Summary

Vev-spesifikke miRNA Expression profilering i musen hjertet delene bruke In Situ hybridisering

Published: September 15, 2018
doi:

Summary

mikro-RNAs (miRNAs) er korte og svært homologe RNA sekvenser, som post-transcriptional regulatorer av messenger RNAs (mRNAs). Gjeldende miRNA gjenkjenningsmetoder varierer i sensitivitet og spesifisitet. Vi beskriver en protokoll som kombinerer i situ hybridisering og immunostai-samtidige deteksjon av miRNA og protein molekyler på musen hjertet vev deler.

Abstract

mikro-RNAs (miRNAs) er enkelt-strandet RNA utskrifter som binder til messenger RNAs (mRNAs) og hemme deres oversettelse eller fremme deres degradering. Hittil har miRNAs vært innblandet i en rekke biologiske og sykdom prosesser, som har markert behovet for pålitelig gjenkjenningsmetoder for miRNA transkripsjoner. Her beskriver vi en detaljert protokoll for digoxigenin-merket (graver) låst Nucleic Acid (LNA) probe-baserte miRNA oppdagelsen, kombinert med protein immunostaining på musen hjertet deler. Først utført vi en i situ hybridisering teknikk ved hjelp av sonden for å identifisere miRNA-182 uttrykk i hjertet delene av kontroll og hjerte-hypertrofi mus. Neste, vi utført immunostaining for cardiac Troponin T (cTnT) protein, på i samme avsnitt, å lokalisere co miRNA-182 med cardiomyocyte celler. Bruker denne protokollen, kunne vi oppdage miRNA-182 gjennom en alkalisk fosfatase basert kolorimetrisk analysen, og cTnT gjennom fluorescerende flekker. Denne protokollen kan brukes til å oppdage uttrykk for alle miRNA rundt gjennom grave-merket LNA sonder, og relevante protein uttrykk på musen hjertet vev deler.

Introduction

mikro-RNAs (miRNAs) er kort (18-25 nukleotider), enkelt-strandet, noncoding RNAs som fungerer som negative regulatorer av genuttrykk på post-transcriptional nivå av hemme budbringer RNA (mRNA) oversettelse og/eller fremme mRNA degradering 1. miRNAs er transkribert fra introns eller exons koding eller noncoding gener og er kløyvde i kjernen av DROSHA, til forløperen miRNAs (pre-miRNAs), som er kort stilk-sløyfe strukturer av 70 nukleotider2. Etter cytoplasmatiske eksportere, pre-miRNAs behandles videre av DICER i eldre miRNAs som spenner over 18-25 nukleotider3,4. Deretter omfatter RNA-indusert stanse komplekset (RISC) disse miRNAs som enkelt-strandet RNAs, som tillater for deres tilknytning til 3 uoversatt regionen (3-UTR) deres mål mRNAs å undertrykke deres uttrykk3,5 .

I de siste tre tiårene, siden de ble først identifisert, miRNAs har dukket opp til master regulatorer av genuttrykk, som selv uttrykk er strengt kontrollert6. Roller for miRNAs er beskrevet i orgel utvikling7,8,9,10,11,12, vedlikehold av homeostase13,14 , samt sykdom sammenhenger med nevrologiske15,16,17,18,19, hjerte20, autoimmune tilstander21 ,22, kreft23,24og andre25. Den økende forståelse for relevansen av miRNA uttrykk mønstre har brakt frem behovet for pålitelig gjenkjenningsmetoder av miRNA transkripsjoner. Slike metoder omfatter sanntid PCR, microarrays, nordlige Blotting, i situ hybridisering og andre, som varierer i følsomhet, spesifisitet og kvantitative makt, hovedsakelig på grunn av at miRNA transkripsjoner består av kort og svært homologe sekvenser6.

Vi har nylig rapportert en viktig rolle for miRNA-182 i utviklingen av hjerteinfarkt hypertrofi26, en tilstand som beskriver strukturell tilpasning av hjertet svar til forhøyet hemodynamic krav27,28. Hjerte-hypertrofi er preget av økningen i hjerteinfarkt masse, som, hvis knyttet mistilpasset remodeling29, kan føre til økt risiko for hjertesvikt, en tilstand regnskap for 8,5% av alle dødsfall skyldes hjerte sykdom30.

Her beskriver vi våre protokollen som kombinerer i situ hybridisering med digoxigenin-merket (graver) låst Nucleic Acid (LNA) sonde og immunostai-for samtidige påvisning av miRNA og protein molekyler på musen hjertet vev deler, i våre modell av hjerte-hypertrofi.

