L’objectif global de cette procédure est de fournir une technique hautement reproductible pour évaluer in vivo la rupture de la barrière hémato – encéphalique dans les modèles de rat d’accident vasculaire cérébral ischémique.
Accident vasculaire cérébral ischémique entraîne un œdème cérébral vasogénique et crânien primaire subséquent, qui est véhiculé par la destruction de la barrière sang – encéphalique (BHE). Rats atteints d’accident vasculaire cérébral ischémique induit ont été mis en place et utilisés comme in vivo modèles pour enquêter sur l’intégrité fonctionnelle de la BHE. Détection par spectrophotométrie de bleu Evans (EB) dans les échantillons de cerveau avec une lésion ischémique pourrait fournir une justification fiable pour la recherche et le développement de nouvelles modalités thérapeutiques. Cette méthode génère des résultats reproductibles et s’applique à n’importe quel laboratoire sans un besoin d’équipement spécial. Nous présentons ici une orientation technique et visualisée sur la détection de l’extravasation de EB après induction d’AVC ischémique chez le rat.
Œdème cérébral vasogénique en raison de la rupture de la barrière hémato – encéphalique (BHE) reste une complication importante de l’accident vasculaire cérébral ischémique et un déterminant majeur de la survie dans les accidents vasculaires cérébraux patients1,2. La sang barrière – encéphalique (BHE), qui est formée par les cellules endothéliales capillaires du cerveau (BCECs) et composée d’éléments distincts neurovasculaire (p. ex., des jonctions serrées entre BCECs, péricytes, astroglials et les cellules neuronales3), fournit un spécialisés et dynamique de l’interface entre le système nerveux central (SNC) et la circulation sanguine périphérique4,5. Insultes tels que les lésions d’ischémie-reperfusion pourraient perturber l’intégrité fonctionnelle de la BHE et conduire à la pénétration ultérieure des leucocytes circulants dans le parenchyme du cerveau qui finalement déclencher l’inflammation cérébrale et lésions cérébrales primaires 6 , 7. modèles animaux sont nécessaires pour la détection exacte du dysfonctionnement du BBB suite à la survenue d’un accident vasculaire cérébral. Ces modèles sont d’une grande importance pour l’étude qui sous-tendent les mécanismes physiopathologiques et en introduisant de nouvelles stratégies neuroprotectrices. In vitro sur culture modèles cellulaires de la BHE hautement développées et utilisées pour l’étude moléculaire de la BBB physiopathologie8,9,10. Cependant, in vivo des modèles animaux, qui produisent des dommages ischémiques de la BHE similaire à des conditions cliniques humaines, sont également très utiles à cet égard. Détection quantitative de l’extravasation de bleu Evans (EB) est une technique bien acceptée et sensible qui a été utilisée pour évaluer l’intégrité BBB et fonction dans les maladies neurodégénératives, y compris les accidents vasculaires cérébraux ischémiques11, 12 , 13 , 14. cette méthode est rentable, réalisable, reproductible et totalement applicable dans n’importe quel laboratoire expérimental. Sa mise en œuvre ne nécessite pas d’équipements de pointe, tels que des traceurs radioactifs15 ou l’imagerie par résonance magnétique (IRM)16, qui sont indispensables pour d’autres méthodes. Dans cet article, nous démontrons exhaustive base procédés techniques d’évaluation de BBB à l’aide d’extravasation de EB dans les modèles de rat d’accident vasculaire cérébral ischémique.
Jusqu’ici, diverses méthodes telles que l’autoradiographie et la détection des traceurs radioactifs24,25, immunofluorescence microscopie26,27et EB extravasation technique20, 23 ont été utilisés pour évaluer les dégâts de la barrière hémato – encéphalique. EB colorant fortement peut se lier à l’albumine sérique et est utilisé c…
The authors have nothing to disclose.
Les auteurs sont reconnaissants à la Vice-chancellier de recherche de l’Ardabil University of Medical Sciences (Ardabil, Iran) pour le soutien financier (subvention No : 9607).
Isoflurane | Piramal | AWN 34041100 | 20 – 25 °C |
2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride (TTC) | Molekula | 31216368 | 4 years |
Sprague–Dawley rats | Pasture Institute (Tehran, Iran) | 300-350g | |
Evans Blue | Sigma-Aldrich | 314-13-6 | |
Trichloroacetic acid | Sigma-Aldrich | 76-03-9 | 2 years |
Bupivacaine HCl (0.5%) | Delpharm Tours | below 25 °C | |
Bupernorphine | Exir (Iran) | ||
Sodium Carbonate | Sigma-Aldrich | 497-19-8 | |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich | 7647-14-5 | |
Di- Sodium hydrogen phosphate | EMD Millipore | 231-448-7 | |
Potassium chloride | Sigma-Aldrich | 7447-40-7 | |
Ethanol | Sigma-Aldrich | 64-17-5 | |
silicone(Xantopren) | Heraeus | EN ISO 4823 | |
Activator universal plus | Heraeus | 66037445 | |
Micro-Dissecting forceps | Stoelting | 52100-41 | |
Spring Scisors | Stoelting | 52130-00 | |
Operating Scissors | Roboz | 52140-70 | |
Brain matrix | Stoelting | 51390 | |
Anesthesia Machine for Small Animals | | Kent Scientific | SS-01 | |
Power Lab system | AD Instruments | ML880 | |
Laser Doppler flowmeter | AD Instruments | ML191 | |
Heating feed back system | Harvard Appratus | 72-7560 | |
Vascular micro clamp | FineScience Tools | 18055-03 | |
Silk 5-0 suture thread | Ethicon | 682G | |
Ethilon 4-0 suture thread | Ethicon | EH6740G |