مثلاً BMP-7 (العظام morphogenic البروتين-7)25 و RAS (نظام إنزيم الرينين-انجيوتنسين) استهداف26،27 , 28.

ومع ذلك، برز نموذج مورين كنموذج مثالي مع العديد من الفوائد على الآخرين. الميزة الأكثر إثارة للاهتمام تعديل إمكانية استخدام جينياً الفئران لدراسة أساس الضرر البريتوني الجزيئية والخلوية. وفي الواقع، كثيرا ما تستخدم الفئران للتحليل للعديد من الأمراض، كما أن هناك العديد من سلالات مختلفة مع مختلف الخلفيات الوراثية المعروفة. وتشمل المزايا الأخرى انخفاض المساحة المطلوبة للإسكان، وانخفاض تكلفة التجارب (بسبب حجم أصغر الحيوانات) وتوافر المواد الكاشفة وسهولة التعامل مع كمية متزايدة من المعلومات المتاحة في سلالات مختلفة من الفئران نظراً لأنها كانت الحيوانات الأكثر استخداماً في البحوث.

نموذج يستند إلى الفئران تستخدم جهاز مزروع النموذج الأكثر المنشأة حديثا ل PD29،30، وقد ثبت أن تحاكي البريتوني تدهور لحقت بالمرضى PD بسبب التعرض لملفات Pdf. وقد تعاونت هذا النموذج لفهم العمليات المرضية المتورطين31،،من3233. وعلاوة على ذلك، قد استخدمت للتحقق من صحة مختلف العلاجات الممكنة للتخفيف من حدة هذا التدهور استخدام المغيرون محصنة والعقاقير المضادة للالتهابات وأخرى مضادة تليفية والعوامل المضادة-الأوعية، مثل مثبطات كوكس-2 (السيكلواوكسيجيناز-2) 34، يضع فهمته-γ (بيروكسيسومي ادعاءا المنشط مستقبلات-γ)35، تاموكسيفين36، باريكالسيتول (فيتامين (د) مستقبلات منشط الذي ينظم رد فعل المناعة)37و38 من ربمسن ونيبيفولول 39.

تطوير النموذج الماوس مع قسطرة مزروع

الهدف من هذا النموذج يشابه، قدر الإمكان، هذه التقنية المستخدمة في البشرية PD المرضى، مما يسمح بإجراء العلاجات الموسعة لشعبة المشتريات في الحيوانات الصغيرة. وحتى الآن، تم اختبار ثلاث تقنيات لتقطير السوائل غسيل الكلي في الصفاق في الفئران. أول واحد، ثقب المكفوفين من الجبهة جدار البطن، مثير للجدل بسبب مخاطر متعددة قد تتعرض لها، مثل الأضرار البريتوني، والنزيف، وثقب المنجز عمياء، الحشوي. الأسلوب الثاني هو ما يسمى “الدائمة النظام المفتوح”، الذي تم وضع جهاز لحقن السوائل خارج الجسم. هذا الإجراء الأكثر مماثلة للتي يؤديها في البشر. ومع ذلك، لا تسمح بتطوير التجارب الطويلة الأجل، كما أنها قد تزيد من فرص الإصابة ب، وعموما يتطلب استخدام التخدير لغرس قوات الدفاع الشعبي، التي قد تتداخل مع النتائج. الأسلوب الثالث هو “نظام مغلق”. مع هذا النهج، يقع كامل الجهاز المستخدم لتقطير السوائل داخل جسم الحيوان. يتم حقن السائل بإبرة عن طريق منفذ وصول، التي توضع تحت الجلد. هذا الإجراء يقلل من خطر العدوى البريتوني والنزيف، فضلا عن الحاجة للتخدير.

لدراسة تأثير تبولن في شعبة البرامج، كان أيضا نموذجا مورين الأخيرة المقرر40 استناداً إلى نموذج PDF التسريب بالقسطرة. يجمع هذا النموذج في تقنية رواية القيام استئصال في الفئران، مما يقلل من وظيفة الكلي. وقد وضعت في هذه المادة، تعديل البروتوكول تستخدمهم فيرانتيلي et al. في عام 201540 . يسمح هذا البروتوكول الجديد يقلل من طول الجرح أثناء جراحة زرع القسطرة أثناء استئصال، وتيسير الوصول إلى الكلي.

