Qui, descriviamo un protocollo dettagliato che delinea una fluorescente nuova tecnica per la rilevazione di proteine totali in gel di poliacrilammide di pittura. Il protocollo utilizza una sonda d’argento dello ione specifico fluorescenza accensione, rileva Ag+-complessi della proteina ed Elimina alcune limitazioni dei tradizionali cromogeniche macchie d’argento.
Macchiatura d’argento è una tecnica colorimetrica ampiamente utilizzata per visualizzare le bande proteiche in gel di poliacrilammide dopo elettroforesi del gel di sodio dodecil solfato-poliacrilammide (SDS-PAGE). Le macchie d’argento classiche hanno alcuni inconvenienti, come alta priorità bassa che macchia, recupero di proteina povera, scarsa riproducibilità, una gamma dinamica lineare stretta per la quantificazione e la limitata compatibilità con spettrometria di massa (MS). Ora, con l’uso di una sonda di fluorogenic Ag+ , TPE-4TA, abbiamo sviluppato un fluorescente argento che macchia il metodo per la visualizzazione di proteine totali in gel di poliacrilammide. Questa nuova macchia evita il passaggio di riduzione d’argento fastidioso in tradizionali macchie d’argento. Inoltre, la macchia d’argento fluorescente dimostra buona riproducibilità, sensibilità e quantificazione lineare nella rilevazione della proteina, rendendolo una macchia di gel di proteina utile e pratico.
Molti metodi di colorazione sono state usate per visualizzare proteine elettroforesi su gel in seguito, ad esempio utilizzando coloranti colorimetrici come Coomassie Brilliant Blue, macchia d’argento, fluorescenza, o radioattivo etichettatura1,2, 3 , 4. macchiatura d’argento è considerata una delle tecniche più sensibili per la rilevazione di proteine che richiedono reagenti semplici ed economici. Possono essere classificato in due famiglie principali: la macchia d’argento ammoniacale e il nitrato d’argento macchia5,6. Nel metodo d’argento ammoniacale alcalino, il complesso di argento-diammina è prodotta con idrossido di sodio e ammoniaca e ridotto ad argento metallico durante lo sviluppo utilizzando una soluzione di formaldeide acide. La macchia può ospitare in modo efficiente per proteine basiche ma mostra una prestazione compromessa per le proteine acide e neutre ed è, inoltre, limitata ai sistemi elettroforetiche della taurina e glicina classica. In confronto, le macchie di nitrato d’argento sfruttano l’alta bio-affinità degli ioni d’argento per proteine, principalmente la solfidrilico e carbossilico gruppi da catene laterali e tendono a macchiare le proteine acide in modo più efficiente7. Dopo agli ioni d’argento vincolante, una soluzione in via di sviluppo (in genere in una soluzione di carbonato di metallo contenente formaldeide e sodio tiosolfato) viene applicata per ridurre gli ioni d’argento a grani d’argento metallici, che costruire un colore marrone-scuro per visualizzare la fasce della proteina.
Sebbene macchiatura d’argento è stato ben nota per la sua versatilità e l’alta sensibilità dal suo sviluppo nel 1970s8, il metodo è spesso considerato come difficile. Metodi di colorazione argento hanno passaggi di tempo-limitato e mostrano scarsa riproducibilità. Poiché il colore della macchia d’argento non è solitamente uniforme e dipende il passo di riduzione, che è difficile da controllare, la macchia d’argento non è un metodo quantitativo e, quindi, non raccomandato per gel confronto studio e proteina quantificazione9. Metodi ottimizzati nella sensibilità possono utilizzare aldeidi che possono anche fornire un aspetto più uniforme colorazione10. Tuttavia, questo è a scapito di ulteriore analisi a valle a causa la reticolazione delle proteine di aldeidi. Protocolli di veloce principalmente combinano o accorciano alla seguente procedura per ridurre il tempo di compromettere la riproducibilità e l’uniformità della macchia5. Di conseguenza, ci sono numerosi argento colorazione varianti all’interno di gel di proteina che macchia, ciascuno ottimizzato per soddisfare determinati requisiti; ad esempio, semplicità, sensibilità o peptide tasso di recupero per analisi a valle. Questi attributi possono anche avere un impatto su ogni altro, e soddisfare tutte le esigenze in un protocollo può essere difficile.
In questo lavoro, vi presentiamo un nuovo fluorescente argento che macchia il metodo per la rilevazione di proteine nel gel di poliacrilammide. In questo metodo, utilizziamo una sonda fluorogenic per ioni d’argento, TPE-4TA (Figura 1), per visualizzare le proteine impregnato di argento11. TPE-4TA è stato progettato dal principio di emissione indotta da aggregazione (AIE). È non-emissivo quando disciolto in soluzione acquosa, ma è altamente emissivo in presenza di ioni d’argento. Sostituendo lo sviluppo cromogeno in tradizionali macchie d’argento con un fluorogenic sviluppando passo, il metodo d’argento fluorescente consente la macchiatura robusta delle proteine totali con uno sfondo ridotto.
Inoltre, la macchia d’argento fluorescente ha mostrato una buona gamma dinamica lineare per quantificazione della proteina, che è paragonabile con la macchia di SYPRO Ruby ampiamente utilizzato e non ottenibile con le macchie d’argento tradizionale. Il gel può essere ripreso il gel comunemente utilizzati sistemi di documentazione con lampada a raggi ultravioletti (lunghezza d’onda di eccitazione: canale di 302/365 nm; emissione: ~ 490-530 nm) presso molti laboratori biologici.
Presentato qui è un romanzo fluorescente argento che macchia il metodo per le proteine nel gel di poliacrilammide. Questa strategia integra le macchie d’argento convenzionale e la colorazione fluorescente. Le gesta di colorazione il legame selettivo di ioni d’argento per proteine come in altri argento macchie ma impiega un argento altamente sensibile fluorogenic sonda TPE-4TA per illuminare le proteine rilegate d’argento. Poiché la sonda fluorogenic TPE-4TA può percepire gli ioni d’ar…
The authors have nothing to disclose.
Gli autori vorrei ringraziare Patrick Chan presso il centro di Lau Wai Ming per Medicina riparativa, Karolinska Institutet, per il suo supporto tecnico. S. X. è grato per il sostegno del Consiglio di ricerca svedese (Grant No. 2017-06344).
LDS Sample Buffer (4X) |
Thermo Fisher Scientific | NP0007 | Reagent |
4-12% Bis-Tris Protein Gels, 1.0 mm, 15-well |
Thermo Fisher Scientific | NP0323BOX | Precast gel |
Sample Reducing Agent (10X) | Thermo Fisher Scientific | NP0004 | Reagent |
MES SDS Running Buffer (20X) | Thermo Fisher Scientific | NP0002 | Reagent |
Mini Gel Tank | Thermo Fisher Scientific | A25977 | Equipment |
300W Power Supply (230 VAC) | Thermo Fisher Scientific | PS0301 | Equipment |
Unstained Protein Ladder | Thermo Fisher Scientific | 26614 | Sample |
Silver nitrate | Sigma-Aldrich | 31630-25G-R | Reagent |
Ethanol | Bragg and co. | 42520J | Reagent |
Acetic acid | J.T. Baker | 103201A | Reagent |
Milli-Q Synthesis A10 | Merk | – | Provides 18.2 MΩ.cm water |
gel documentation system (c600 model) | Azure biosystems | – | Equipment |