Summary

Visualisere Axonal vekst kjegle kollaps og tidlig Amyloid β effekter i kulturperler musen nerveceller

Published: October 30, 2018
doi:

Summary

Her vises en protokoll for å undersøke tidlig virkningene av amyloid-β (Aβ) i hjernen. Dette viser at Aβ induserer clathrin-mediert endocytose og sammenbruddet av axonal veksten kjeglene. Protokollen er nyttig i å studere tidlig effekter av Aβ på axonal veksten kjeglene og kan lette forebygging av Alzheimers sykdom.

Abstract

Amyloid-β (Aβ) forårsaker minne impairments i Alzheimers sykdom (AD). Selv om therapeutics har vist seg å redusere Aβ nivåer i hjernen til AD pasienter, bedre dette ikke minne. Siden Aβ samler i hjernen før utseendet av minne impairments, kan målretting Aβ være ineffektivt for behandling av AD pasienter som allerede viser minne underskudd. Derfor bør nedstrøms signalisering på grunn av Aβ avsettelse blokkeres før Annonsen utvikling. Aβ induserer axonal degenerasjon, fører til avbrudd i nevrale nettverk og minne impairments. Selv om det er mange studier på mekanismer for Aβ toksisitet, fortsatt kilden til Aβ toksisitet ukjent. For å identifisere kilden, foreslår vi en ny protokoll som bruker mikroskopi, gene transfection og levende celle for å undersøke tidlig endringer forårsaket av Aβ i axonal veksten kjeglene kulturperler neurons. Denne protokollen avslørte at Aβ indusert clathrin-mediert endocytose i axonal veksten kjeglene etterfulgt av vekst kjegle kollaps, demonstrere at hemming av endocytose hindrer Aβ toksisitet. Denne protokollen vil være nyttig i å studere tidlig effekten av Aβ og kan føre til mer effektiv og forebyggende AD behandling.

Introduction

Amyloid-β (Aβ) innskudd finnes i hjernen av pasienter med Alzheimers sykdom (AD) og regnes som en viktig årsak til AD1 som forstyrrer nevrale nettverk, fører til minne impairments2,3,4. Mange klinisk narkotika kandidater har vist seg å effektivt hindre amyloid-β (Aβ) produksjon eller fjerne Aβ innskudd. Men har ingen klart å forbedre minnefunksjon i AD pasienter5. Aβ er allerede deponert i hjernen før utbruddet av minne impairments6; Derfor kan redusere Aβ nivåer i hjernen til pasienter stiller minne impairments være ineffektivt. Aβ avsettelse finnes i preklinisk AD pasienter; men presenterer disse pasientene sjelden neuronal degenerasjon og minne underskudd6. Det er en tidsforsinkelse mellom Aβ avsettelse og minne impairments. Derfor blokkerer en viktig strategi for forebygging av AD Aβ toksisitet signalering i den tidlige fasen av Annonsen, før utviklingen av minne underskudd. Aβ avsettelse induserer axon degenerasjon7,8,9,10,11,12,13, som kan føre til en forstyrrelse av nevrale nettverk og permanent nedskrivninger av minnefunksjon. Mange studier har undersøkt virkningsmekanismer Aβ toksisitet; for eksempel har degenerert axons AD mus hjerner blitt vist å ha økt autophagy14. Calcineurin aktivisering har blitt rapportert som en mulig mekanisme Aβ-indusert axonal degenerasjon15; imidlertid fortsatt direkte avtrekkeren axonal degenerasjon ukjent.

Denne studien fokuserer på sammenbruddet av axonal avslutninger kalt veksten kjeglene. Sammenbruddet av axonal veksten kjeglene kan skyldes axonal vekst repellents, som semaphorin 3A og ephrin-A516,17,18,19,20. Skjul-lignende dystrophic axonal avslutninger er observert i hjernen til AD pasienter21,22. I tillegg kan en svikt i vekst kjegle fungerer provosere axonal degenerasjon23. Men er det ukjent om Aβ induserer vekst kjegle kollaps. Derfor presenterer denne studien en ny protokoll å observere tidlig effekten av Aβ i kulturperler nevroner og undersøke Aβ-indusert vekst kjegle kollaps.

