Her presenterer vi en neste generasjons sekvensering protokoll for 16S rRNA sekvensering som gjør identifisering og karakterisering av mikrobielle samfunn i vektorer. Denne metoden innebærer DNA utvinning, forsterkning og barcoding av prøver gjennom PCR, sekvensering flyt-celle og bioinformatikk å matche sekvens data til phylogenetic informasjon.
I de siste tiårene, har vektor-sykdommer igjen dukket opp og utvidet på urovekkende priser, forårsaker betydelig sykelighet og dødelighet verden. Effektiv og lett tilgjengelige vaccines mangler for et flertall av disse sykdommer, nødvendiggjør utviklingen av Roman sykdom forminskingsmodulen strategier. Dette innebærer en lovende avenue sykdom kontroll målretting vektor microbiome, fellesskapet av mikrober som bor vektoren. Vector microbiome spiller en sentral rolle i patogen dynamics og manipulering av microbiome har ført til redusert vektor overflod eller patogen overføring for en håndfull vektor-sykdommer. Men krever oversette disse funnene i sykdom kontroll programmene en grundig forståelse av vektor microbial ecology, historisk begrenset av utilstrekkelig teknologi på dette området. Bruk av neste generasjons sekvensering metoder har aktivert rask, svært parallelle sekvenser av ulike mikrobielle samfunn. Målretting svært bevart 16S rRNA genet har muliggjort characterizations av mikrober stede i vektorer under varierende økologiske og eksperimentelle forhold. Denne teknikken innebærer forsterkning av 16S rRNA genet, prøve barcoding via PCR, lasting eksempler på en flyt for sekvensering, og bioinformatikk tilnærminger tilsvarer sekvens databehandling Fylogenetiske informasjon. Art eller slekt nivå identifikasjon for et høyt tall av replikat kan vanligvis oppnås gjennom denne metoden, og dermed omgå utfordringene i lav oppdagelsen, oppløsning og utdata fra tradisjonelle dyrking, mikroskopi eller histologiske flekker teknikker. Derfor denne metoden er velegnet for å karakterisere vektor mikrober under ulike forhold, men for tiden gir ikke informasjon om mikrobiell funksjon, sted vektor, eller svar på antibiotikabehandling. Total, 16S neste generasjons sekvensering er en kraftfull teknikk for å bedre forstå identitet og rollen av vektor mikrober i sykdom dynamics.
Fremveksten og spredningen av vektor-sykdommer i de siste tiårene utgjør en alvorlig trussel mot global menneske og dyr helse. Effektive vaksiner mangler for et flertall av disse sykdommene, og kontroll innsats er hindret av komplekse biologiske natur vektorer og vektor-vert interaksjoner. Forståelsen av mikrobielle interaksjoner i en vektor i patogen overføring kan tillate utviklingen av romanen strategier som omgå disse utfordringene. Spesielt kan interaksjoner mellom vektor-assosiert mikrobiell commensals og symbionter patogener, kalles microbiome, ha viktige konsekvenser for patogen overføring. Overveldende bevis nå støtter denne påstanden, med eksempler som demonstrerer et koblingen mellom vektor microbiome og kompetanse for sykdommer som malaria og Zika virus Lyme sykdom1,2,3. Oversette disse funnene i strategier for Skadekontroll krever imidlertid en langt mer detaljert forståelse av strukturen, funksjon og opprinnelsen til vektor microbiomes. Identifikasjon og karakterisering av vektor mikrobiell samfunnet under varierende økologiske og eksperimentelle forhold utgjør et viktig vei fremover i dette feltet.
En prosedyre for å identifisere mikrobiell innbyggerne i en patogen vektor tilbys her ved å bruke Western black legged kryss, Ixodes pacificus, vector art av patogen Lyme sykdom Borrelia burgdorferi. Mens flått havn flere typer mennesker enn noen andre leddyr, er relativt lite kjent om biologi og samfunnet økologi tick microbiomes4. Det er tydelig at flått havn en variert utvalg av virus, bakterier, sopp og protozoans inkluderer commensals, endosymbionts og forbigående mikrobiell beboere5,4. Tidligere arbeid har vist sterk variasjoner i Ixodes microbiomes forbundet med geografi, arter, sex, liv Stadium og blod måltid kilde6,7,8. Imidlertid mekanismene bak denne varianten er fortsatt ukjent og garanterer mer detaljerte undersøkelser av opprinnelsen og montering av disse mikrobielle samfunn. Flått kan skaffe mikrober gjennom vertikal overføring, kontakt med verter og opptak fra miljøet gjennom voksne, munn og anal pore9. Forstå faktorer forme første dannelsen og utviklingen av tick microbiome, er spesielt relative bidrag loddrett og miljømessige overføring, viktig for å forstå den naturlige mønstre og variasjoner i kryss Microbiome mangfold og hvordan disse samfunnene samhandle i patogen overføring, med mulige programmer sykdom eller vektor.
