Summary

כרומטין יליד Immunoprecipitation באמצעות המוח מאתר הגידול Neurospheres

Published: January 29, 2018
doi:

Summary

מנגנוני epigenetic משתנים לעתים קרובות ב glioma. כרומטין immunoprecipitation יכול לשמש כדי לחקור את ההשלכות של שינויים גנטיים ב glioma הנובעות משינויים שינויים היסטון המסדירה שעתוק גנים ומבנה כרומטין. פרוטוקול זה מתאר כרומטין יליד immunoprecipitation על המוח מאתר הגידול neurospheres.

Abstract

שינויים epigenetic עשוי להיות מעורב של התפתחות והתקדמות של glioma. שינויים מתילציה וכן acetylation של היזמים ואזורים הרגולציה של oncogenes, מדכאי הגידול יכול להוביל שינויים בביטוי הגנים, יש תפקיד חשוב בפתוגנזה של גידולים במוח. כרומטין מקורי immunoprecipitation (ChIP) היא טכניקה פופולרית המאפשרת זיהוי שינויים או חלבונים אחרים הלחוצים ל- DNA. בניגוד לשבב צולבים, יליד שבב, התאים לא מטופלים עם פורמלין לקשר covalently חלבון ל- DNA. זה יתרון כי לפעמים crosslinking עלולה לתקן את החלבונים בלבד transiently אינטראקציה עם ה-DNA, אין משמעות תפקודית הכונה. בנוסף, בדרך כלל גדלים נוגדנים נגד פפטידים מבולבל. לכן, ירידה לפרטים נוגדן מתגברת בשבב מקורית. עם זאת, חשוב לזכור כי השבב יליד ישימה רק ללמוד שינויים היסטוניים או חלבונים אחרים בחוזקה לאגד את הדנ א. פרוטוקול זה מתאר את immunoprecipitation כרומטין מקורית על המוח מאתר הגידול neurospheres.

Introduction

אירועים epigenetic שכיחים ב gliomas, סביר לשחק תפקיד חשוב בפתוגנזה הגידול. אכן, ילדים glioma בדרגה גבוהה, מוטציות בגנים קידוד היסטון גרסאות H3.3 ו- H3.1 מתרחשים לעתים קרובות1. מוטציות משפיעות על שינויים היסטון ויש השלכות epigenetic הגדולות2,3. הנער המתבגר לקשת למבוגרים, חוזרים ונשנים מוטציות בגן isocitrate דהידרוגנאז 1/2 (IDH1/2), מוטציה אשר מעכב α-ק ג היסטון תלויים ו- DNA דה-methylasaes, שינויים גנטיים של הרגולטורים כרומטין אחרים כגון ATRX ו- DAXX מתרחשים 4. לכן, יש חשיבות קריטית כדי ללמוד איך מוטציות המשפיעות על הרגולטורים epigenetic לשנות הכרומטין ושינויים רגולטוריים היסטון, אשר, בתורו, יש השפעה דרמטית של transcriptome של תאי הגידול.

Immunoprecipitation כרומטין (ChIP) הוא כלי רב עוצמה המשמש כדי להעריך את ההשפעה של שינויים epigenetic הגנום6,5,, או7. בצ’יפ מקורי, כרומטין מתעכלת עם נוקלאז micrococcal (MNase), immunoprecipitated באמצעות נוגדן שהועלו כנגד החלבון של עניין, ולאחר מכן הדנ א הוא מטוהרים מורכבים כרומטין6immunoprecipitated. התאים אינם מתוקנים במהלך ההליך אז טכניקה זו ישימה רק לצורך המחקר של חלבונים המקיימים אינטראקציה באופן הדוק עם דנ א6. העדר cross-linking עזרי נוגדן ירידה לפרטים מאז נוגדנים גדלים בדרך כלל נגד פפטידים או חלבונים מבולבל7. בנוסף, מכיוון שאין שום צעד cross-linking, זה מפחית את הסיכוי של תיקון אינטראקציות חלבון-אן ארעי, כי הם לא ספציפית ותקינה לא7,8. שבב יכול לשמש כדי לזהות את העשרת של היסטון שינויים באזור גנומית מסוים. כאן, אנו מפרטים פרוטוקול עבור ביצוע צ’יפ מקורי ב- neurospheres (NS) המופקים גנטית מהונדסים העכבר מודלים של glioma.