Protocol

عليها جميع الأساليب الموصوفة هنا برعاية الحيوان المؤسسية واستخدام اللجنة البيولوجيا الجزيئية مركز سيفيرو أوتشوا (مدريد، إسبانيا). ملاحظة: استخدمت C57BL/6J الفئران الإناث الذين تتراوح أعمارهم بين 12 و 14 أسبوعا ووزنها حوالي 20 غ في بداية الدراسة. جميع الحيوانات تم إيواء تحت الظرو?…

Representative Results

ويبين الشكل 1 جميع المواد المطلوبة لاتباع الإجراءات الموضحة في قسم البروتوكول. على سبيل المثال، الفئران المقدمة أو عدم استئصال (8 الحيوانات في كل مجموعة) (الشكل 2) تعرضت خلال 40 يوما (اثنين الحقن يوميا، الانتظار ساعتين على الأقل بين على حد سو?…

Discussion

البيانات المنشورة أول تحليل التعديلات PD باستخدام تقنية “إغلاق نظام” أجريت في 200929 . نظام إغلاق هذا يعني أن الجهاز أكمله يقع داخل الجسم ويتم حقن السائل بإبرة عن طريق منفذ وصول. المشكلة التقنية الأكثر أهمية في المدى الطويل نماذج حيوانية لضخ السوائل عن طريق قسطرة هو حدوث إعاقة. الخ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

يشكر المؤلفون فيرانتيلي هاء وزاي لياباس لدعمها في إعداد البروتوكول استئصال 5/6، ر. سانشيز-دياز وف. مارتين للمساعدة مع تقييمات أورييك النيتروجين، وهيفيا هاء وواو نونيز للمساعدة على رعاية الفئران. هذا العمل كان يدعمها المنح SAF2016-80648R من “الوزارة دي الاقتصاد y كومبيتيتيفيداد”/الإقليمية فوندو Europeo de Desarrollo (مينيكو/FEDER) مانويل لوبيز-كابريرا وبي 15/00598 من سانيتارياس فوندو للبحوث (الجبهة الإسلامية للإنقاذ)-FEDER الأموال، إلى ابيﻻردو أغيليرا.

Materials

Minute Mouse Port 4French with retention beads and cross holes Access technologies MMP-4S-061108A
Posi-Grip Huber point needles 25 ga. X 1/2´´  Access technologies PG25-500
High Temperature Cautery Kit Bovie 18010-00
Forane abbVie 880393.4 HO
non absorbable suture 6/0 Laboratorio Agaró 6121
Scissors  Fine Science Tools 14079-10
forceps Fine Science Tools 11002-12
clamp Fine Science Tools 13002-10
Buprenorphine 0,3 mg/ml pharmaceutical product
cotton swabs pharmaceutical product
Dalsy (Ibuprofen) 20mg/mL oral suspension AbbVie S.R.L.  pharmaceutical product

