Summary
Transtorno de uso de álcool (AUD) é um problema de saúde nacional e o desenvolvimento de tratamentos mais eficazes é necessário para compensar as necessidades desta população de pacientes. Para este fim, o seguinte protocolo utiliza dois modelos simples roedores bebendo para avaliar a eficácia pré-clínica de compostos de chumbo anti-álcool.
Abstract
Transtorno de uso de álcool (AUD) é um grande problema com mais do que um estimado 76 milhões pessoas em todo o mundo, conhecer os critérios de diagnóstico. Os tratamentos atuais são limitados a três medicamentos aprovados pela FDA que são em grande parte ineficazes, mesmo quando combinado com psicossocial intervenção, como é evidente pelo alto recaída taxa. Como tal, a busca de tratamentos mais novos representa uma meta importante da saúde pública. Para este fim, o seguinte protocolo utiliza dois modelos simples roedores bebendo para avaliar a eficácia pré-clínica de compostos de chumbo antiálcool: escolha dois-garrafa (TBC) e beber no escuro (DID). A primeira permite que ratos voluntária beber com moderação, enquanto este último induz ratos para voluntária consomem uma grande quantidade de álcool em um curto período que imita uma bebedeira. A natureza simples e alta taxa de transferência dos dois desses paradigmas permitem para a seleção rápida de agentes farmacológicos ou para identificar cepas de camundongos que apresentam certo comportamento bebendo voluntário.
Introduction
Durante os últimos 25 e mais anos, foi colocado um esforço significativo no sentido de desenvolver medicamentos para o tratamento do transtorno de uso de álcool (AUD)1. Embora muitos avanços foram feitos, AUD continua a ser um problema de saúde pública, afetando mais 18 milhões de americanos e custando mais de US $ 220 bilhões anualmente2,3. Atualmente, existem apenas três medicamentos aprovados pela FDA, dissulfiram, naltrexona e acamprosato, os quais produziram resultados inconsistentes em ensaios clínicos e sucesso limitado, mesmo quando combinado com intervenção psicossocial nas configurações da clínica 4 , 5 , 6 , 7.
A principal razão para falhas de terapia atual AUD está ligada à natureza heterogênea de AUD8. Enquanto fatores genéticos e ambientais contribuem para o desenvolvimento de AUD, herdabilidade contabiliza estima-se 50-60% do risco de aparecimento de9. Semelhantes para o tratamento da depressão, é amplamente aceito que pacientes que sofrem de AUD vão precisar de uma variedade de medicamentos que são adaptados para atender as necessidades de cada paciente10.
Claramente, há uma necessidade urgente de tratamentos mais eficazes que seria facilitada se o já árduo e demorado processo de descoberta de drogas foram racionalizados3. Para este fim, o protocolo seguinte demonstra a aplicabilidade pré-clínicos de dois modelos de beber roedores, amplamente utilizado para examinar a base Neurobiológica do AUD11. Mais especificamente, o método apresentado neste documento pode avaliar a eficácia dos compostos candidatos a reduzir álcool consumo "moderado" e "binge beber" cenários utilizando a escolha de dois-garrafa (TBC) e beber no escuros paradigmas (DID), respectivamente. Ambos os paradigmas examinam auto-administração etanol não-operante, no qual ratos ingerem etanol por via oral e à vontade e, portanto, ilustram o cara alta e construir validade como modelo de alcoolismo humano11.
No TBC, bebendo, também conhecido como livre escolha, beber, beber, de preferência ou beber social, duas garrafas de solução são continuamente disponíveis na gaiola em casa. Uma garrafa contém água, e o outro contém uma solução diluída de etanol, segundo a qual a concentração de etanol pode ser variada (EG., 5-30% v/v) de11,12. Os ratos têm acesso constante para as duas garrafas e portanto, podem escolher o quanto beber de cada garrafa.
Este modelo avalia o consumo de etanol de cada rato (g/kg), bem como a relação de preferência etanol (volume de álcool consumido ÷ volume total líquido consumido). Rotineiramente é usado para comparar os níveis de consumo através de diferentes cepas de ratos, ou após uma manipulação genética específica (ex., gene nocaute ou nocaute) e resultados em etanol concentrações sanguíneas (BECs) semelhantes ao que é encontrado nos seres humanos quando bebendo em moderação13,14.