Protocol

כל השיטות המתוארות כאן אושרו על ידי טיפול בעלי חיים מוסדיים ועל שימוש הוועדה (IACUC) של אוניברסיטת מישיגן. 1. דור של גידול במוח NS ו culturing תנאים. להכין בינוני תאי גזע עצביים (המל ל) עם תוספת ששינה נשר בינוני/F12B27 (1 x) של Dulbecco, תוספת N2 (1 x) ו של ריאגנט מיקרוביאלית. תוספת לבטחון לאומי…

Representative Results

ייצוג סכמטי של הגידול NS שנוצר בגלל גידול במוח תאים סרטניים במוח איפה Katushka חיובי מוצג באיור1. איור 2 היא ייצוג סכמטי של הטכניקה שבב כולו. איור 3 מראה התוצאות נציג של כרומטין של גידול במוח NS מתעכל עם MNase למשך 12 דקות, מניב רוב מונ?…

Discussion

פרוטוקול המובאת כאן יאפשר למשתמש לבצע צ’יפ מקורי-NS נגזר גידולים במוח מהונדסים גנטית. בניגוד cross-linking שבב, פרוטוקול זה מוגבל לצורך המחקר של חלבונים המשייכים בחוזקה דנ א6. ניתן לשנות את מספר התאים להשתמש לפי הצורך, וניתן לשנותם הפרוטוקול. השתמשנו עונה 1 פרק 106 תאי ה-IP, עם זאת, י…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי נבחרת מוסדות של בריאות/לאומי המכון של הפרעות נוירולוגיות & קו (NIH/NINDS) מענקים R37-NS094804, R01-NS074387, R21-NS091555 כדי M.G.C.; NIH/NINDS מעניקה R01-NS076991 R01-NS082311, R01-NS096756 P.R.L.; NIH/NINDS R01-EB022563; במחלקה הנוירוכירורגית; של לאה לבבות שמח ואת קרן למרות צ’אד M.G.C. P.R.L. RNA וההתערבות גרנט F046166 כדי M.G.C. F.M.M. נתמך על ידי F31 NIH/NINDS-F31NS103500. R.I.Z.-V. הוא נתמך על ידי NIH / NIGMS הענק 5T34GM007821-37.

Materials

Agilent 2100 Bioanalyzer Agilent G2946-90004 bioanalyzer
AccuSpin Micro 17R, refrigerated Fisher Scientific 13-100-676
C57BL/6 Taconic B6-f C57BL/6 mouse
Calcium Chloride Aldrich 22350-6 buffer reagent
D-Luciferin, Potassium Salt Goldbio LuckK-1g
DiaMag1.5 magnetic rack Diagenode B04000003 for magnetic bead washes
DiaMag Rotator EU Diagenode B05000001 rotator
DMEM/F-12 Gibco 11330-057 NSC component
Dynabeads Protein A Thermo Fisher Scientific 10001D protein A magnetic beads
Dynabeads Protein G Thermo Fisher Scientific 10003D protein G magnetic beads
EGF PeproTech AF-100-15 prepare 20 μg/mL stock in 0.1% BSA and aliquot.
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma E-4884 buffer reagent
ethylene glycol-bis(β-aminoethyl ether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid) (EGTA) Sigma E-4378 buffer reagent
Fast SYBR Green Master Mix Applied Biosystems 4385612 qPCR reagent
Fetal Bovine Serum Gibco 10437028 for freezing cells
FGF PeproTech 100-18b Prepare 20 μg/mL stock in 0.1% BSA and aliquot.
Forceps Fine Science Tools 11008-13 for dissection of tumor
Glycerol, MB Grade EMD- Millipore 356352
H3K4me3 Abcam Ab8580
H3K27me3 Millipore 07-449
HBSS Gibco 14175-103 balanced salt solution
Fluriso VETone 501017 inhalation anesthetic
Ivis Spectrum Perkin-Elmer 124262 in vivo optical imaging system
Hyqtase HyClon SV3003001 cell detachment media
Lithium Chloride Sigma L8895 buffer reagent
Low binding microtubes Corning Costar CLS3207 low protein binding microcentrifuge tube
Microcentrifuge tube Fisher 21-402-903 regular microcentrifuge tube
Micrococcal Nuclease Thermo Fisher Scientific, Affymetrix 70196Y each batch may differ; purchase sufficient amount for experiments and aliquot.
N2 Gibco 17502-048 NSC component
Normal Rabbit IgG Millipore 12-372
Normocin Invivogen NOL-36-063 anti-microbial agent, use at 0.1 mg/mL.
NP-40 (Igepal CA-630) Sigma 18896-50ML buffer reagent
Kimble Kontes Pellet Pestle Fisher Scientific K749515-0000
Protease Inhibitor Cocktail Sigma-Aldrich P8340 aliquot and store at -20 °C.
Protinase K Sigma-Aldrich P2308 make 10 mg/mL stock in water; aliquot and store at -20 °C.
QIAquick PCR Purification Kit Qiagen 28104 DNA purification kit
Scalpel Fine Science Tools 10007-16 for dissection of tumor
Sodium Chloride VWR 0241-5KG buffer reagent
Sodium Deoxycholate Sigma-Aldrich D670-25G buffer reagent
Sodium Dodecyl sulfate (SDS) Sigma L-4390 buffer reagent
Tris Base Thermo Fisher Scientific Bp152-1 buffer reagent
Triton X-100 Thermo Fisher Scientific BP 151-500 polyethylene glycol octylphenyl ether
Standard Mini Centrifuge Fisherbrand 12-006-901 standard mini centrifuge
SZX16 microscope Olympus SZX16 flourescent dissecting microscope
ViiA 7 Real-Time PCR System with Fast 96-Well Block Applied Biosystems 4453535
Nanodrop One Thermo-Fisher Scientific ND-ONEC-W

