Summary

Kvantitativ Autoradiografisk metode til bestemmelse af de regionale rater for cerebral protein syntese in vivo

Published: June 28, 2019
doi:

Summary

Protein syntese er en kritisk biologisk proces for celler. I hjernen, er det nødvendigt for adaptive ændringer. Måling af satser for proteinsyntese i den intakte hjerne kræver omhyggelige metodologiske overvejelser. Her præsenterer vi L-[1-14C]-leucin kvantitativ autoradiographic metode til bestemmelse af regionale satser for cerebral proteinsyntese in vivo.

Abstract

Protein syntese er nødvendig for udvikling og vedligeholdelse af neuronal funktion og er involveret i adaptive ændringer i nervesystemet. Desuden menes det, at dysregulering af proteinsyntese i nervesystemet kan være en kerne fænotype i nogle udviklingsmæssige lidelser. Nøjagtig måling af raterne af cerebral proteinsyntese i dyremodeller er vigtig for at forstå disse lidelser. Den metode, vi har udviklet, var designet til at blive anvendt til studiet af vågen, opfører dyr. Det er en kvantitativ autoradiographic metode, så det kan give satser i alle regioner af hjernen samtidig. Metoden er baseret på brugen af en Tracer aminosyre, L-[1-14C]-leucin, og en kinetisk model af opførsel af L-leucin i hjernen. Vi valgte L-[1-14C]-leucin som Tracer, fordi det ikke fører til fremmede mærkede metaboliske produkter. Det er enten indarbejdet i protein eller hurtigt metaboliseres til at give 14co2 , som er fortyndet i en stor pulje af ikke-mærket Co2 i hjernen. Metoden og modellen giver også mulighed for bidrag af ikke-mærket leucin afledt af vævs proteolyse til vævs forløberen for proteinsyntese. Metoden har den rumlige opløsning til at bestemme proteinsyntese satser i celle og neuropil lag, samt hypothalamus og kranielle nerve kerner. For at opnå pålidelige og reproducerbare kvantitative data er det vigtigt at overholde proceduremæssige detaljer. Her præsenterer vi de detaljerede procedurer for den kvantitative autoradiographic L-[1-14C]-leucin metode til bestemmelse af regionale satser for proteinsyntese in vivo.

Introduction

Protein syntese er en vigtig biologisk proces, der kræves for langsigtet adaptiv ændring i nervesystemet1. Inhibe ring proteinsyntese blokerer langsigtet hukommelse opbevaring i både hvirvelløse dyr og hvirveldyr2. Protein syntese er afgørende for vedligeholdelse af de sene faser af nogle former for langsigtede potensering (LTP) og langvarig depression (LTD)3, neuronal overlevelse under udvikling4, og for generel vedligeholdelse af neuronen og dens synaptisk tilslutninger5. Måling af satser for hjernen proteinsyntese kan være et vigtigt redskab til at studere adaptive ændringer samt neuroudviklingsmæssige lidelser og lidelser relateret til indlæring og hukommelse.

Vi har udviklet en metode til at kvantificere satserne for cerebral proteinsyntese in vivo i et vågen dyr, der tilbyder iboende fordele i forhold til andre teknikker, der estimerer satser i ex vivo eller in vitro præparater af hjernevæv6. Først og fremmest er anvendeligheden til målinger i den intakte hjerne i et vågen dyr. Dette er en vigtig overvejelse, fordi det giver mulighed for målinger med synaptisk struktur og funktion på plads og uden bekymringer om post mortem effekter. Desuden opnår den kvantitative autoradiografiske tilgang, som vi anvender, en høj grad af rumlig lokalisering. Mens energien af 14C er sådan, at vi ikke kan lokalisere Tracer på subcellulære eller cellulære niveau, kan vi måle satser i cellelag og små hjerneområder som hypothalamus kerner, med ca. en 25 μm opløsning7.

En af udfordringerne ved in vivo-målinger med aktive er at sikre, at radioaktivt mærkede måles i produktet af en reaktion af interesse i stedet for ureageret mærket forløber eller andre fremmede mærkede metaboliske produkter6. Vi valgte L-[1-14C]-leucin som Tracer aminosyre, fordi det enten er indarbejdet i protein eller hurtigt metaboliseres til 14Co2, som er fortyndet i den store pulje af ikke-mærket Co2 i hjernen som følge af den høje hastighed af energimetabolisme8. Desuden findes alle 14c, der ikke er indarbejdet i protein, primært som fri [14c]-leucin, som over 60 minutters forsøgsperiode er næsten helt ryddet fra vævet6. Proteiner er derefter fastgjort til væv med formalin og efterfølgende skylles med vand for at fjerne enhver fri [14C]-leucin før Autoradiografi.

