Summary

Всеобъемлющая оценка эффективности и безопасности препарата плаценты целевой доставки с помощью трех взаимодополняющих методов

Published: September 10, 2018
doi:

Summary

Мы описать систему, которая использует три метода для оценки безопасности и эффективности препарата плаценты целевой доставки: в vivo imaging для мониторинга наночастиц накопления, высокочастотный ультразвук для мониторинга развития плаценты и плода и ВЭЖХ для количественного определения доставку лекарственного препарата в ткани.

Abstract

В настоящее время нет эффективного лечения существуют для осложнений беременности, плацента связанные, и разработки стратегий для целенаправленной доставки препаратов плаценты при сведении к минимуму побочные эффекты матери и плода остается сложным. Целевые наночастиц перевозчики обеспечивают новые возможности для лечения плацентарной расстройств. Недавно мы продемонстрировали, что пептид синтетических плацентарной хондроитин сульфат A привязки (plCSA-BP) могут использоваться для руководства наночастиц для доставки препаратов плаценты. В этом протоколе, мы подробно описать систему для оценки эффективности доставки наркотиков в плаценту, plCSA-BP, которая использует три отдельных методов, используемых в комбинации: в vivo изображений, высокочастотный ультразвук (HFUS) и высокая производительность Жидкостная хроматография (ВЭЖХ). Используя в естественных условиях изображений, plCSA ВР руководствуясь наночастиц были подробно освещены в плаценты живых животных, в то время как HFUS и ВЭЖХ показали, что plCSA ВР конъюгированных наночастиц эффективно и конкретно доставлен метотрексата плаценты. Таким образом сочетание этих методов может использоваться как эффективный инструмент для целенаправленной доставки препаратов плаценты и разработки новых стратегий лечения ряда осложнений беременности.

Introduction

Осложнения беременности, плацента опосредованной, включая преэклампсии, потери беременности, отслойка и малые гестационного возраста (SGA), являются общими и приводят к существенной плода и материнской заболеваемости и смертности1,2, 3и очень немногие лекарства доказали быть эффективным для лечения беременность болезни4,5. Разработка стратегий для более избирательный и безопасной доставки плаценты целевой лекарств во время беременности остается сложным в современной медикаментозной терапии.

В последние годы несколько докладов были сосредоточены на целевой доставки наркотиков uteroplacental тканей наночастицами покрытие с пептидами или антител как плаценты ориентированных инструментов. К ним относятся антитела анти эпидермального фактора роста рецепторов (EGFR)6 , опухоль самонаведения пептиды (CGKRK и iRGD)7, плаценты целевой пептиды8, плацентарной пептиды, ориентированные на сосудистую9 и антител против рецепторов окситоцина10.

Здесь мы демонстрируем, что пептид синтетических плацентарной хондроитин сульфат A привязки (plCSA-BP) может использоваться для целенаправленной доставки наночастиц и их полезных препарата плаценты11. PlCSA ВР руководствуясь наночастиц дополняют сообщил uteroplacental, ориентация методы, потому что они ориентированы на плацентарный трофобласта.

Неинвазивный метод в естественных условиях изображения была использована для контроля экспрессии плаценты конкретных генов мышей12, а indocyanine Грин (ГСИ) широко используется для отслеживания наночастиц с помощью флуоресценции визуализации систем13, 14,15. Таким образом мы внутривенно вводят plCSA BP-конъюгированных наночастиц, загружен с ГСИ (plCSA-INPs) для визуализации распределения plCSA-INP в беременных мышей с флуоресцентным тепловизор. Затем мы внутривенно вводят метотрексата (MTX)-plCSA НПС загружается беременных мышей. Высокочастотный ультразвук (HFUS), другой неинвазивный, реальном времени обработки изображений инструмент16,17 был использован для мониторинга развития плода и плаценты в мышей. Наконец мы использовали высокой производительности жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) для количественной оценки распределения MTX плаценты и плода.

В этом протоколе мы подробно описываются три метода система, используемая для оценки эффективности препарата плаценты целевой доставки plCSA ВР руководствуясь nanocarriers.

Protocol

Все эксперименты строго следовал протоколы мыши (SIAT-IRB-160520-YYS-FXJ-A0232) утверждена животное уход и использование Комитета из Шэньчжэнь передовых технологических институтах, Китайской академии наук. 1. синтеза наночастиц A-целевой липидов полимер плацентарной хондроитин сульф…

Representative Results

В этой рукописи plCSA ВР конъюгированных наночастиц загружен с MTX (plCSA-MNPs) или ГСИ (plCSA-INPs) внутривенно вводили в беременных мышей. В естественных условиях изображений показал сильные сигналы ГСИ в регионе матки 30 мин после инъекции plCSA-INP. INPs главным образом были локали…