References

  1. Meyer, T. W., Hostetter, T. H. Uremia. New England Journal of Medicine. 357 (13), 1316-1325 (2007).
  2. Pyper, R. A. Peritoneal Dialysis. Ulster Medical Journal. 17 (2), 179-187 (1948).
  3. Chaimovitz, C. Peritoneal dialysis. Kidney International. 45 (4), 1226-1240 (1994).
  4. Aguilera, A., Yanez-Mo, M., Selgas, R., Sanchez-Madrid, F., Lopez-Cabrera, M. Epithelial to mesenchymal transition as a triggering factor of peritoneal membrane fibrosis and angiogenesis in peritoneal dialysis patients. Current Opinion in Investigational Drugs. 6 (3), 262-268 (2005).
  5. González-Mateo, G. T., et al. Pharmacological modulation of peritoneal injury induced by dialysis fluids: is it an option. Nephrology Dialysis Transplantation. , (2011).
  6. Mateijsen, M. A., et al. Vascular and interstitial changes in the peritoneum of CAPD patients with peritoneal sclerosis. Peritoneal Dialysis International. 19 (6), 517-525 (1999).
  7. Williams, J. D., et al. Morphologic changes in the peritoneal membrane of patients with renal disease. Journal of the American Society of Nephrology. 13 (2), 470-479 (2002).
  8. Dobbie, J. W. Pathogenesis of peritoneal fibrosing syndromes (sclerosing peritonitis) in peritoneal dialysis. Peritoneal Dialysis International. 12 (1), 14-27 (1992).
  9. Loureiro, J., et al. Blocking TGF-beta1 protects the peritoneal membrane from dialysate-induced damage. Journal of the American Society of Nephrology. 22 (9), 1682-1695 (2011).
  10. Aroeira, L., et al. Epithelial to mesenchymal transition and peritoneal membrane failure in peritoneal dialysis patients: pathologic significance and potential therapeutic interventions. Journal of the American Society of Nephrology. 18 (7), 2004-2013 (2007).
  11. Zhang, J., et al. Regulatory T cells/T-helper cell 17 functional imbalance in uraemic patients on maintenance haemodialysis: A pivotal link between microinflammation and adverse cardiovascular events. Nephrology. 15 (1), 33-41 (2010).
  12. Welten, A. G., et al. Single exposure of mesothelial cells to glucose degradation products (GDPs) yields early advanced glycation end-products (AGEs) and a proinflammatory response. Peritoneal Dialysis International. 23 (3), 213-221 (2003).
  13. De Vriese, A. S., Tilton, R. G., Mortier, S., Lameire, N. H. Myofibroblast transdifferentiation of mesothelial cells is mediated by RAGE and contributes to peritoneal fibrosis in uraemia. Nephrology Dialysis Transplantation. 21 (9), 2549-2555 (2006).
  14. Rodela, H., Yuan, Z., Hay, J., Oreopoulos, D., Johnston, M. Reduced lymphatic drainage of dialysate from the peritoneal cavity during acute peritonitis in sheep. Peritoneal Dialysis International. 16 (2), 163-171 (1996).
  15. Barrell, G. K., McFarlane, R. G., Slow, S., Vasudevamurthy, M. K., McGregor, D. O. CAPD in sheep following bilateral nephrectomy. Peritoneal Dialysis International. 26 (5), (2006).
  16. Schambye, H. T., et al. Bicarbonate- versus lactate-based CAPD fluids: a biocompatibility study in rabbits. Peritoneal Dialysis International. 12 (3), 281-286 (1992).
  17. Garosi, G., Gaggiotti, E., Monaci, G., Brardi, S., Di Paolo, N. Biocompatibility of a peritoneal dialysis solution with amino acids: histological evaluation in the rabbit. Peritoneal Dialysis International. 18 (6), 610-619 (1998).
  18. Elema, J. D., Hardonk, M. J., Koudstaal, J., Arends, A. Acute enzyme histochemical changes in the zona glomerulosa of the rat adrenal cortex. I. The effect of peritoneal dialysis with a glucose 5 percent solution. Acta endocrinologica (Oslo). 59 (3), 508-518 (1968).
  19. Liard, J. Influence of sodium withdrawal by a diuretic agent or peritoneal dialysis on arterial pressure in one-kidney Goldblatt hypertension in the rat. Pflügers Archives. 344, 109-118 (1973).
  20. Beelen, R. H., Hekking, L. H., Zareie, M., vanden Born, J. Rat models in peritoneal dilysis. Nephrology Dialysis Transplantation. 16 (3), 672-674 (2001).
  21. Sun, Y., et al. Treatment of established peritoneal fibrosis by gene transfer of Smad7 in a rat model of PD. American Journal of Nephrology. 30 (1), 84-94 (2009).
  22. Schilte, M. N., et al. Peritoneal dialysis fluid bioincompatibility and new vessel formation promote leukocyte-endothelium interactions in a chronic rat model for peritoneal dialysis. Microcirculation. 17 (4), 271-280 (2010).