En anden vigtig overvejelse er spørgsmålet om fortynding af den specifikke aktivitet af prækursor aminosyre puljen ved ikke-mærkede aminosyrer afledt af vævs proteolyse. Vi har vist, at i voksne rotte og mus, omkring 40% af forløberen leucin pool for proteinsyntese i hjernen kommer fra aminosyrer afledt af protein opdeling6. Dette skal indgå i beregningen af de regionale satser for cerebral Proteinsyntese (rCPS) og skal bekræftes i undersøgelser, hvor dette forhold kan ændre sig. Metodens teoretiske grundlag og antagelser er blevet præsenteret i detaljer andetsteds6. I dette dokument fokuserer vi på de proceduremæssige spørgsmål i forbindelse med anvendelsen af denne metode.

Denne metode har været anvendt til bestemmelse af RCPS i jordegern9, får10, rhesus aber11, rotter12,13,14,15,16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21, en musemodel af tuberøs sklerose Complex22, en musemodel af skrøbelige x-syndrom23,24,25,26, skrøbelige x premutation mus27, og en musemodel af fenylketonuri28. I dette manuskript præsenterer vi procedurerne for måling af Rcp’er med den in vivo Auto adiografiske L-[1-14C]-leucin-metode. Vi præsenterer rCPS i hjernen regioner af en vågen kontrol mus. Vi viser også, at in vivo administration af anisomycin, en inhibitor af oversættelse, afskaffer proteinsyntesen i hjernen.

Protocol

Bemærk: alle dyr procedurer blev godkendt af National Institute of Mental Health Animal Care og use udvalget og blev udført i henhold til National Institutes of Health retningslinjer om pasning og anvendelse af dyr. En oversigt over protokollen er præsenteret i figur 1. 1. kirurgisk implantat katetre i en femoral vene og arterie til administration af Tracer og indsamling af tidsindstillede arterielle blodprøver hhv. Gennemfør kirurgi…

Representative Results

Her viser vi et repræsentativt eksperiment, der viser virkningerne af tidligere administration af en proteinsyntese hæmmer på Rcp’er. Anisomycin i normalt saltvand blev administreret til en voksen C57/BL6 mandlig vild-type mus subkutant (100 mg/kg) 30 min før initiering af rCPS-bestemmelse. Virkningerne af anisomycin-behandling sammenlignet med et køretøjs behandlet kontrol dyr viser, at Rcp’er næsten ikke er målbart i den anisomycin-behandlede mus (figur 4</s…

Discussion

Vi fremlægger en kvantitativ metode til bestemmelse af de regionale satser for cerebral Proteinsyntese (rCPS) in vivo i forsøgsdyr. Denne metode har betydelige fordele i forhold til eksisterende metoder: 1. Målingerne foretages i vågen opfører dyret, så de afspejler igangværende processer i den fungerende hjerne. 2. Målingerne foretages ved hjælp af kvantitativ Autoradiografi, der giver mulighed for at bestemme Rcp’er i alle regioner og subregioner af hjernen samtidigt. 3. metodens kinetiske model tager hensyn t…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne anerkende Zengyan XIa for genotypebestemmelse af musene, Tom Burlin til behandling af aminosyrer og film, og Mei Qin for at udføre nogle af de rCPS eksperimenter. Denne forskning blev støttet af Intramural Research program af NIMH, ZIA MH00889. RMS blev også støttet af en autisme taler postdoc Fellowship 8679 og en FRAXA postdoc stipendium.