Discussion

В этой рукописи мы наметим систему трех метод для определения, являются ли plCSA ВР руководствуясь наночастиц эффективным инструментом для ориентации доставки препаратов плаценты. Использование в vivo imaging для мониторинга инфракрасный сигнал флуоресцентные ГСИ подтвердил плацентар?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана субсидий из национального фонда естественных наук (81771617) и естественные науки фонд провинции Гуандун (2016A030313178) присуждена X.F.; Грант от Шэньчжэнь основной исследовательский фонд (JCYJ20170413165233512) присуждена X.F; Юнис Кеннеди Шрайвер национального института здоровья ребенка и развития человеческого потенциала национальных институтов здоровья под награду номер R01HD088549 (содержание является исключительно ответственности авторов и не обязательно отражают официальной виды национальных институтов здравоохранения) для н.н.

Materials

CD-1 mice Beijing Vital River 201 Female (8-12 week)
Insulin syringe BD 328421 for IV injection
Ethanol absolute Sinopharm Chemical 10009218 for nanoparticles synthesis
Soybean lecithin Avanti Polar Lipids 441601 for nanoparticles synthesis
DSPE-PEG-COOH Avanti Polar Lipids 880125 for nanoparticles synthesis
PLGA Sigma-Aldrich 719897 for nanoparticles synthesis
Ultrasonic processor Sonics VCX130 for nanoparticles synthesis
Methotrexate (MTX) Sigma-Aldrich V900324 for nanoparticles synthesis
Indocyanine green (ICG) Sigma-Aldrich 1340009 for in vivo imaging
phosphate-buffered saline (PBS) Hyclone SH30028.01
IVIS spectrum instrument Perkin Elmer for in vivo imaging
Ultrasound transmission gel Guanggong ZC4252418 for ultrasound imaging
Isoflurane Lunan Pharmaceutical I0040 for maintain the anesthesia
Depilatory cream Nair TMG001 for removing fur
40 MHz transducer VisualSonics MS550S for ultrasound imaging
High-frequency ultrasound imaging system VisualSonics Vevo2100 for ultrasound imaging
Avertin Sigma-Aldrich T48402 for anesthesia
Syringe pump Mindray SK-500III forcardiac perfusion
0.9% saline solution Meilunbio MA0083 forcardiac perfusion
1.5 mL Polypropylene tubes AXYGEN MCT-150-C
-80 °C freezer Thermo Fisher Scientific 88600V
Centriguge Cence H1650R
Perchloric acid Sigma-Aldrich 311421 for precipitating protein
Homogenizer SCIENTZ SCIENTZ-48 for homogenizing tissue
Syringe filter (0.45 μm) Millipore SLHV033RS01
Sodium hydroxide Sinopharm Chemical 10019763 for solving MTX
HPLC vials Waters 670650620 for HPLC
Potassium phosphate dibasic Sinopharm Chemical 20032117 for HPLC
Acetonitrile JKchemical 932537 for HPLC
C18 column Waters 186003966 for HPLC
HPLC system Shimadzu for HPLC