O procedimento de DID, 3 h após o início do ciclo escuro, a garrafa de gaiola em casa de água é trocada com um frasco de solução de etanol 20% (v/v) para um acesso limitado a sessão a beber. As sessões de bebedeira ocorrem como um ciclo de 4 dias consecutivo, 2h duradoura nos dias 1-3 e 4 h no dia 4. Dias 1-3 servem como um período de habituação de álcool antes do testar no dia 4. Consequentemente, os ratos confiantemente consumirá suficiente etanol para alcançar BECs > 100 mg/dL e apresentam como resultado, os efeitos comportamentais de intoxicação encontrados em humanos que são13,14,15de bebedeira. Acesso à água é disponível em todos os momentos que não sejam os copos.
Existem diversas variações de acesso limitado a beber. Por exemplo, o modelo de acesso intermitente, ratos recebem duas garrafas (uma com água e o outro contendo álcool etílico 20% (v/v)) apenas na segunda, quarta e sexta-feira com um intervalo de 24 h e 48 h em dias úteis e fins de semana, respectivamente16. Após várias semanas de acesso intermitente, os ratos vão gradualmente e voluntariamente escalar níveis, eventualmente alcançando BECS semelhante ao que é observado no modelo DID a beber. O DID, no entanto, parece ser o modelo mais comumente usado para avaliar o comportamento de beber farra. Existem outros modelos de beber intermitentes, mas eles dependem de restringir o acesso à comida ou vapor câmara induzida aumentos de auto-administração voluntária, o que os torna menos representativos do consumo de álcool humana voluntária16.
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Protocol
Todos os procedimentos descritos aqui foram aprovados pelo cuidado de Animal institucional e comissões de utilização do Campus de Ciências de saúde da Universidade do Sul da Califórnia.
1. montagem e instalação experimental
- Adquirir todos os seguintes suprimentos e produtos químicos antes do início do estudo: ratos, tops de gaiola gaiolas/metal, roupa de cama, comida, água, etanol, pipetas de, no máximo sipper, encolhem envoltório, faca de serviço público, sacos de plástico, fita, bico de Bunsen, escala, farol.
- Obter camundongos C57BL/6J, ou de uma fonte comercial ou uma colônia in-house, mantendo em mente que os ratos pode ser grupo alojado até o momento do teste.
Nota: O número total de ratos adquiridos depende da complexidade do projeto experimental. Plano para acomodar cerca de 12-15 ratos por grupo, com não menor do que os ratos de 5-7 por grupo de estudos-piloto. Nos resultados representativos mostrados abaixo, utilizamos uma afinação simples do dois-grupo para avaliar a relação de causa-efeito, utilizando uma única dose (5 mg/kg) da droga (MOX). - Siga os passos abaixo para montar as garrafas18.
- Aqueça uma faca de serviço público, usando um bico de Bunsen.
- Usando esta faca, corte aproximadamente uma polegada fora as extremidades superior e inferior de uma pipeta sorológica de plástico 18ml.
- Observe que as pipetas de volume menores (ou seja, 10 mL) também podem ser usadas para aumentar a precisão da medição.
- Aquecer a pipeta sob um soprador de ar quente.
- Insira o tubo de sipper do rolamento de esferas para o fim de "fundo" da pipeta (em outras palavras, a abertura mais próximo o traço-linha 18 mL).
- Sele o tubo sipper no lugar com envoltório do psiquiatra usando uma arma de envoltório do psiquiatra comercialmente disponível.
- O outro a tampa de abertura com uma rolha de silicone.
2. animal habituação
- Começando pelo menos 1 semana antes da data de início do experimento, transferir os ratos para a sala onde os procedimentos experimentais são a efectuar para que eles podem se aclimatar às condições de criação (incluindo a temperatura ambiente (21 ± 1 ° C) e 12-h reverter o ciclo claro/escuro, com luzes fora às 12:00). Não se esqueça de seguir as orientações institucionais e notificar os canais apropriados antes de se mudar os animais de um local para outro.