Materials

Mice The Jackson Laboratory 003024 Fmr1 knockout breeding pairs
Anisomycin Tocris Bioscience 1290
Microhematocrit Tubes Drummond Scientific 1-000-3200-H capillary tubes
Critoseal Capillary Tube Sealant Leica Microsystems 39215003 sealant putty
Glass vial inserts Agilent 5183-2089 used to collect blood samples
Digi-Med Blood Pressure Analyzer Micro-Med Inc. BPA-400 blood pressure analyzer
Bayer Breeze 2 Blood Glucose Monitoring System Bayer Breeze 9570A glucose meter
Gastight syringe Hamilton Co. 1710 tuberculin glass syringe
HeatMax HotHands-2 Hand Warmers HeatMax Model HH2 warming pads
Heparin Lock Flush Solution Fresenius Kabi USA, LLC 504505 heparin saline
Clear animal container Instech MTANK/W animal enclosure
Spring tether Instech PS62 catheter tube/rodent attachment
Swivel Instech 375/25 hooks to spring tether
Swivel arm and mount Instech SMCLA hooks to swivel and animal enclosure
Tether button Instech VAB62BS/22 attaches to bottom of spring tether
Stainless steel tube Made in-house N/A used to snake catheters through mouse
Matrx VIP 3000 Matrx 91305430 isoflurane vaporizer
Isoflurane Stoelting Co. 50207 isoflurane/halothane adsorber
Clippers Oster Finisher Model 59
Surgical skin hooks Made in-house (??) N/A (??)
0.9% Sodium Chloride Saline APP Pharmaceuticals LLC 918610
Forceps Fine Science Tools 11274-20
Surgical scissors Fine Science Tools 14058-11
Microscissors Fine Science Tools 15000-00
UNIFY silk surgical sutures AD Surgical #S-S618R13 6-0 USP, non-absorbable
PE-8 polyethylene tubing SAI Infusion Technologies PE-8-25
Syringe Becton Dickinson and Co. 309659 1cc/mL
PE-10 polyethylene tubing Clay Adams 427400
MCID Analysis Imaging Research Inc. Version 7.0 optical density analysis
Gelatin-coated slides (75x25mm) FD Neurotechnologies PO101
Cryostat Leica CM1850
Super RX-N medical x-ray film Fuji 47410-19291
Hypercassettes (8×10 in) Amersham Pharmacia Biotech 11649
[1-14C]leucine Moravek MC404E
Microcentrifuge tube Sarstedt Aktiengesellschaft & Co. 72.692.005 used to deproteinize blood samples
Glass pasteur pipette Wheaton 357335
Glass wool Sigma-Aldrich 18421
Nitrogen NIH Supply Center 6830009737285
Scintillation fluid CytoScint 882453
Liquid scintilllation counter Packard Tri-Carb 2250CA
Amino acid analyzer Pickering Laboratories Pinnacle PCX
HPLC unit Agilent Technologies 1260 Infinity include 1260 Bio-Inert Pump
Surgical microscope Wild Heerbrugg M650
Sulfosalicylic acid Sigma-Aldrich MKBS1634V 5-sulfosalicylic acid dihydrate
Norleucine Sigma N8513
1.0 N HCl Sigma-Aldrich H9892
[H3]leucine Moraevk MC672
Falcon tube Thermo Scientific 339652 50 mL conical centrifuge tubes
Stopwatch Heuer Microsplit Model 1000 1/100 min
Euthanasia Solution Vet One H6438
Northern Light Precision Illuminator Imaging Research Inc. Model B95 fluorescent light box
Micro-NIKKOR 55mm f/2.8 Nikon 1442 CDD camera