Protocol

Musen hjertet vevsprøver for denne studien ble innhentet i henhold til relevante lover og institusjonelle retningslinjer og ble godkjent av Yale University institusjonelle Animal Care og bruk komiteen. 1. løsning forberedelse Forberede RNase gratis ddH2O, ved å behandle 5 L ddH2O med 5 mL 0,1% diethylpyrocarbonate (DEPC) natten (O/N), ved romtemperatur (RT). Autoclave (121 ° C) for å deaktivere i DEPC. Bruk DEPC-behandlet ddH2O for utarbeidelse a…

Representative Results

miRNA i situ hybridisering var optimalisert på musen hjertet deler bruker scramble miRNA og U6-snRNA, som fungerte som negative og positive kontroller henholdsvis. Positiv flekker er angitt i blå, mens den negative flekker er angitt for farge utvikling (figur 1A-1B). Cardiomyocyte bestemte uttrykk for miRNA-182 ble vurdert i hjertet deler av kontroll og PlGF overexpressing mus. Mus bærer PlGF transgene under en αMHC promoter utvi…

Discussion

miRNA transkripsjon gjenkjenning kan oppnås gjennom forskjellige teknikker som varierer i sensitivitet og spesifisitet kvantitative makt. Her viser vi koblingen av miRNA i situ hybridisering med immunostai- og beskrive en protokoll som tillater samtidig vurdering av uttrykket miRNA og protein molekyler, på samme hjertet seksjoner. Først viser vi hvordan du utfører i situ hybridisering av grave-merket LNA miRNA sonder på innebygd hjertet parafinsnitt. Deretter beskriver vi hvordan å utføre immunos…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke Athanasios Papangelis, for kritiske kommentarer på manuskriptet. FM støttes av bioteknologi og Biological Sciences Research Council (BBSRC; BB/M009424/1). IP er støttet av den American Heart Association forsker Development Grant (17SDG33060002).

Materials

Diethylpyrocarbonate Sigma Aldrich D5758 DEPC
Phosphate buffered saline Sigma Aldrich P4417 PBS
Tween-20 American Bioanalytical AB02038 non-ionic surfactant
Histoclear National Diagnostics HS-200
Proteinase K, recombinant, PCR Grade Sigma Aldrich 3115879001 ProK
Paraformaldehyde Sigma Aldrich P6148 PFA
Sodium Chloride ThermoFisher S271 NaCl
Magnesium Chloride Hexahydrate ThermoFisher M33 MgCl2
Tris Sigma Aldrich T6066
Hydrochloric Acid Solution, 1 N ThermoFisher SA48 HCl
Hydrochloric Acid Solution, 12 N ThermoFisher S25358 HCl
1-Methylimidazole Sigma Aldrich 336092
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide hydrochloride Sigma Aldrich 39391 EDC
Hydrogen peroxide solution H2O2 Sigma Aldrich 216763 H2O2
Trisodium citrate dihydrate Sigma Aldrich S1804 Sodium Citrate
miRCURY LNA miRNA ISH Buffer Set (FFPE) Qiagen 339450 scramble miRNA/U6 snRNA
miRCURY LNA mmu-miR-182 detection probe QIagen YD00615701 5'-DIG and 3'-DIG labelled
Levamisol hydrochloride Sigma Aldrich 31742
Bovine Serum Albumin Sigma Aldrich A9647 BSA
NBT/BCIP Tablets Sigma Aldrich 11697471001 NBT-BCIP
Potassium Chloride ThermoFisher P217 KCl
DAPI solution (1mg/ml) ThermoFisher 62248 DAPI
Glass coverslip ThermoFisher 12-545E Glass coverslip
Plastic coverslip Grace Bio-Labs HS40 22mmX40mmX0.25mm RNA-ase free plastic coverslip
Anti-Digoxigenin-AP, Fab fragments Sigma Aldrich 11093274910 DIG antibody
Hydrophobic barrier pen Vector Laboratories H-4000 Pap pen
Anti-Cardiac Troponin T antibody Abcam ab92546 cTnT antibody
Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Cross-Absorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 568 ThermoFisher A-11011 anti-rabbit-568 antibody
Dako Fluorescence Mounting Medium DAKO S3023 mounting medium
Sheep serum Sigma Aldrich S3772
Goat serum Sigma Aldrich G9023
Deionized Formamide American Bioanalytical AB00600
Hybridization Oven ThermoFisher UVP HB-1000 Hybridizer