- Se os ratos estão sendo transferidos de um ciclo claro/escuro padrão permitem que 2 semanas de tempo de habituação adicionais.
- Encha as garrafas recém-feitos até a borda com água. Certifique-se de que a tampa está fechada firmemente e desprovido de quaisquer bolhas de ar ou vazamentos pelo bico. Se a solução está vazando, volte a fixar a tampa. Remova quaisquer bolhas de ar, simplesmente tocando na garrafa para que o ar pode escapar do tubo.
- À chegada, única casa cada rato em gaiolas de policarbonato/polysulfone padrão com roupa de cama e um top de gaiola de grelha metálica; Remova a tampa da gaiola como já não será usado.
- Fornece acesso a comida e water bottle(s) ad libitum.
- Prenda cada garrafa para o topo da gaiola envolvendo uma gravata de plástico zip em torno de cada garrafa segurá-lo no lugar. Apare qualquer excesso plástico do empate de fecho de correr para garantir que ele não se projeta para a jaula.
Nota: Para a bebida no escuro (DID) procedimento, é necessária apenas uma garrafa de água. Habituação ao paradigma de escolha (TBC) duas garrafa, no entanto, exige que a afinação de gaiola incluem duas garrafas de água. Se o funil de metal grade fornecido é ideal para conter apenas um único frasco de solução, suavemente dobre pedaços seus bares para criar espaço para uma placa adicional acomodar a segunda garrafa para TBC.
- Criado pelo menos 3 gaiolas de livre de controle do mouse. Isto permitirá o monitoramento de qualquer fluida perda causada pela evaporação ou derramamento de garrafas, que é simplesmente uma ocorrência natural que acontece como as gaiolas são colocadas dentro e fora do rack gaiola (consulte a etapa 2.6.3, 3.6.1 e 4.6.1 para equações).
- Começando no dia 4 de aclimatação o corpo único de 1 semana, medir e registrar os pesos de corpo e comida diários de cada mouse, usando uma escala, (em gramas), bem como a ingestão de água, usando as marcas ao lado da garrafa invertida para gravar o ponto mais alto do menisco (em mL).
- Embora seja prática científica padrão para ler o ponto mais baixo do menisco côncavo, porque as garrafas permanecem em uma posição invertida durante a medição, registro o ponto mais alto do menisco.
- Avalie os parâmetros de 2.5 utilizando as equações abaixo:
- Medir a mudança de peso do corpo (g): peso do dia atual (g) - peso do dia anterior (g).
- Medir a ingestão de alimentos (g): peso do alimento no dia anterior (g) - peso do alimento no dia atual (g).
- Medir o consumo de água (mL): perda de água média [volume de água no dia atual (mL) - volume de água no dia anterior (mL)] - de todas as gaiolas de controle (mL).
- Repita a etapa 2.5 consecutivamente, nos dias 5-7, para permitir a determinação de uma linha de base para os três dias imediatamente antes da introdução do etanol. Se uma gravação consecutiva não pode ser coletada, estenda o período de aclimatação para permitir a avaliação das medições de linha de base.
- Uma vez que a ingestão de água estabilizou-se a variabilidade de ± 10% da média dos últimos 3 dias, começa o acesso do etanol com TBC (acesso ilimitado) ou DID (acesso limitado).
Nota: Em raras ocasiões, um ou dois dias adicionais podem ser necessários para os indivíduos atingir essa estabilidade; Não se assuste se é necessário um tempo adicional para os valores exibir a variabilidade de ± 10% da média dos últimos 3 dias.
3. 24 horas duas garrafa escolha (a confirmar)
Nota: Um esquema está disposto na Figura 1.
- Preparar uma solução de etanol de 10% (v/v) em um volume de 500 mL, adicionando 52,65 mL de etanol de cereais prova 190 (~ 95% de etanol) para 447,35 mL de H2O; Certifique-se de agitar cuidadosamente. Dado que o álcool evapora rapidamente, substitua a solução no intervalo do diariamente 3-4.