Kraftig molekylær teknikker, som neste generasjons sekvensering, nå eksisterer for å identifisere mikrobielle samfunn og kan brukes til å karakterisere vektor microbiomes under ulike miljømessige eller eksperimentelle forhold. Før ankomsten av disse høy gjennomstrømming sekvensering tilnærminger avhengig identifikasjon av mikrober hovedsakelig mikroskopi og kultur. Mikroskopi er en rask og enkel teknikk, er morfologiske metoder for å identifisere mikrober iboende subjektiv og grov og begrenset av lav sensitivitet og gjenkjenning10. Kultur-baserte metoder brukes generelt for mikrobiell identifisering og kan brukes til å bestemme mottakelighet av mikrober til narkotika behandlinger11. Men lider denne metoden også av lav følsomhet, som det har blitt anslått at færre enn 2% av miljømessige mikrober kan kultivert i et laboratorium sette12. Histologiske flekker tilnærminger har også vært ansatt å oppdage og lokalisere bestemt mikrober innen vektorer, aktiverer undersøkelser av ulike taxa distribusjoner i haken og studere hypoteser om mikrobiell interaksjoner. Forkunnskaper mikrobiell identitet er imidlertid nødvendig for å velge riktig flekker, gjør denne tilnærmingen dårlig tilpasset for mikrobiell karakterisering og identifikasjon. Videre histologiske flekker er en svært tidkrevende, arbeidskrevende prosess og skalere ikke godt for store. Tradisjonelle molekylær tilnærminger som Sanger sekvensering er tilsvarende begrenset i sin følsomhet og påvisning av ulike mikrobielle samfunn.
Neste generasjons sekvensering tillater rask identifisering av mikrober fra mange eksempler. Standard markør gener og referanse databaser ytterligere muliggjør forbedret taksonomisk oppløsning, ofte til slekten eller arter. Liten delenhet ribosomal RNAs brukes ofte til å oppnå dette målet, med 16S rRNA er den vanligste av bevarte og variable regioner i genet, slik at etableringen av universell primere med unik amplicons for hver bakteriell Art13,14. Denne rapporten viser en prosedyre for å identifisere taxa i kryss microbiome gjennom 16S rRNA neste generasjons sekvensering. Spesielt understreker denne protokollen trinnene involvert i forbereder prøver sekvensering. Mer generalisert informasjon om sekvensering og bioinformatikk trinnene vises, som det er en rekke sekvensering plattformer og analyse programmer tilgjengelig, med omfattende eksisterende dokumentasjon. Generelle muligheten for denne neste generasjons sekvensering er demonstrert ved å bruke det på en undersøkelse av mikrobielle samfunn montering i en nøkkel sykdom vektor.
Neste generasjons sekvensering av 16S rRNA har blitt en standard tilnærming for mikrobiell identifikasjon og aktivert studiet av hvordan vektor microbiomes påvirker patogen overføring. Protokollen skissert her viser bruk av denne metoden å undersøke mikrobiell samfunnet montering i I. pacificus, vector art for Lyme sykdom; men kan det lett brukes for å studere andre kryss arter eller leddyr vector art.
Faktisk, 16S rRNA sekvenser for microbiome analyse er brukt grovt å studere …
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av National Science Foundation gir AS (DEB #1427772, 1745411, 1750037).
Item | Name of Material/Equipment | Company | Catalog # |
1 | DNeasy Blood & Tissue Kit | Qiagen | 69504 |
2 | Qubit 4 Fluorometer | ThermoFisher Scientific | Q3326 |
3 | NanoDrop 8000 Spectrophotometer | ThermoFisher Scientific | ND-8000-GL |
4 | 2x KAPA HiFi HotStart ReadyMix | Kapa Biosystems | KK2501 |
5 | AMPure XP beads | Agen Court | A63880 |
6 | Magnetic Rack | ThermoFisher Scientific | MR02 |
6 | TE buffer | Teknova | T0223 |
7 | Nextera Index Kit | Illumina | FC-121-1011 |
8 | KAPA Library Quantification Kit | Roche | KK4824 |
9 | MiSeq System | Illumina | SY-410-1003 |
10 | MiSeq Reagent Kit v3 | Illumina | MS-102-3001 |
11 | 10 mM Tris-HCl with 0.1% Tween 20 | Teknova | T7724 |