References

  1. Bartel, D. P. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function. Cell. 116, 281-297 (2004).
  2. Denli, A. M., Tops, B. B., Plasterk, R. H., Ketting, R. F., Hannon, G. J. Processing of primary microRNAs by the Microprocessor complex. Nature. 432, 231-235 (2004).
  3. Hutvagner, G., Zamore, P. D. A microRNA in a multiple-turnover RNAi enzyme complex. Science. 297, 2056-2060 (2002).
  4. Krol, J., et al. Structural features of microRNA (miRNA) precursors and their relevance to miRNA biogenesis and small interfering RNA/short hairpin RNA design. Journal of Biological Chemistry. 279, 42230-42239 (2004).
  5. Lim, L. P., Glasner, M. E., Yekta, S., Burge, C. B., Bartel, D. P. Vertebrate microRNA genes. Science. 299, 1540 (2003).
  6. Tian, T., Wang, J., Zhou, X. A review: microRNA detection methods. Organic and Biomolecular Chemistry. 13, 2226-2238 (2015).
  7. Fineberg, S. K., Kosik, K. S., Davidson, B. L. MicroRNAs potentiate neural development. Neuron. 64, 303-309 (2009).
  8. Ivey, K. N., et al. MicroRNA regulation of cell lineages in mouse and human embryonic stem cells. Cell stem cell. 2, 219-229 (2008).
  9. Houbaviy, H. B., Murray, M. F., Sharp, P. A. Embryonic stem cell-specific MicroRNAs. Developmental cell. 5, 351-358 (2003).
  10. Kasper, D. M., et al. MicroRNAs Establish Uniform Traits during the Architecture of Vertebrate Embryos. Developmental cell. 40, 552-565 (2017).
  11. Liu, N., Olson, E. N. MicroRNA regulatory networks in cardiovascular development. Developmental cell. 18, 510-525 (2010).
  12. Xiao, C., Rajewsky, K. MicroRNA control in the immune system: basic principles. Cell. 136, 26-36 (2009).
  13. Hartig, S. M., Hamilton, M. P., Bader, D. A., McGuire, S. E. The miRNA Interactome in Metabolic Homeostasis. Trends in endocrinology and metabolism: TEM. 26, 733-745 (2015).
  14. Ying, W., et al. Adipose Tissue Macrophage-Derived Exosomal miRNAs Can Modulate In Vivo and In Vitro Insulin Sensitivity. Cell. 171, 372-384 (2017).
  15. Perkins, D. O., et al. microRNA expression in the prefrontal cortex of individuals with schizophrenia and schizoaffective disorder. Genome biology. 8, R27 (2007).
  16. Miller, B. H., et al. MicroRNA-132 dysregulation in schizophrenia has implications for both neurodevelopment and adult brain function. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109, 3125-3130 (2012).
  17. Xu, B., Hsu, P. K., Stark, K. L., Karayiorgou, M., Gogos, J. A. Derepression of a neuronal inhibitor due to miRNA dysregulation in a schizophrenia-related microdeletion. Cell. 152, 262-275 (2013).
  18. Hu, Y., Ehli, E. A., Boomsma, D. I. MicroRNAs as biomarkers for psychiatric disorders with a focus on autism spectrum disorder: Current progress in genetic association studies, expression profiling, and translational research. Autism research : official journal of the International Society for Autism Research. 10, 1184-1203 (2017).
  19. Wu, Y. E., Parikshak, N. N., Belgard, T. G., Geschwind, D. H. Genome-wide, integrative analysis implicates microRNA dysregulation in autism spectrum disorder. Nature neuroscience. 19, 1463-1476 (2016).
  20. Ikeda, S., et al. Altered microRNA expression in human heart disease. Physiological genomics. 31, 367-373 (2007).
  21. Mann, M., et al. An NF-kappaB-microRNA regulatory network tunes macrophage inflammatory responses. Nature Communications. 8, 851 (2017).
  22. O’Connell, R. M., et al. MicroRNA-155 promotes autoimmune inflammation by enhancing inflammatory T cell development. Immunity. 33, 607-619 (2010).
  23. Chan, E., Prado, D. E., Weidhaas, J. B. Cancer microRNAs: from subtype profiling to predictors of response to therapy. Trends in Molecular Medicine. 17, 235-243 (2011).
  24. He, L., et al. A microRNA component of the p53 tumour suppressor network. Nature. 447, 1130-1134 (2007).
  25. Kloosterman, W. P., Plasterk, R. H. The diverse functions of microRNAs in animal development and disease. Developmental cell. 11, 441-450 (2006).
  26. Li, N., et al. miR-182 Modulates Myocardial Hypertrophic Response Induced by Angiogenesis in Heart. Science Reports. 6, 21228 (2016).
  27. Meerson, F. Z. Compensatory hyperfunction of the heart and cardiac insufficiency. Circulation Research. 10, 250-258 (1962).
  28. Tardiff, J. C. Cardiac hypertrophy: stressing out the heart. Journal of Clinical Investigation. 116, 1467-1470 (2006).
  29. Burchfield, J. S., Xie, M., Hill, J. A. Pathological ventricular remodeling: mechanisms: part 1 of 2. Circulation. 128, 388-400 (2013).
  30. Benjamin, E. J., et al. Heart Disease and Stroke Statistics-2017 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 135, e146-e603 (2017).
  31. Pena, J. T., et al. miRNA in situ hybridization in formaldehyde and EDC-fixed tissues. Nature Methods. 6, 139-141 (2009).
check_url/57920?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Memi, F., Tirziu, D., Papangeli, I. Tissue-specific miRNA Expression Profiling in Mouse Heart Sections Using In Situ Hybridization. J. Vis. Exp. (139), e57920, doi:10.3791/57920 (2018).

View Video