References

  1. West, A. E., et al. Calcium regulation of neuronal gene expression. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98, 11024-11031 (2001).
  2. Siegel, G., Agranoff, B., Albers, R. W., Fisher, S., Uhler, M. . Basic Neurochemistry. , (1999).
  3. Nguyen, P. V., Abel, T., Kandel, E. R. Requirement of a critical period of transcription for induction of a late phase of LTP. Science. 265, 1104-1107 (1994).
  4. Mao, Z., Bonni, A., Xia, F., Nadal-Vicens, M., Greenberg, M. E. Neuronal activity-dependent cell survival mediated by transcription factor MEF2. Science. 286, 785-790 (1999).
  5. Pfeiffer, B. E., Huber, K. M. Current advances in local protein synthesis and synaptic plasticity. The Journal of Neuroscience: the Official Journal of the Society for Neuroscience. 26, 7147-7150 (2006).
  6. Smith, C. B., Deibler, G. E., Eng, N., Schmidt, K., Sokoloff, L. Measurement of local cerebral protein synthesis in vivo: influence of recycling of amino acids derived from protein degradation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 85, 9341-9345 (1988).
  7. Schmidt, K. C., Smith, C. B. Resolution, sensitivity and precision with autoradiography and small animal positron emission tomography: implications for functional brain imaging in animal research. Nuclear Medicine and Biology. 32, 719-725 (2005).
  8. Banker, G., Cotman, C. W. Characteristics of different amino acids as protein precursors in mouse brain: advantages of certain carboxyl-labeled amino acids. Archives of Biochemistry and Biophysics. 142, 565-573 (1971).
  9. Frerichs, K. U., et al. Suppression of protein synthesis in brain during hibernation involves inhibition of protein initiation and elongation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95, 14511-14516 (1998).
  10. Abrams, R. M., Burchfield, D. J., Sun, Y., Smith, C. B. Rates of local cerebral protein synthesis in fetal and neonatal sheep. The American Journal of Physiology. 272, R1235-R1244 (1997).
  11. Nakanishi, H., et al. Positive correlations between cerebral protein synthesis rates and deep sleep in Macaca mulatta. The European Journal of Neuroscience. 9, 271-279 (1997).
  12. Sun, Y., Deibler, G. E., Sokoloff, L., Smith, C. B. Determination of regional rates of cerebral protein synthesis adjusted for regional differences in recycling of leucine derived from protein degradation into the precursor pool in conscious adult rats. Journal of Neurochemistry. 59, 863-873 (1992).
  13. Scammell, T. E., Schwartz, W. J., Smith, C. B. No evidence for a circadian rhythm of protein synthesis in the rat suprachiasmatic nuclei. Brain Research. 494, 155-158 (1989).
  14. Smith, C. B., Eintrei, C., Kang, J., Sun, Y. Effects of thiopental anesthesia on local rates of cerebral protein synthesis in rats. The American Journal of Physiology. 274, E852-E859 (1998).
  15. Sun, Y., Deibler, G. E., Smith, C. B. Effects of axotomy on protein synthesis in the rat hypoglossal nucleus: examination of the influence of local recycling of leucine derived from protein degradation into the precursor pool. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism: Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 13, 1006-1012 (1993).
  16. Smith, C. B., Yu, W. H. Rates of protein synthesis in the regenerating hypoglossal nucleus: effects of testosterone treatment. Neurochemical Research. 19, 623-629 (1994).
  17. Orzi, F., Sun, Y., Pettigrew, K., Sokoloff, L., Smith, C. B. Effects of acute and delayed effects of prior chronic cocaine administration on regional rates of cerebral protein synthesis in rats. The Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 272, 892-900 (1995).
  18. Nadel, J., et al. Voluntary exercise regionally augments rates of cerebral protein synthesis. Brain Research. 1537, 125-131 (2013).
  19. Sun, Y., et al. Rates of local cerebral protein synthesis in the rat during normal postnatal development. The American Journal of Physiology. 268, R549-R561 (1995).
  20. Smith, C. B., Sun, Y., Sokoloff, L. Effects of aging on regional rates of cerebral protein synthesis in the Sprague-Dawley rat: examination of the influence of recycling of amino acids derived from protein degradation into the precursor pool. Neurochemistry International. 27, 407-416 (1995).
  21. Ingvar, M. C., Maeder, P., Sokoloff, L., Smith, C. B. The effects of aging on local rates of cerebral protein synthesis in rats. Monographs in Neural Sciences. 11, 47-50 (1984).
  22. Sare, R. M., Huang, T., Burlin, T., Loutaev, I., Smith, C. B. Decreased rates of cerebral protein synthesis measured in vivo in a mouse model of Tuberous Sclerosis Complex: unexpected consequences of reduced tuberin. Journal of Neurochemistry. 145, 417-425 (2018).
  23. Liu, Z. H., Huang, T., Smith, C. B. Lithium reverses increased rates of cerebral protein synthesis in a mouse model of fragile X syndrome. Neurobiology of Disease. 45, 1145-1152 (2012).
  24. Qin, M., et al. Altered cerebral protein synthesis in fragile X syndrome: studies in human subjects and knockout mice. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism: Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 33, 499-507 (2013).
  25. Qin, M., Kang, J., Burlin, T. V., Jiang, C., Smith, C. B. Postadolescent changes in regional cerebral protein synthesis: an in vivo study in the FMR1 null mouse. The Journal of Neuroscience: the Official Journal of the Society for Neuroscience. 25, 5087-5095 (2005).
  26. Qin, M., et al. R-Baclofen Reverses a Social Behavior Deficit and Elevated Protein Synthesis in a Mouse Model of Fragile X Syndrome. The International Journal of Neuropsychopharmacology. 18, pyv034 (2015).
  27. Qin, M., et al. Cerebral protein synthesis in a knockin mouse model of the fragile X premutation. ASN Neuro. 6, (2014).
  28. Smith, C. B., Kang, J. Cerebral protein synthesis in a genetic mouse model of phenylketonuria. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97, 11014-11019 (2000).
  29. Reivich, M., Jehle, J., Sokoloff, L., Kety, S. S. Measurement of regional cerebral blood flow with antipyrine-14C in awake cats. Journal of Applied Physiology. 27, 296-300 (1969).
check_url/58503?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Saré, R. M., Torossian, A., Rosenheck, M., Huang, T., Beebe Smith, C. Quantitative Autoradiographic Method for Determination of Regional Rates of Cerebral Protein Synthesis In Vivo. J. Vis. Exp. (148), e58503, doi:10.3791/58503 (2019).

View Video