Protocol

Alle eksperimentene ble utført i henhold til veiledning og bruk av forsøksdyr på Sugitani Campus av University of Toyama og ble godkjent av komiteen for Animal Care og bruk av forsøksdyr på Sugitani Campus av den University of Toyama (A2014INM-1, A2017INM-1). 1. kollaps analysen Poly-D-lysine belegg Coat 8-brønnen lysbilder med 400 μL 5 μg/mL poly-D-lysine (PDL) i fosfat-bufret saltvann (PBS) og ruge dem på 37 ° C over natten. Fjerne PDL løsningen og vas…

Representative Results

I denne protokollen, ble Aβ1-42 inkubert på 37 ° C i 7 dager før bruk fordi inkubasjonstiden for Aβ1-42 var nødvendig for å produsere toksiske formene27,28,30,35. Etter denne inkubasjon ble aggregert former for Aβ observert (figur 1A). Det har blitt rapportert at lignende inkubasjonstiden for Aβ1-42 produsert fibril form av…

Discussion

Protokollen beskrevet i denne studien aktivert observasjon av tidlig fenomener i axonal veksten kjeglene etter Aβ1-42 behandling. Aβ1-42 indusert endocytose i axonal veksten kjeglene innen 20 min, og vekst kjegle kollaps ble observert i 1t behandling. Denne endocytose var sannsynligvis formidlet av clathrin. Bruker denne protokollen, ble hemming av clathrin-mediert endocytose bekreftet for å hindre Aβ1-42-indusert vekst kjegle kollaps og axonal degenerasjon i kulturperler neurons27. I tillegg …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble delvis støttet av forskningsmidler fra JSP (KAKENHI 18K 07389), Japan, Takeda Science Foundation, Japan og Kobayashi farmasøytiske co, Ltd, Japan.

Materials

ddY mice SLC
Eight-well culture slide Falcon 354108
poly D lysine Wako 168-19041
Culture medium, Neurobasal medium Gibco 21103-049
house serum Gibco 26050-088
glucose Wako 049-31165
L-glutamine Wako 074-00522
0.05% trypsin Gibco 25300-054
DNase I Worthington DP
soybean trypsin inhibitor Gibco 17075-029
Filter with 70 µm mesh size, cell strainer Falcon 352350
B-27 supplement Gibco 17504-044
CO2 incubator Astec SCA-165DS
Amyloid β1-42 Sigma-Aldrich A9810
paraformaldehyde Wako 162-16065
sucrose  Wako 196-00015
Aqueous mounting medium, Aqua-Poly/Mount polysciences 18606-20
Inverted microscope A Carl Zeiss Axio Observer Z1  Connected with AxioCam MRm, Heating Unit XL S, CO2 Module S1, and TempModule S1
Objective Plan-Apochromat 20x Carl Zeiss 420650-9901
Objective Plan-Apochromat 63x Carl Zeiss 440762-9904
Objective, CFI Plan Apo Lambda 40X Nikon
anti-MAP2 IgG Abcam ab32454
anti-tau-1 IgG Chemicon MAB3420
anti-amyloid β antibody IBL 10379 clone 11A1
normal goat serum Wako 143-06561
bovine serum albumin Wako 010-25783
t-octylphenoxypolyethoxyethanol Wako 169-21105
goat anti-mouse IgG conjugated with AlexaFluor 594 Invitrogen A11032
goat anti-rabbit IgG conjugated with AlexaFluor 488 Invitrogen A11029
hot plate NISSIN NHP-M30N
cover glass Fisher Scientific 12-545-85
35 mm dish IWAKI 1000-035
Silicone RTV Shin-Etsu KE42T
hand punch Roper Whitney No. XX
Fluorescence membrane probe, FM1-43FX Invitrogen F35355
Ca2+– and Mg2+-free Hanks' balanced salt solution Gibco 14175-095
Transfection solution, Nucleofector solution Lonza VPG-1001
Electroporator, Nucleofector I Amaxa
Inverted microscope B Keyence BZ-X710
Image software, ImageJ NIH https://imagej.nih.gov/ij/