Nota: Outras concentrações de etanol podem ser usadas também, mas os autores recomendam uma concentração de 10% para este modelo. - No primeiro dia do TBC, (dia 8, na melhor das hipóteses) vazio de 1 a 2 garrafas de água, em cada gaiola e encha-o até a borda com a solução recentemente preparada de etanol. Dado que o álcool etílico e água são difíceis de distinguir visualmente, claramente rotule as garrafas com seu conteúdo correspondente. Basta aplica um pedaço de fita para a garrafa de mascaramento e rotulando-o com um marcador ou escrevendo diretamente na garrafa.
- Adicione mais solução para a garrafa de água, conforme necessário.
- Coloque garrafas de volta na gaiola, certificando-se de que todas as tampas estão bem fechadas e desprovido de quaisquer bolhas de ar ou vazamentos pelo bico. Se a solução está vazando, volte a fixar a tampa. Remova quaisquer bolhas de ar, simplesmente tocando na garrafa para que o ar pode escapar a garrafa.
- Suplente a posição das garrafas de todos os outros dias como a correta para a preferência de lugar condicionado relacionada influencia na atividade de beber (veja a discussão para mais).
- Além das medições diárias de 2.5 e 2.6, que tem sido em curso, começa a ler e gravar também níveis de ingestão de etanol. Analise a relação de consumo e preferência de 10% de etanol utilizando as seguintes equações:
- Medir a 10% o consumo de etanol (mL): [volume de etanol no dia atual (mL) - volume de etanol no dia anterior (mL))]-média de perda de etanol de todas as gaiolas de controle (mL).
- Medir os 10% ingestão de etanol (g/kg): [10% de etanol ingestão (mL) x 0,07893 g/mL] / corpo peso (kg).
- Medir o % de preferência: [10% ingestão de etanol (mL) / água (mL)] x 100.
- Tão logo a ingestão de etanol tornou-se estável, administre uma injeção de (salina) intraperitoneal (i.p.) único controle (0,01 mL/g de peso corporal) a cada rato durante a rotina diária de medição. Desta forma, indivíduos se acostumaram à injeção em si.
- Estabilidade é definida como a variabilidade de ± 10% da média dos últimos 3 dias (mesmo como na seção 2.8).
Nota: Pode demorar até 1 semana para estabilizar os níveis de etanol. Isto é especialmente verdadeiro se os ratos estão sendo re-usados de uma experiência anterior e tiveram exposição anterior ao etanol. O controle é simplesmente o solvente utilizado para dissolver a droga.
- Estabilidade é definida como a variabilidade de ± 10% da média dos últimos 3 dias (mesmo como na seção 2.8).
- Uma vez que uma linha de base do etanol com baixa variabilidade é restabelecida, dividir os ratos em dosagem grupos usando os valores de ingestão de etanol, para que todos os grupos têm mais ou menos semelhante média valores de ingestão de etanol.
- Designar um grupo como o controle (continuando a receber soro fisiológico) e o outro como o experimental (injeção i.p. da droga investigada em 0,01 mL/g de peso corporal). Começa a droga diária de dosagem, ou por uma aguda ou de vários dia de duração. Posteriormente, o controle pode ser re-introduzido para testar os efeitos de pós-drogas (opcionais).
Nota: Porque beber é monitorizada através de um longo período de 24 horas, o tempo de administração de dosagem não é dependente do ciclo escuro.
- Designar um grupo como o controle (continuando a receber soro fisiológico) e o outro como o experimental (injeção i.p. da droga investigada em 0,01 mL/g de peso corporal). Começa a droga diária de dosagem, ou por uma aguda ou de vários dia de duração. Posteriormente, o controle pode ser re-introduzido para testar os efeitos de pós-drogas (opcionais).
4. beber no escuro (fez)
Nota: Um esquema está disposto na Figura 3.
- Em cada dia de acesso agendado etanol (dias 1-4), registar as medidas, para o volume de água, ingestão de alimentos e peso corporal e realizar a dosagem da droga. Fazer isso durante um tempo pré-selecionado durante o ciclo de luz que é escolhido em conformidade com a farmacocinética da droga, para que o composto no / ou aproximando-se a concentração máxima do cérebro durante o período de beber.