References

  1. Rodger, M. A., et al. The Association of Factor V Leiden and Prothrombin Gene Mutation and Placenta-Mediated Pregnancy Complications: A Systematic Review and Meta-analysis of Prospective Cohort Studies. PLOS Medicine. 7 (6), e1000292 (2010).
  2. Rodger, M. A., et al. Inherited thrombophilia and pregnancy complications revisited. Obstetrics & Gynecology. 112 (2 Pt 1), 320-324 (2008).
  3. Brenner, B., Aharon, A. Thrombophilia and adverse pregnancy outcome. Clinics in Perinatology. 34 (4), 527-541 (2007).
  4. Fisk, N. M., McKee, M., Atun, R. Relative and absolute addressability of global disease burden in maternal and perinatal health by investment in R&D. Tropical Medicine & International Health. 16 (6), 662-668 (2011).
  5. Fisk, N. M., Atun, R. Market failure and the poverty of new drugs in maternal health. PLOS Medicine. 5 (1), e22 (2008).
  6. Kaitu’u-Lino, T. u. J., et al. Targeted nanoparticle delivery of doxorubicin into placental tissues to treat ectopic pregnancies. Endocrinology. 154 (2), 911-919 (2013).
  7. King, A., et al. Tumor-homing peptides as tools for targeted delivery of payloads to the placenta. Science Advances. 2 (5), e1600349 (2016).
  8. Beards, F., Jones, L. E., Charnock, J., Forbes, K., Harris, L. K. Placental Homing Peptide-microRNA Inhibitor Conjugates for Targeted Enhancement of Intrinsic Placental Growth Signaling. Theranostics. 7 (11), 2940-2955 (2017).
  9. Cureton, N., et al. Selective Targeting of a Novel Vasodilator to the Uterine Vasculature to Treat Impaired Uteroplacental Perfusion in Pregnancy. Theranostics. 7 (15), 3715-3731 (2017).
  10. Paul, J. W., et al. Drug delivery to the human and mouse uterus using immunoliposomes targeted to the oxytocin receptor. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 216 (3), e281-e283 (2017).
  11. Zhang, B., et al. Placenta-specific drug delivery by trophoblast-targeted nanoparticles in mice. Theranostics. 8 (10), 2765-2781 (2018).
  12. Fan, X., et al. Noninvasive monitoring of placenta-specific transgene expression by bioluminescence imaging. PloS One. 6 (1), e16348 (2011).
  13. Murata, M., Tahara, K., Takeuchi, H. Real-time in vivo imaging of surface-modified liposomes to evaluate their behavior after pulmonary administration. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics. 86 (1), 115-119 (2014).
  14. Ito, A., et al. New whole-body multimodality imaging of gastric cancer peritoneal metastasis combining fluorescence imaging with ICG-labeled antibody and MRI in mice. Gastric Cancer. 17 (3), 497-507 (2014).
  15. Mazza, M., et al. Liposome-Indocyanine Green Nanoprobes for Optical Labeling and Tracking of Human Mesenchymal Stem Cells Post-Transplantation In Vivo. Advanced Healthcare Materials. 6 (21), (2017).
  16. Greco, A., et al. High frequency ultrasound for in vivo pregnancy diagnosis and staging of placental and fetal development in mice. PloS One. 8 (10), e77205 (2013).
  17. Spurney, C. F., Leatherbury, L., Lo, C. W. High-frequency ultrasound database profiling growth, development, and cardiovascular function in C57BL/6J mouse fetuses. Journal of the American Society of Echocardiography. 17 (8), 893-900 (2004).
  18. Zhang, B., et al. Synthesis and characterization of placental chondroitin sulfate A (plCSA) -targeting lipid-polymer nanoparticles. Journal of Visualized Experiments. , (2018).
  19. Devraj, K., Guerit, S., Macas, J., Reiss, Y. An In Vivo Blood-brain Barrier Permeability Assay in Mice Using Fluorescently Labeled Tracers. Journal of Visualized Experiments. (132), (2018).
  20. Beeton, C., Chandy, K. G. Isolation of mononuclear cells from the central nervous system of rats with EAE. Journal of Visualized Experiments. (10), 527 (2007).
  21. Watson, E. D., Cross, J. C. Development of structures and transport functions in the mouse placenta. Physiology. 20 (3), 180-193 (2005).
  22. Frangioni, J. V. In vivo near-infrared fluorescence imaging. Current Opinion in Chemical Biology. 7 (5), 626-634 (2003).
  23. Flores, L. E., Hildebrandt, T. B., Kuhl, A. A., Drews, B. Early detection and staging of spontaneous embryo resorption by ultrasound biomicroscopy in murine pregnancy. Reproductive Biology and Endocrinology. 12, 38 (2014).
  24. Khankin, E. V., Hacker, M. R., Zelop, C. M., Karumanchi, S. A., Rana, S. Intravital high-frequency ultrasonography to evaluate cardiovascular and uteroplacental blood flow in mouse pregnancy. Pregnancy Hypertension. 2 (2), 84-92 (2012).
  25. Phoon, C. K. Imaging tools for the developmental biologist: ultrasound biomicroscopy of mouse embryonic development. Pediatric Research. 60 (1), 14-21 (2006).
  26. Pallares, P., Gonzalez-Bulnes, A. Non-invasive ultrasonographic characterization of phenotypic changes during embryo development in non-anesthetized mice of different genotypes. Theriogenology. 70 (1), 44-52 (2008).
  27. Parvani, J. G., Gujrati, M. D., Mack, M. A., Schiemann, W. P., Lu, Z. -. R. Silencing β3 integrin by targeted ECO/siRNA nanoparticles inhibits EMT and metastasis of triple-negative breast cancer. Cancer Research. 75 (11), 2316-2325 (2015).
  28. Zhang, B., et al. Targeted delivery of doxorubicin by CSA-binding nanoparticles for choriocarcinoma treatment. Drug Delivery. 25 (1), 461-471 (2018).
  29. Jenkins, D. E., et al. Bioluminescent imaging (BLI) to improve and refine traditional murine models of tumor growth and metastasis. Clinical & Experimental Metastasis. 20 (8), 733-744 (2003).
  30. Keelan, J. A., Leong, J. W., Ho, D., Iyer, K. S. Therapeutic and safety considerations of nanoparticle-mediated drug delivery in pregnancy. Nanomedicine. 10 (14), 2229-2247 (2015).
check_url/58219?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhang, B., Chen, Z., Han, J., Li, M., Nayak, N. R., Fan, X. Comprehensive Evaluation of the Effectiveness and Safety of Placenta-Targeted Drug Delivery Using Three Complementary Methods. J. Vis. Exp. (139), e58219, doi:10.3791/58219 (2018).

View Video