References

  1. Selkoe, D. J., Hardy, J. The amyloid hypothesis of Alzheimer’s disease at 25 years. EMBO Molecular Medicine. 8 (6), 595-608 (2016).
  2. Dickson, T. C., Vickers, J. C. The morphological phenotype of beta-amyloid plaques and associated neuritic changes in Alzheimer’s disease. Neuroscience. 105 (1), 99-107 (2001).
  3. Hardy, J., Selkoe, D. J. The amyloid hypothesis of Alzheimer’s disease: progress and problems on the road to therapeutics. Science. 297 (5580), 353-356 (2002).
  4. Perl, D. P. Neuropathology of Alzheimer’s disease. Mount Sinai Journal of Medicine. 77 (1), 32-42 (2010).
  5. Graham, W. V., Bonito-Oliva, A., Sakmar, T. P. Update on Alzheimer’s Disease Therapy and Prevention Strategies. Annual Review of Medicine. 68, 413-430 (2017).
  6. Jack, C. R., et al. Hypothetical model of dynamic biomarkers of the Alzheimer’s pathological cascade. Lancet Neurology. 9 (1), 119-128 (2010).
  7. Kuboyama, T., Tohda, C., Komatsu, K. Neuritic regeneration and synaptic reconstruction induced by withanolide A. British Journal of Pharmacology. 144 (7), 961-971 (2005).
  8. Tohda, C., Urano, T., Umezaki, M., Nemere, I., Kuboyama, T. Diosgenin is an exogenous activator of 1,25D3-MARRS/Pdia3/ERp57 and improves Alzheimer’s disease pathologies in 5XFAD mice. Scientific Reports. 2, 535 (2012).
  9. Jawhar, S., Trawicka, A., Jenneckens, C., Bayer, T. A., Wirths, O. Motor deficits, neuron loss, and reduced anxiety coinciding with axonal degeneration and intraneuronal Abeta aggregation in the 5XFAD mouse model of Alzheimer’s disease. Neurobiology of Aging. 33 (1), e129-e140 (2012).
  10. Postuma, R. B., et al. Substrate-bound beta-amyloid peptides inhibit cell adhesion and neurite outgrowth in primary neuronal cultures. Journal of Neurochemistry. 74 (3), 1122-1130 (2000).
  11. Tohda, C., Nakada, R., Urano, T., Okonogi, A., Kuboyama, T. Kamikihi-to (KKT) rescues axonal and synaptic degeneration associated with memory impairment in a mouse model of Alzheimer’s disease, 5XFAD. International Journal of Neuroscience. 121 (12), 641-648 (2011).
  12. Tsai, J., Grutzendler, J., Duff, K., Gan, W. B. Fibrillar amyloid deposition leads to local synaptic abnormalities and breakage of neuronal branches. Nature Neuroscience. 7 (11), 1181-1183 (2004).
  13. Wirths, O., Weis, J., Kayed, R., Saido, T. C., Bayer, T. A. Age-dependent axonal degeneration in an Alzheimer mouse model. Neurobiology of Aging. 28 (11), 1689-1699 (2007).
  14. Sanchez-Varo, R., et al. Abnormal accumulation of autophagic vesicles correlates with axonal and synaptic pathology in young Alzheimer’s mice hippocampus. Acta Neuropathologica. 123 (1), 53-70 (2012).
  15. Wu, H. Y., et al. Amyloid beta induces the morphological neurodegenerative triad of spine loss, dendritic simplification, and neuritic dystrophies through calcineurin activation. Journal of Neuroscience. 30 (7), 2636-2649 (2010).
  16. Campbell, D. S., Holt, C. E. Chemotropic responses of retinal growth cones mediated by rapid local protein synthesis and degradation. Neuron. 32 (6), 1013-1026 (2001).
  17. Jurney, W. M., Gallo, G., Letourneau, P. C., McLoon, S. C. Rac1-mediated endocytosis during ephrin-A2- and semaphorin 3A-induced growth cone collapse. Journal of Neuroscience. 22 (14), 6019-6028 (2002).
  18. Luo, Y., Raible, D., Raper, J. A. Collapsin: a protein in brain that induces the collapse and paralysis of neuronal growth cones. Cell. 75 (2), 217-227 (1993).
  19. Nicol, X., Muzerelle, A., Rio, J. P., Metin, C., Gaspar, P. Requirement of adenylate cyclase 1 for the ephrin-A5-dependent retraction of exuberant retinal axons. Journal of Neuroscience. 26 (3), 862-872 (2006).
  20. Wu, K. Y., et al. Local translation of RhoA regulates growth cone collapse. Nature. 436 (7053), 1020-1024 (2005).
  21. Benes, F. M., Farol, P. A., Majocha, R. E., Marotta, C. A., Bird, E. D. Evidence for axonal loss in regions occupied by senile plaques in Alzheimer cortex. Neuroscience. 42 (3), 651-660 (1991).
  22. Masliah, E., et al. An antibody against phosphorylated neurofilaments identifies a subset of damaged association axons in Alzheimer’s disease. American Journal of Pathology. 142 (3), 871-882 (1993).
  23. Zhou, F. Q., Snider, W. D. Intracellular control of developmental and regenerative axon growth. Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences. 361 (1473), 1575-1592 (2006).