Nota: Lembre-se dias 1-3 são significados simplesmente aclimatar os ratos para beber abundantes níveis de etanol em um curto período de tempo. Enquanto os ratos não atingir níveis BEC comparáveis a 0,08 humana; esses dias de "treinamento" Certifique-se que no dia 4, durante a sessão de beber um pouco mais, eles na verdade beberá a esse nível.- Dê todos os ratos controle (salina) dias 1-3 e o controle ou droga no dia 4. Este procedimento DID ocorre ao longo de 3 semanas para incluir uma pre-droga (semana 1), drogas (semana 2) e copos a droga pós (semana 4).
- Nota: Observe que, durante a semana de droga-dosagem, níveis de ingestão de etanol dia 3 são usados para atribuir ratos a um grupo controle ou drogas de uma forma onde os níveis de ingestão de etanol de ambos os grupos têm a menor variabilidade. Isso é diferente de TBC, que atribui a grupos com base em uma média de 3 dias.
- Preparar uma solução de etanol 20% (v/v) (20E) em um volume de 500 mL, adicionando 105,25 mL de etanol de cereais prova 190 (~ 95% de etanol) para 394,75 mL de H2O; Certifique-se de agitar cuidadosamente.
- Encha as garrafas de etanol antes do início da sessão de beber para que tão logo o DID começa as garrafas de água simplesmente podem ser substituídas com as garrafas de álcool.
- Durante a sessão inteira DID (etapas 4,5-4,8), use um farol de luz vermelha como para não incomodar os animais.
- No início do DID bebendo a sessão, programada para começar 3 horas para o ciclo escuro, registre o volume de água para cada rato. Em seguida, substituir cada garrafa de água com uma garrafa da solução 20E e registar o volume inicial de etanol.
- Leia e anote o volume final de etanol 2 horas mais tarde, no final da sessão bebendo nos dias 1-3 e 4 horas mais tarde, no dia 4. Analise o consumo de etanol 20% utilizando as seguintes equações.
- Medir o 20% o consumo de etanol (mL): [volume de etanol no final da sessão (mL) - volume de etanol no início da sessão (mL) a beber a beber] - etanol média de perda de todas as gaiolas de controle (mL).
- Medir a 20% o consumo de etanol (g/kg): [20% ingestão de etanol (mL) x 0,15786 g/mL] / corpo peso (kg).
- No dia 4, imediatamente após a gravação de volumes de etanol e antes de re-introduzir o acesso à água, colete sangue para avaliar a concentração de etanol de sangue de cada mouse (opcional).
Nota: Pode ser utilizado qualquer método de coleta de sangue não-terminal, assim como coleta de sangue da cavidade orbital retrô, ou coleta de sangue da veia safena. Para protocolos útil ver referências para Matheus et al 21 e Yardley et al 20.- Executar análise utilizando vários métodos, incluindo LCMS, ou máquinas comercialmente disponíveis (ver Tabela de materiais).
- Substitua todos os frascos de etanol com garrafas de água e volume de água de registro.
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Representative Results
Nos seguintes inquéritos representativos, bebendo social foi modelado utilizando o paradigma de escolha de dois-garrafa (TBC). Brevemente, os ratos tiveram acesso para dois frascos de solução, uma das quais continha água e o outro é uma solução de etanol de 10% (v/v). Temas foram posteriormente divididos e uniformemente atribuídos a grupos de tratamento de drogas, moxidectina (MOX) vs salina controle, para que cada grupo seria em média os níveis de ingestão de etanol com o mínimo de variação.
Entrada de linha de base inicial 10E durante o período de 24 horas estabilizou a ± 14,46 1,85 g/kg (n = 8) antes de injeções começaram e posteriormente re-estabilizaram a 14,14 g/kg pós injeções de solução Salinas. Para avaliar os efeitos de uma dose aguda (5 mg/kg) de MOX na ingestão de etanol e de preferência, beber atividade foi avaliada pre MOX, MOX e post MOX. Achamos que uma dose única de MOX reduziu significativamente a ingestão de álcool superior a 45%, em comparação com injeções de MOX pre [F (2, 22) = 26.33, p < 0,0001](Figura 2)e de preferência [F (2, 14) = 17.35, p < 0,0001] (Figura 2B ) superior a 30%. 10e a admissão e a preferência permaneceram significativamente mais baixos do que a solução salina no dia imediatamente seguinte ao tratamento MOX (por mais de 25% e 15% respectivamente) mostrado como postar injeções MOX na Figura 2).