  23. Peng, Y. M., et al. A new non-uremic rat model of long-term peritoneal dialysis. Physiological Research. 60 (1), 157-164 (2011).
  24. Stavenuiter, A. W., Farhat, K., Schilte, M. N., Ter Wee, P. M., Beelen, R. H. Bioincompatible impact of different peritoneal dialysis fluid components and therapeutic interventions as tested in a rat peritoneal dialysis model. International Journal of Nephrology. 2011, 742196 (2011).
  25. Loureiro, J., et al. BMP-7 blocks mesenchymal conversion of mesothelial cells and prevents peritoneal damage induced by dialysis fluid exposure. Nephrology Dialysis Transplantation. 25 (4), 1098-1108 (2010).
  26. Duman, S., et al. Does enalapril prevent peritoneal fibrosis induced by hypertonic (3.86%) peritoneal dialysis solution?. Peritoneal Dialysis International. 21 (2), 219-224 (2001).
  27. Duman, S., et al. Intraperitoneal enalapril ameliorates morphologic changes induced by hypertonic peritoneal dialysis solutions in rat peritoneum. Advances in Peritoneal Dialysis. 20, 31-36 (2004).
  28. Duman, S., Sen, S., Duman, C., Oreopoulos, D. G. Effect of valsartan versus lisinopril on peritoneal sclerosis in rats. International Journal of Artificial Organs. 28 (2), 156-163 (2005).
  29. González-Mateo, G. T., et al. Chronic exposure of mouse peritoneum to peritoneal dialysis fluid: structural and functional alterations of the peritoneal membrane. Peritoneal Dialysis International. 29 (2), 227-230 (2009).
  30. González-Mateo, G. T., et al. Modelos animales de diálisis peritoneal: relevancia, dificultades y futuro. Nefrología. Supl. 6, 17-22 (2008).
  31. Rodrigues-Diez, R., et al. IL-17A is a novel player in dialysis-induced peritoneal damage. Kidney International. 86 (2), 303-315 (2014).
  32. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Pharmacological modulation of peritoneal injury induced by dialysis fluids: is it an option. Nephrology Dialysis Transplantation. 27 (2), 478-481 (2012).
  33. Liappas, G., et al. Immune-Regulatory Molecule CD69 Controls Peritoneal Fibrosis. Journal of the American Society of Nephrology. 27 (12), 3561-3576 (2016).
  34. Aroeira, L. S., et al. Cyclooxygenase-2 Mediates Dialysate-Induced Alterations of the Peritoneal Membrane. Journal of the American Society of Nephrology. 20 (3), 582-592 (2009).
  35. Sandoval, P., et al. PPAR-[gamma] agonist rosiglitazone protects peritoneal membrane from dialysis fluid-induced damage. Laboratory Investigation. 90 (10), 1517-1532 (2010).
  36. Loureiro, J., et al. Tamoxifen ameliorates peritoneal membrane damage by blocking mesothelial to mesenchymal transition in peritoneal dialysis. PLoS One. 8 (4), e61165 (2013).
  37. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Paricalcitol reduces peritoneal fibrosis in mice through the activation of regulatory T cells and reduction in IL-17 production. PLoS One. 9 (10), e108477 (2014).
  38. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Rapamycin Protects from Type-I Peritoneal Membrane Failure Inhibiting the Angiogenesis, Lymphangiogenesis, and Endo-MT. BioMed Research International. 2015, 989560 (2015).
  39. Liappas, G., et al. Nebivolol, a beta1-adrenergic blocker, protects from peritoneal membrane damage induced during peritoneal dialysis. Oncotarget. 7 (21), 30133-30146 (2016).
  40. Ferrantelli, E., et al. A Novel Mouse Model of Peritoneal Dialysis: Combination of Uraemia and Long-Term Exposure to PD Fluid. Biomed Research International. 2015, 106902 (2015).
  41. Altmann, C., et al. Early peritoneal dialysis reduces lung inflammation in mice with ischemic acute kidney injury. Kidney International. 92 (2), 365-376 (2017).
  42. Peters, T., et al. Mouse model of foreign body reaction that alters the submesothelium and transperitoneal transport. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 300 (1), F283-F289 (2011).
  43. Flessner, M. F., et al. Peritoneal changes after exposure to sterile solutions by catheter. Journal of the American Society of Nephrology. 18 (8), 2294-2302 (2007).
check_url/56746?article_type=t

Play Video

Cite This Article
González-Mateo, G. T., Pascual-Antón, L., Sandoval, P., Aguilera Peralta, A., López-Cabrera, M. Surgical Techniques for Catheter Placement and 5/6 Nephrectomy in Murine Models of Peritoneal Dialysis. J. Vis. Exp. (137), e56746, doi:10.3791/56746 (2018).

View Video