References

  1. Schwartzentruber, J., et al. Driver mutations in histone H3.3 and chromatin remodelling genes in paediatric glioblastoma. Nature. 482 (7384), 226-231 (2012).
  2. Bjerke, L., et al. Histone H3.3. mutations drive pediatric glioblastoma through upregulation of MYCN. Cancer Discov. 3 (5), 512-519 (2013).
  3. Bender, S., et al. Reduced H3K27me3 and DNA hypomethylation are major drivers of gene expression in K27M mutant pediatric high-grade gliomas. Cancer Cell. 24 (5), 660-672 (2013).
  4. Maleszewska, M., Kaminska, B. Is glioblastoma an epigenetic malignancy?. Cancers (Basel). 5 (3), 1120-1139 (2013).
  5. Gilfillan, G. D., et al. Limitations and possibilities of low cell number ChIP-seq. BMC Genomics. 13, 645 (2012).
  6. Thorne, A. W., Myers, F. A., Hebbes, T. R. Native chromatin immunoprecipitation. Methods Mol Biol. 287, 21-44 (2004).
  7. Turner, B. . Mapping Protein/DNA Interactions by Cross-Linking. , (2001).
  8. Tseng, Z., Wu, T., Liu, Y., Zhong, M., Xiao, A. Using native chromatin immunoprecipitation to interrogate histone variant protein deposition in embryonic stem cells. Methods Mol Biol. 1176, 11-22 (2014).
  9. Calinescu, A. A., et al. Transposon mediumted integration of plasmid DNA into the subventricular zone of neonatal mice to generate novel models of glioblastoma. J Vis Exp. (96), (2015).
  10. Sambrook, J., Russell, D. W. Estimation of cell number by hemocytometry counting. CSH Protoc. 2006 (1), (2006).
  11. Landt, S. G., et al. ChIP-seq guidelines and practices of the ENCODE and modENCODE consortia. Genome Res. 22 (9), 1813-1831 (2012).
  12. Kubista, M., et al. The real-time polymerase chain reaction. Mol Aspects Med. 27 (2-3), 95-125 (2006).
  13. Hwang, W. W., et al. Distinct and separable roles for EZH2 in neurogenic astroglia. Elife. 3, e02439 (2014).
  14. Haring, M., et al. Chromatin immunoprecipitation: optimization, quantitative analysis and data normalization. Plant Methods. 3, 11 (2007).
check_url/57016?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Mendez, F. M., Núñez, F. J., Zorrilla-Veloz, R. I., Lowenstein, P. R., Castro, M. G. Native Chromatin Immunoprecipitation Using Murine Brain Tumor Neurospheres. J. Vis. Exp. (131), e57016, doi:10.3791/57016 (2018).

View Video