Em um estudo-piloto inédito, consumo excessivo de álcool foi modelado utilizando a beber no escuro (DID) procedimento através do qual os ratos tinham diariamente acesso limitado (2H) para um frasco contendo 20E início 3-h para a fase escura circadiano, durante 3 dias consecutivos, com um acesso mais período (4 h) no dia 4 (Figura 4). Ratos fêmeas (n = 12, 6 ratos/grupo) foram administradas injeções de solução Salinas (i.p.) nos dias 1-4 com base 20E estabelecidas no dia 4 (pré-droga). Nos dias 1-3 da 2nd semanalmente ciclo, todos os ratos receberam outra injeção salina diária. Os valores de ingestão de etanol desde dia 3 foram então usados para os ratos, divididos em dois grupos (n = 6 / grupo) que posteriormente recebemos uma injeção (i.p.) de MOX (5 mg/kg) ou salina no dia 4 (droga). Na semana seguinte, todos os ratos receberam injeções de Salinas diárias na ingestão de 1-4 e etanol dias foi medida novamente no dia 4 (post drogas). Administração aguda de 5mg/kg MOX foi analisado e verificou-se que a ingestão de álcool reduzido significativamente superior a 54%, em comparação com as injeções de pre-drogas (t = 7.635, p < 0,0001)
Figura 1 . Dois-garrafa escolha esquemáticoclique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2 . Duas garrafa escolha (TBC). MOX (5 mg/kg) reduz a 10% v/v de ingestão de etanol (10E) (A) e (B) de preferência em camundongos C57BL/6J fêmeas usando um paradigma de escolha de dois-garrafa de acesso 24 horas. Após atingir níveis estáveis de bebida durante 3 dias consecutivos, MOX foi administrada. Barras representam níveis de ingestão média 10E desde o dia antes da injeção de MOX (branco; Pré MOX), o dia da injeção MOX (preto; MOX) e o dia após a injeção de MOX (cinza; Post MOX). Valores representam a média ± SEM para 12 ratos. * P < 0.05, * * P < 0,01, * * * P < 0,001, e * * * P < 0,0001 versus Pre MOX (linha horizontal mais à esquerda) ou postar MOX (linha horizontal à direita), Tukey é teste post-hoc de comparação múltipla. Modificado da Huynh N. et al. 19 Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3 . Bebendo o esquemático escuroclique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 4 . Bebendo no escuro (fez). MOX (5 mg/kg) reduz a ingestão de etanol (20E) 20% v/v em camundongos C57BL/6J fêmeas usando um bebendo no paradigma escuro. Barras representam níveis de ingestão média 20E na semana anterior a injeção de MOX (pre-droga), a semana da injeção MOX (droga) e na semana após a injeção de MOX (pós-droga). Valores representam a média ± SEM para 12 ratos (6/grupo) entre grupos MOX e solução salina. P < 0,0001 versus pré-drogas (linha horizontal mais à esquerda) ou pós-drogas (linha horizontal à direita), Tukey é teste post-hoc de comparação múltipla. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
Estimativas mundiais indicam que até 76 milhões de pessoas os critérios para justificar um diagnóstico para transtorno de uso de álcool (AUD). Infelizmente, tratamentos farmacêuticos disponíveis atualmente são praticamente ineficazes e desenvolvimento é necessário para compensar as necessidades da população clínica20. Para este fim, o seguinte protocolo visa facilitar este esforço por exemplificando dois o roedor mais básico beber paradigmas: dois-garrafa-escolha (TBC) e beber no escuro (DID). Ambos os modelos medem não-operante auto-administração de etanol, no qual os ratos ingerem etanol por via oral. No TBC paradigma, (10% v/v) de etanol e água estão disponíveis continuamente, resultando em níveis de etanol comparativamente baixos do sangue que são uma consequência de um padrão de consumo de etanol episódica e gradual. Este modelo é o melhor para avaliar os níveis mais baixos de consumo de etanol como uma preferência tastant e portanto, é dito ser semelhante à humana bebendo "moderada". Figura 2 acima mostra resultados representativos para o paradigma TBC.