  24. Teshigawara, K., et al. A novel compound, denosomin, ameliorates spinal cord injury via axonal growth associated with astrocyte-secreted vimentin. British Journal of Pharmacology. 168 (4), 903-919 (2013).
  25. Kuboyama, T., Tohda, C., Komatsu, K. Withanoside IV and its active metabolite, sominone, attenuate A beta(25-35)-induced neurodegeneration. European Journal of Neuroscience. 23 (6), 1417-1426 (2006).
  26. Tanabe, N., Kuboyama, T., Tohda, C. Matrine Directly Activates Extracellular Heat Shock Protein 90, Resulting in Axonal Growth and Functional Recovery in Spinal Cord Injured-Mice. Frontiers in Pharmacology. 9 (446), (2018).
  27. Kuboyama, T., Lee, Y. A., Nishiko, H., Tohda, C. Inhibition of clathrin-mediated endocytosis prevents amyloid beta-induced axonal damage. Neurobiology of Aging. 36 (5), 1808-1819 (2015).
  28. Pike, C. J., Walencewicz, A. J., Glabe, C. G., Cotman, C. W. In vitro aging of beta-amyloid protein causes peptide aggregation and neurotoxicity. Brain Research. 563 (1-2), 311-314 (1991).
  29. Uchida, N., et al. Yokukansan inhibits social isolation-induced aggression and methamphetamine-induced hyperlocomotion in rodents. Biological and Pharmaceutical Bulletin. 32 (3), 372-375 (2009).
  30. Pike, C. J., Burdick, D., Walencewicz, A. J., Glabe, C. G., Cotman, C. W. Neurodegeneration induced by beta-amyloid peptides in vitro: the role of peptide assembly state. Journal of Neuroscience. 13 (4), 1676-1687 (1993).
  31. Kuboyama, T., Hirotsu, K., Arai, T., Yamasaki, H., Tohda, C. Polygalae Radix Extract Prevents Axonal Degeneration and Memory Deficits in a Transgenic Mouse Model of Alzheimer’s Disease. Frontiers in Pharmacology. 8, 805 (2017).
  32. Dotti, C. G., Sullivan, C. A., Banker, G. A. The establishment of polarity by hippocampal neurons in culture. Journal of Neuroscience. 8 (4), 1454-1468 (1988).
  33. Arimura, N., Kaibuchi, K. Neuronal polarity: from extracellular signals to intracellular mechanisms. Nature Reviews: Neuroscience. 8 (3), 194-205 (2007).
  34. De Felice, F. G., et al. Alzheimer’s disease-type neuronal tau hyperphosphorylation induced by A beta oligomers. Neurobiology of Aging. 29 (9), 1334-1347 (2008).
  35. Izuo, N., et al. Toxicity in Rat Primary Neurons through the Cellular Oxidative Stress Induced by the Turn Formation at Positions 22 and 23 of Aβ42. ACS Chemical Neuroscience. 3 (9), 674-681 (2012).
  36. Fujiwara, H., et al. Uncaria rhynchophylla, a Chinese medicinal herb, has potent antiaggregation effects on Alzheimer’s beta-amyloid proteins. Journal of Neuroscience Research. 84 (2), 427-433 (2006).
  37. Murakami, K., et al. Monoclonal antibody against the turn of the 42-residue amyloid beta-protein at positions 22 and 23. ACS Chemical Neuroscience. 1 (11), 747-756 (2010).
  38. Ford, M. G., et al. Simultaneous binding of PtdIns(4,5)P2 and clathrin by AP180 in the nucleation of clathrin lattices on membranes. Science. 291 (5506), 1051-1055 (2001).
  39. Tojima, T., Itofusa, R., Kamiguchi, H. Asymmetric clathrin-mediated endocytosis drives repulsive growth cone guidance. Neuron. 66 (3), 370-377 (2010).
  40. Ahmed, G., et al. Draxin inhibits axonal outgrowth through the netrin receptor DCC. Journal of Neuroscience. 31 (39), 14018-14023 (2011).
  41. Brennaman, L. H., Moss, M. L., Maness, P. F. EphrinA/EphA-induced ectodomain shedding of neural cell adhesion molecule regulates growth cone repulsion through ADAM10 metalloprotease. Journal of Neurochemistry. 128 (2), 267-279 (2014).
  42. Tojima, T., et al. Attractive axon guidance involves asymmetric membrane transport and exocytosis in the growth cone. Nature Neuroscience. 10 (1), 58-66 (2007).
  43. Ooashi, N., Futatsugi, A., Yoshihara, F., Mikoshiba, K., Kamiguchi, H. Cell adhesion molecules regulate Ca2+-mediated steering of growth cones via cyclic AMP and ryanodine receptor type 3. Journal of Cell Biology. 170 (7), 1159-1167 (2005).
  44. Biswas, S., Kalil, K. The Microtubule-Associated Protein Tau Mediates the Organization of Microtubules and Their Dynamic Exploration of Actin-Rich Lamellipodia and Filopodia of Cortical Growth Cones. Journal of Neuroscience. 38 (2), 291-307 (2018).
  45. Kuboyama, T., et al. Paxillin phosphorylation counteracts proteoglycan-mediated inhibition of axon regeneration. Experimental Neurology. 248, 157-169 (2013).
check_url/58229?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kuboyama, T. Visualizing Axonal Growth Cone Collapse and Early Amyloid β Effects in Cultured Mouse Neurons. J. Vis. Exp. (140), e58229, doi:10.3791/58229 (2018).

View Video