Por outro lado, na DID a etanol modelo (20% v/v) só está disponível para uma quantidade limitada de tempo. Ao contrário do TBC, este modelo avalia os efeitos de um composto na comportamentalmente relevantes concentrações de etanol, aproveitando o fato que camundongos C57BL/6J vão consumir grandes quantidades de etanol muito rapidamente durante a fase mais ativa de seu ciclo circadiano. Estas sessões bebendo ocorrem durante 4 dias consecutivos, começando no 3rd h no ciclo escuro, com uma duração de 2 h em dias 1-3 e 4 h no dia 4. Usando este procedimento, os ratos normalmente consomem suficiente etanol para alcançar BECs > 100 mg/dL e que apresentem sinais comportamentais de intoxicação. Nossos resultados representativos para o paradigma DID são mostrados na Figura 4. Embora não medimos BECs para estes ratos, seus níveis de consumo são semelhantes aos relatados na literatura que alcançado BECs sobre 100 mg/dL13,14,15.
Ambos os paradigmas têm limitações. Durante instâncias quando gavages orais são o método preferido de administração de testes farmacológicos de compostos de chumbo, Overtakes trauma causado pelo procedimento pode prejudicar auto-administração de etanol em ambos os paradigmas. Isto é especialmente verdadeiro para o modelo DID, que utiliza uma maior concentração de etanol (20%) e que podem presentes instâncias onde a farmacocinética da droga requer os copos a começar antes dos animais tiveram tempo suficiente para recuperar o procedimento. Isso seria evidente em um grupo de controle, bebendo em níveis que correspondem a BECs, bem abaixo do esperado 0,08. Em nosso laboratório, nós experimentamos dificuldade com alimentação de força tanto com o DID e TBC. Fomos capazes de trabalhar em torno destas questões através da formulação de nossos compostos para que eles poderiam ser entregues usando um oralmente dissolvente tira fina (ODS)19.
Além disso, no modelo de DID especificamente, dado o fato de que o período de acesso do etanol é tão curto em duração, dosagem de drogas deve ser feito durante um tempo pré-selecionado durante o ciclo de luz que é escolhido em conformidade com a farmacocinética da droga para que o composto no / ou aproximando-se a concentração máxima do cérebro durante o período de beber. Se não pode ser realizada uma análise farmacocinética, uma abordagem alternativa seria realizar uma avaliação de curso do tempo dos efeitos comportamentais da droga usando TBC. Seguindo essa lógica, monitorar a atividade de beber a cada hora, e determinar efeitos de antiálcool de pico, um poderia razoavelmente strategize quando drogas devem ser administrada19.
Enquanto o campo de alcoolismo tem vários modelos animais para investigar os diferentes aspectos fisiológicos e comportamentais de AUD8, o seguinte protocolo descreve dois paradigmas comumente usadas, o que permite comparações dos resultados através laboratórios. Uma segunda vantagem é que esses métodos são simples, tornando a sua utilização conveniente durante estudos agudos e crônicos semelhante aos exemplos fornecidos acima. Além disso, ao contrário de outros paradigmas de álcool comumente utilizados, tais como paradigmas de câmara de vapor e condicionamento operante, a metodologia que descrevemos aqui pode ser realizada sem a necessidade de equipamentos especiais. Curiosamente, é provável que quase todos os componentes do aparelho bebendo podem ser encontrados em um viveiro institucional prototípico. Também existem várias maneiras de alterar os protocolos descritos aqui para que eles podem melhor caber os objetivos de cada experimento. Por exemplo, nosso procedimento DID é melhor para testar os efeitos agudos de uma droga em uma única sessão de beber (durante o dia, dia 4). No entanto, mostramos que droga de multi-dia de dosagem pode ser avaliado, aumentando as sessões bebendo a 4 dias consecutivos de acesso de 2 horas, em oposição as atuais 2 horas de acesso nos dias 1-3 e 4 horas no 4º dia19. Ratos também podem ser transferidos de um paradigma para outro, ou re-testada para doses adicionais / diferente compostos, com um período de esmaecimento de simples 1-2 semanas no meio.
Deve-se mencionar que qualquer alteração induzida por drogas bebendo observado através destes métodos deve ser investigada cuidadosamente para determinar se os efeitos são seletivos para álcool ou se podem ser o resultado de toxicidade. Para obter mais informações sobre controles o leitor deverá consultar Yardley et al. 20 não único paradigma pode modelar todos os aspectos desta condição. Em vez disso, cada paradigma normalmente examina alguns dos principais atributos associados AUD. Os modelos TBC e DID descritos aqui, têm sido associados à fase do ciclo de dependência de compulsão/intoxicação. Para uma compreensão mais completa do utilitário do composto, devem utilizar-se vários modelos pré-clínicos de beber.
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Disclosures
LDN e LA são inventores em uma patente para o reaproveitamento de ivermectina e avermectins relacionados para o tratamento de transtornos de uso de álcool. Os autores não têm nenhum outros conflitos de interesse e são inteiramente responsáveis pelo conteúdo científico do papel.
Acknowledgments
Este trabalho foi financiado, em parte, pela investigação concede SC CTSI NIH/NCRR/NCATS - UL1TR000130 (D.L.D.), AA022448 (D.L.D.) e a escola de farmácia da USC.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1 L graduated cylinder | VWR | https://us.vwr.com/store/product/20935285/marisco-single-scale-cylinder-graduates-john-m-maris-co | To prepare ethanol solution. |
| 1 L glass bottle | Pyrex (Fisher Scientific) | https://www.fishersci.com/shop/products/pyrex-reusable-media-storage-bottles-12/p-42752 | To prepare ethanol solution. |
| 100 mL graduated cylinder | Fisher Scientific | https://www.fishersci.com/shop/products/kimble-chase-kimax-class-a-to-contain-graduated-cylinders-8/p-4369311 | To prepare ethanol solution. |
| Analox | One potential method of analyzing DID blood samples is by using the analox machine | ||
| ball-bearing sipper tubes | Ancare Corp. | http://www.ancare.com/products/watering-equipment/open-drinking-tubes/straight-tubes-ball-point | Length: 2.5 inches, Diameter: 5/16 inches, Model: TD100 |
| C57BL/6J Mice | Jackson lab | https://www.jax.org/strain/000664 | May also come from internal breeding colony |
| disposable serological pipets | VWR International (VWR) | https://us.vwr.com/store/product/4760455/vwr-disposable-serological-pipets-polystyrene-sterile-plugged | 10 mL, 18 mL, or 25 mL |
| ethanol, pure, 190 proof (95%), USP, KOPTEC | Decon Labs (VWR) | https://us.vwr.com/store/product/4542412/ethanol-pure-190-proof-95-usp-koptec | --- |
| heat gun | Master Appliances Corp. | http://www.masterappliance.com/master-heat-guns-kits/ | |
| heat shrink tubing | --- | --- | Diameter: 3/8 inches |
| industrial knife/blade | --- | --- | --- |
| metal cage plate | --- | --- | Should be available through the university/institutional vivarium |
| mouse RO water | --- | --- | Should be available through the university/institutional vivarium |
| portable electronic scale | Ohaus (VWR) | https://us.vwr.com/store/product/4789377/portable-electronic-cs-series-scales-ohaus | --- |
| red light headlamp | nyteBright (Amazon) | https://www.amazon.com/LED-Headlamp-Flashlight-Red-Light/dp/B00R0LMMF8/ref=sr_1_1?ie=UTF8&qid=1499591137&sr=8-1-spons&keywords=red+lamp+headlamp&psc=1 | --- |
| silicone stoppers | Fisher | --- | --- |
| thermometer | Fisher Scientific | https://www.fishersci.com/shop/products/fisher-scientific-hygro-thermometer-clock-large-display-2/p-4077232 | --- |
| weigh boat | VWR International (VWR) | https://us.vwr.com/store/product/16773534/vwr-pour-boat-weighing-dishes | The lid from a pipete tip box is an appropriate alternative |
References
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